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Viabilidad de huevos y modelo de jaula para la cria artificial masiva de Anastrepha fraterculus (Diptera: Tephritidae).

Viability of eggs and screen cage model for mass artificial rearing of Anastrepha fraterculus (Diptera: Tephritidae)

INTRODUCCION

En muchos paises de America Latina, Anastrepha fraterculus (Wiedemann) es una plaga importante de la fruticultura, porque utiliza el fruto como substrato para la oviposicion y para el desarrollo de las larvas. Esta especie causa danos directos e indirectos en la agricultura (Marin, 2002) lo cual se traduce en perdidas en la produccion de frutas y en el comercio internacional por las regulaciones cuarentenarias (Nolasco & Iannacone, 2008).

En el Peru, A. fraterculus es una especie endemica (Korytkowski, 2001) y antes de la aparicion de Ceratitis capitata (Wiedemann) o mosca del Mediterraneo en 1956, ocupaba el primer lugar dentro de los dipteros daninos de los frutos (Gonzales et al., 1971). En la actualidad, aunque desplazada por dicha especie, en algunos valles fruticolas del sur del pais mantiene su jerarquia como la segunda plaga mas importante (Nolasco & Iannacone, 2008). Algunas caracteristicas biologicas como la capacidad de dispersion, el ciclo de vida relativamente corto y el alto potencial de reproduccion hacen que su presencia cause severas limitaciones para la exportacion de productos fruticolas, por ello es objeto de estrictas restricciones cuarentenarias (Malavasi et al., 1994).

Ante este problema en el Peru, se han establecido estrategias de manejo y erradicacion de esta plaga. El Programa Nacional de la Mosca de la Fruta (PNMF) tiene como objetivo la reduccion significativa de las poblaciones de moscas de la fruta, en los valles fruticolas costeros e interandinos con potencial fruticola exportador hasta alcanzar "areas libres" (Crovetto & Tirado, 2008). Uno de los elementos importantes en el manejo integrado de plagas lo constituye el combate autocida el cual, integrado armonicamente con otros metodos de control, facilita la supresion de esta plaga (Aluja, 1993). El combate autocida, que se basa en la tecnica del insecto esteril (TIE), es factible una vez abatidas las poblaciones silvestres mediante aspersiones de insecticida cebo (Muniz & Andres, 1993; Del Pino & Garrido, 1996). La TIE consiste en liberar masivamente moscas esteriles, producidas artificialmente en el laboratorio o en biofabricas para alcanzar el cruzamiento de hembras silvestres con machos de laboratorio esterilizados con irradiacion gamma, de tal forma que los huevos no sean viables (Knipling, 1955). De esta manera, se reduce la plaga hasta alcanzar la supresion y/o erradicacion (Caceres, 2002; Caceres et al., 2007). Para aplicar la TIE en plagas insectiles agricolas y de salud publica, es necesario implementar una cria masiva efectiva en base a dietas artificiales y condiciones controladas para cada fase biologica (Dominguez et al., 2000; Teal et al., 2004).

Uno de los aspectos que hace posible considerar la cria masiva de A. fraterculus es que es una especie polifaga y multivoltina, al igual que otras especies de tefritidos como Bactrocera tryoni (Froggatt), mosca de la fruta de Queensland; Bactrocera dorsalis (Hendel), mosca oriental de la fruta; Bactrocera (Zeugodacus) cucurbitae (Coquillet), la mosca del melon; Anastrepha suspensa (Loew), la mosca del Caribe; A. ludens (Loew), la mosca mexicana; A. obliqua (Macquart), la mosca de las Indias Occidentales, y Ceratitis capitata, la mosca del Mediterraneo (Dominguez et al., 1997; Braga et al., 2006), las cuales ya son criadas en forma masiva en distintos lugares del mundo. Sin embargo quedan muchos aspectos a considerar, la oviposicion es uno de los mas criticos en la cria de A. fraterculus, ya sea por la dificultad para obtener un numero suficiente de huevos viables (con valores de viabilidad superiores al 80%), asi como para determinar los tipos de jaulas mas apropiados (Salles, 1995; FAO/ IAEA /USDA, 2003; Lopez et al., 2006). Es por ello que el objetivo de este trabajo fue determinar la viabilidad de huevos y el modelo de jaula apropiada para la cria artificial masiva de A. fraterculus, a fin de maximizar la fertilidad y la fecundidad.

MATERIAL Y METODOS

Las actividades se realizaron en el Laboratorio de Desarrollo de Metodos de la Unidad de Centros de Produccion de Moscas de la Fruta (UCPMF)--La Molina, Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA), Lima, Peru. Se evaluaron dos aspectos: la viabilidad (fertilidad) y produccion (fecundidad) de huevos a lo largo de tres semanas de oviposicion, y el modelo de jaula que maximizara esos parametros.

Fertilidad y fecundidad durante el periodo de maxima oviposicion (21 dias)

Armado de jaulas. Se trabajo con jaulas con las dimensiones siguientes: 1,74 x 0,67 x 0,68 m. (jaulas modelo Mediana, ver mas adelante). Cada jaula presento un panel de oviposicion que comprendio una tela roja de 18 hilos en un cm lineal, impregnada con silicona en la cara externa para permitir la colecta de huevos. Se uso una dieta consistente en proteina hidrolizada enzimatizada (Gluadin W40[R], Hexa-Quimica SAC, Lima, Peru) y azucar en una proporcion de 1:3 para alimentar los adultos emergentes (Pison et al., 2006). El agua se proveyo en tubos de PVC (2 pulg.) a los cuales se les coloco una tela absorbente. Se colocaron por jaula 47.200 pupas vivas debidamente sincronizadas a 1 dia antes de la emergencia. Se distribuyo el material biologico equitativamente en la base de la jaula y se colocaron conos de papel en la base de la misma para la expansion y acondicionamiento alar del estado adulto. Se mantuvieron las jaulas debidamente rotuladas en la sala de reproductores a 26[grados]C [+ o -] 1, 65% [+ o -] 5 de humedad relativa, y un fotoperiodo de 10:14 de luz y oscuridad. El periodo de preproduccion fue de 7 dias para iniciar la colecta de huevos. Cada semana se armaron tres jaulas y los registros se extendieron por seis semanas por lo que la informacion corresponde a 18 jaulas.

Colecta de huevos. Los primeros huevos colectados fueron desechados (primer y segundo dia) y la tercera colecta fue registrada como primera, con la finalidad de obtener una mayor cantidad de huevos fertiles debido a que A, fraterculus produce los dos primeros dias huevos infertiles sin haber copulado (Salles, 1999b; Braga et al., 2006). La colecta se realizo diariamente en la manana, luego de limpiar los paneles de oviposicion; durante 30 min se bajaron los huevos con un fino rocio de agua mediante el uso de una manguera a presion para evitar la deshidratacion de los mismos. Se colectaron en baldes para cada jaula. Se midio diariamente el volumen en ml de la cantidad de huevos obtenidos (fecundidad) y se agruparon los correspondientes al promedio de las tres jaulas que se armaban cada semana, durante seis semanas. La duracion del periodo de colecta fue de 21 dias (Vera et al., 2007).

Determinacion de la viabilidad de huevos al momento de la colecta. Se tomo una pequena muestra aleatoria de huevos de cada grupo de jaulas armadas cada semana. Se coloco una tira de pano absorbente dentro de una placa de Petri de plastico, poniendo sobre ella una tira de cartulina negra, ambos humedecidos con agua. Se colocaron 300 de la muestra sobre la tira de cartulina y se alinearon con la ayuda de un pincel de pelo de Martha No.000. Con la ayuda de un microscopio estereoscopico, se identifico y cuantifico el numero de huevos para determinar el porcentaje de eclosion. Posteriormente se incubaron a 28[grados]C [+ o -] 1 y 90 [+ o -] 5% de humedad relativa. Luego de 120 h, se identificaron y cuantificaron los eclosionados. Los resultados fueron expresados en porcentaje de viabilidad de huevos (fertilidad) por dia, siguiendo lo senalado por Hernandez et al. (2010).

Modelo de jaula mas adecuado

Los tres modelos de jaulas fueron: 1) Mediana: con dimensiones de 1,74 x 0,67 x 0,68 m. El sustrato o panel de oviposicion se encuentra en toda el area de una de las caras de la jaula y esta fabricado con una tela de nylon roja de 18 hilos, las otras caras estan compuestas por una malla de 7 hilos por cm lineal. La cara interna esta dividida en muchos compartimientos.

2) Grande: con dimensiones 2,00 x 2,00 x 0,30 m. El sustrato o panel de oviposicion se encuentra en la parte central de la cara frontal y esta fabricado con una tela de nylon roja de 18 hilos. Los demas lados estan cubiertos por una malla de 18 hilos. La cara interna no estuvo dividida en compartimientos.

3) Mission: con dimensiones de 2,15 x 1,80 x 0,30 m. El sustrato o panel de oviposicion se encuentra en forma vertical, en el area central-frontal de la jaula de la cual sobresale una camara de oviposicion a base de una tela de nylon roja de 18 hilos, donde el panel esta aislado del contacto directo con el medio ambiente por medio de una puerta de acrilico. La otra cara esta compuesta por una malla de 18 hilos y los lados laterales estan cubiertos por aluminio.

Cada grupo de tres jaulas se armo semanalmente (teniendo un total de 5 grupos o repeticiones por cada modelo). Se dio la misma densidad para los tres modelos: 1 mosca por cada 2[cm.sup.2]. La dieta de los adultos consistio en proteina hidrolizada enzimatizada y azucar en una proporcion de 1:3. El agua para los adultos se proveyo en tubos de PVC (2 pulg.) a los cuales se les coloco una tela absorbente. La duracion del periodo de colecta de huevos fue de 21 dias. La colecta fue realizada diariamante en la misma forma a lo indicado en el acapite previo.

Habilidad de vuelo, porcentaje de emergencia, relacion de sexos y numero de huevos por hembra por dia

Con las pupas procedentes de los tres modelos de jaula se realizaron las siguientes pruebas, que se llevaron a cabo segun el Manual de la FAO/IAEA/USDA (2003). Habilidad de vuelo y porcentaje de emergencia. Se realizo esta prueba para obtener estimaciones precisas del porcentaje de pupas que producen moscas adultas con capacidad basica para volar. Se realizo bajo las condiciones y procedimientos siguientes: temperatura, 25 C [+ o -] 1; humedad relativa, 65% [+ o -] 5; Fotoperiodo, 10h:14 h de luz:oscuridad. Se acondicionaron tubos de PVC de 10 cm de alto y 8 cm de diametro externo con una base de cartulina negra para que la luz solo ingrese en la parte superior de los tubos. Se coloco un aro de cartulina negra de 1 cm de ancho y 6 cm de diametro en la base de los tubos, para proporcionar lugares de descanso para las moscas recien emergidas. Se cubrio el interior de los tubos de PVC con talco sin aroma, para prevenir que las moscas salgan caminando y se golpeo sobre una superficie fina para eliminar el exceso de talco. Se adicionaron 100 pupas (de la muestra extraida) procedentes de cada modelo de jaula dentro del aro de cartulina. Para cada tipo de jaula y lote de pupas (la jaula Mediana empleo un promedio de 47.200 pupas; la Grande uso 71.450 y la Mission, 71.800 pupas) se realizaron 3 repeticiones. Se colocaron los tubos de PVC en jaulas de plexiglas ventiladas de 30 x 40 x 30 cm para la emergencia y habilidad de vuelo de A. fraterculus. Despues de que las moscas emergieron y empezaron a volar, se eliminaron dos veces al dia los adultos que lograron salir de los tubos negros, para evitar asi que al caer por inanicion dentro del tubo se proporcione un dato erroneo. Una vez que todas las moscas murieron, se conto el numero de pupas no emergidas, los adultos medio emergidos, los no voladores, los deformes y, ademas, el numero de moscas voladoras. Estos datos se registraron para calcular el porcentaje de emergencia y habilidad de vuelo. Para el porcentaje de emergencia se utilizo la siguiente formula:

%E = T - (PnE+AmE)/100

Donde: % E: Porcentaje de emergencia. T: Numero total de pupas. PnE: Pupas no emergidas. AmE: Adultos medio emergidos. Mientras que para el porcentaje de voladoras, la formula utilizada fue:

%V = Numero Total de pupas - (Ad+AnV+PnE+AmE)/100

Donde: % V: Porcentaje de voladoras. Ad: Adultos con alas deformes. AnV: Adultos no voladores. AmE: Adultos medio emergidos.

Relacion de sexos. Se tomo una muestra de 100 pupas en una placa petri pequena (3 repeticiones). Una vez que todas las moscas hubieron emergido y muerto se conto el numero de adultos hembras y machos. Se expresaron los resultados en porcentaje utilizando las formulas siguientes:

%H = No. H x 100/No. AE

%M = No. M x 100/No. AE

Donde: %H=Porcentaje de hembras.

%M=Porcentaje de machos. No. H = Numero de hembras. No. M = Numero de machos. No AE = Numero de adultos emergidos.

Numero de huevos por hembra por dia (Fecundidad). Para determinar el numero de huevos por hembra por dia, en cada tipo de jaula se calculo primero el numero de hembras voladoras y el numero de huevos puestos con las siguientes formulas.

No. Hembras voladoras = Numero de pupas vivas x % Voladoras x %Hembras.

No. Huevos = volumen de huevos en mL x 20.000. Este dato fue obtenido del control de calidad previo realizado con esta especie.

El numero de huevos por hembra por dia se determino con la siguiente formula:

No. Huevos por hembra por dia = No. HV/No. Hvs/No. dias de colecta

Donde: No. HV = Numero de hembras

voladoras. No.Hvs = Numero de huevos puestos.

Analisis de datos

Se realizo un analisis de correlacion entre la viabilidad (fertilidad) y el volumen de huevos por dia (fecundidad) de A. fratercuius. Se determino el periodo mas adecuado de colecta de huevos, empleando el analisis de regresion lineal y su coeficiente de determinacion ([r.sup.2]). Con el fin de asegurar la normalidad de los datos se empleo la prueba de Kolmogorov Smirnov. Se evaluo si existian diferencias en los promedios de viabilidad y del volumen de huevos en 21 dias de exposicion, empleando un ANOVA. En los tres modelos de jaula, se analizo si existieron diferencias significativas en el volumen de huevos (mL) y en el numero de huevos/dia a traves de un ANOVA. Se comparo, en los tres modelos de jaula, el numero total de individuos emergidos, voladores, hembras y hembras voladoras de A. fratercuius por dia empleando el ANOVA. Para todas las pruebas se uso la prueba de Tukey a posteriori. Se utilizo el paquete estadistico SPSS 18,0 para el calculo de la estadistica descriptiva e inferencial.

RESULTADOS

El volumen de huevos ovipositados (fecundidad) y el porcentaje de viabilidad de huevos (fertilidad) de A. fratercuius de la UCPMF, obtenidos a lo largo de un periodo de 21 dias de postura, se muestran en la Tabla I. Se observa que el volumen de huevos tiene una tendencia decreciente a partir del cuarto dia de postura; el porcentaje de viabilidad tambien muestra una tendencia a disminuir, pero de manera menos notoria a partir del quinto dia. Se encontraron diferencias significativas en el promedio de viabilidad de los huevos (F = 2,67; P = 0,001) entre el dia 3 vs el dia 21, con una disminucion del 25,3% (Tabla 1). El promedio del volumen de huevos tambien presento diferencias significativas entre los dias evaluados (F = 18,49; P = 0,000), principalmente entre el dia 4 vs el dia 21, con un 91,4% en la reduccion del volumen de huevos (Tabla I). Se observo un alto valor en el coeficiente de determinacion entre el volumen de huevos (y) y el porcentaje de viabilidad (x) ([r.sup.2]=0,86), lo que indica un buen ajuste en la ecuacion de la recta de regresion lineal de y = 1,5938x - 87,035. Ambas variables presentaron una correlacion positiva (r = 0,92).

Para el modelo de jaula, se utilizaron como indicadores los indices de produccion (volumen de huevos (mL) y No. de huevos/ hembra/dia). En la Tabla II, se observa que no existen diferencias estadisticas en el volumen de huevos y en el numero de huevos/hembra/dia entre las jaulas modelos Grande y Mediana, pero si entre estas y las jaulas Mission. Se advierte que por 25 mL de pupas de cada uno de los tres modelos de jaula, el numero de individuos emergidos y voladores no presentaron diferencias estadisticamente significativas entre las Grande y las Mission, mientras que las jaulas Mediana tienen valores menores y estadisticamente diferentes a los otros dos modelos (Tabla III). En cuanto al numero de hembras, las tres jaulas mostraron diferencias, los valores mas altos se obtuvieron en la Mission. Sin embargo, en las hembras voladoras, solo las jaulas Mediana mostraron diferencias significativas. Entre los modelos Grande y Mission no hubo diferencias entre los promedios de las mismas (Tabla III).

DISCUSION

En el presente trabajo, se logro un periodo de oviposicion de 10 dias para obtener la fecundidad y fertilidad de huevos adecuados y optimos que alimenten el pie de cria de A. fraterculus. Entre los tres modelos de jaulas evaluadas, la Mediana mostro los mejores resultados al evaluar el numero de huevos/ hembra/dia. En contraste, la jaula que mostro los valores mas bajos fue el modelo Mission.

El numero de huevos/hembra siempre va a ser mayor a menores niveles de produccion, esto es debido, segun Vera et al. (2007), a que las hembras confinadas en jaulas pequenas, bajo condiciones de poco estres y no conglomeradas producen un mayor numero de huevos/hembra. En este trabajo, se obtuvieron valores de porcentaje de eclosion entre el 54,4% (dia 21 de colecta) al 72,7% (dia 5 de colecta), mientras que Gonzalez et al. (1971) encontro un 45% de eclosion de huevos en tela roja con silicona. Jaldo et al. (2001) obtuvieron un 84 % de eclosion de A. fraterculus, utilizando tela blanca con silicona en jaulas de metal de 0,96 x 0,60 x 0,30 m con 8.500 pupas vivas.

Se observo una correlacion positiva entre el volumen de huevos y el porcentaje de viabilidad de los mismos por dia, a lo largo de 21 d de exposicion, con una reduccion del 25,3% y del 91,4% para viabilidad y volumen de huevos, respectivamente. Vera et al. (2007) no observaron ninguna correlacion entre estas dos variables (r = 0,08; P > 0,05), pero si encontraron una diminucion del 13,5% y del 69,1% para la viabilidad (fertilidad) y el volumen de huevos (fecundidad) de A. fraterculus, respectivamente, en 28 dias de evaluacion.

Vera et al. (2007) obtuvieron un 86% de eclosion, utilizando 10.000 pupas por jaula e indican que la alta humedad favorece la alta recuperacion de pupas. Liedo et al. (2007) no encontraron diferencias en la emergencia de adultos y en la habilidad del vuelo, pero si en la competitividad de los machos o en el comportamiento de apareamiento de C. capitata cuando emplea plexiglas para proporcionar una mayor superficie horizontal, en comparacion a otras dos condiciones de cria masiva.

La jaula que mostro el mejor resultado fue la Mediana en relacion al numero de huevos/hembra/dia, posiblemente uno de los factores que influyo fue la estructura de la jaula, que presento la cara interna dividida en muchos compartimientos, lo cual mejora la distribucion de las moscas adultas y previene la mortalidad temprana por hacinamiento en la base o en el techo de la jaula. En una cria masiva con C. capitata, que empleo plexiglas para proporcionar una mayor superficie horizontal a 2.200 moscas/ jaula, se encontro un incremento en la tasa de fecundidad al aumentar la colonizacion. Sin embargo, no fue diferente a los otros dos sistemas de cria masiva (Liedo et al, 2007).

A pesar de existir diferencias en cuanto al numero de moscas hembras entre los tres modelos de jaulas, las Mediana mostraron 11,4 [+ o -] 0,5 huevos por hembra/dia, lo cual es importante si se requiere producir millones de moscas semanales para implementar la TIE. Vera et al. (2007) encontraron de igual forma, 11 a 15 huevos/hembra/dia. En este estudio, se utilizo una densidad de 0,5 mosca por cada [cm.sup.2] para incrementar la produccion de huevos, a pesar de la recomendacion de Moreno (1993) que indica una densidad maxima por jaula no mayor a 0,2 adultos [cm.sup.-2], lo cual pudo haber afectado el volumen y viabilidad de los huevos. La densidad de adultos de tefritidos por jaula puede variar segun la especie y es un factor critico en la sobrevivencia y la fecundidad, que debe ser estudiado para determinar el tamano de la jaula y los niveles de poblacion a confinar (Jaldo et al., 2001; FAO/ IAEA/ USDA, 2003; Liedo et al., 2007; Vera et al., 2007).

Liedo & Carey (1994) y Del Pino & Garrido (1996) recomendaron un especial cuidado en la colonia de reproductores de tefritidos para minimizar los efectos adversos en la calidad de las moscas, y que no alteren los resultados de volumen y eclosion de los huevos.

Un factor limitante e importante en una cria masiva exitosa de tefritidos es la necesidad de desarrollar una tecnica que pueda promover una oviposicion efectiva y facilitar la colecta de huevos que garanticen una maxima fertilidad (Salles, 1999a). A pesar de que en el modelo de jaula Mediana se obtuvo una oviposicion efectiva, los huevos necesitan ser colectados manualmente en cortos periodos para evitar la deshidratacion de los mismos, actividad que deberia ser reemplazada por un mecanismo automatizado, para producir millones de pupas que se requieren en la implementacion de la TIE. Durante la caracterizacion del proceso de adaptacion de Anastrepha serpentina (Wiedemann) a condiciones de cria masiva, el numero de huevos/hembra/dia y el porcentaje de viabilidad mostraron una alta inestabilidad, como resultado de la seleccion-adaptacion de los insectos a las condiciones de cria artificial (Pinson et al., 2006).

Para desarrollar una cria masiva efectiva de un determinado insecto, es necesario monitorear cada fase biologica de su desarrollo porque todo el proceso de colonizacion y cria genera cambios en varios atributos biologicos del insecto (Liedo & Carey, 1994; Lopez et al., 2006). Al visualizar el numero de huevos/hembra de A. fraterculus procedente de los tres modelos de jaulas, en comparacion al numero normal de huevos por hembra para esta misma especie en condiciones naturales, puede llegar hasta 30 huevos/hembra/dia.

La fecundidad y fertilidad de A. fraterculus fueron evaluados durante 21 dias (primeras tres semanas), el cual es el optimo sugerido para la cria masiva al representar el 90% de la colecta total de huevos (Vera et al., 2007). Sin embargo, Vera et al. (2007) registran en estas tres semanas una caida en la produccion de huevos de aproximadamente un 44,7%. Mientras que en este trabajo, la caida respecto a la primer semana es bastante mayor (91,4%). Pudiera ser que, en este caso, sea mas operativo mantener dos semanas en cria una jaula, en lugar de tres; considerando los costos de personal y recursos-varios que implica la colecta y acondicionamiento de huevos.

En este trabajo, se ha usado un alimento estandar para adultos de mosca de la fruta, el cual tambien es un factor importante para optimizar la cria (Jaldo et al., 2001; Teal et al, 2004). Braga et al. (2006) emplearon una dieta compuesta por proteina hidrolizada de maiz mas proteina hidrolizada enzimatizada y azucar (3:1:3). Esta dieta incremento el numero de huevos/hembra/ dia, los espermatozoides en la espermateca y el porcentaje de viabilidad de huevos. Ademas, hubo una menor mortandad y un mayor promedio de duracion de la copula, comparado con la dieta estandar de adultos basada en proteina hidrolizada mas azucar (1:3). Otros autores que han empleado una mezcla de levadura hidrolizada, proteina de maiz y azucar (1:1:4), reportaron valores de eclosion de huevos del 84,4% (Vera et al, 2007).

La caracteristica de la ventilacion de la jaula es importante, dependiendo de la especie de mosca de la fruta; por ejemplo, para el caso de la cria masiva de una cepa sensible a la temperatura de sexado genetico de C. capitata tsl, se utilizan jaulas que permitan una mayor ventilacion con una densidad de un adulto cada 1,7 [cm.sup.2].

El color de malla roja es el mas favorable para la oviposicion de A. fraterculus (Gonzalez et al., 1971). Este color fue el utilizado en el presente trabajo. Vera et al. (2007) empleo un panel transparente de policarbonato y obtuvo muy buenos resultados para diversos parametros de control de calidad y cria de A. fraterculus. Otra especie que se cria masivamente en el Peru para hacer liberaciones es C. capitata, la cual oviposita a traves de la malla que cubre las paredes laterales de la jaula y el huevo cae posteriormente a un colector con agua (Lopez et al., 2006). Esto no es factible para A. fraterculus, debido a que la hembra tiene un robusto ovipositor que necesita un sustrato de oviposicion mas solido que le permita tener un estimulo mecanico mayor, para lo cual se utiliza una tela con orificios mas pequenos que C. capitata; ademas, esta tela esta cubierta con un aislante con silicona para evitar que la humedad se introduzca en la jaula, lo cual provocaria la proliferacion de microorganismos y la muerte de la moscas (Dominguez et al., 1997).

A pesar de que la jaula Mission es usada en numerosos paises para evitar el desecamiento de los huevos, las jaulas que resultaron mas factibles para la cria fueron las Mediana. Este ultimo modelo resulto mas practico para desechar el material, para reemplazar el panel de oviposicion y para el armado de las jaulas. En el modelo Mission, se ha realizado la cria artificial de A. ludens y de A. obliqua en la planta Moscafrut en Mexico. La colonia de A. obliqua estuvo compuesta por 945.000 hembras que produjeron 147 millones de huevos/semana y 1 millon de huevos/jaula por dia. Cada jaula Mission presento un panel de tela organza de color blanco con una capa delgada de silicona y se colocaron 90,000 pupas por jaula. Se les suministro azucar y proteina hidrolizada en proporcion 3:1 (Artiaga-Lopez et al., 2002). Para A. ludens, se registro una densidad de 110.000 moscas por jaula en Mission, Texas (EUA) y 140,000 en Metapa, Chiapas (Mexico), en jaulas de 1,5 m x 1,4 m x 0,3 m (Dominguez et al., 1997). Se requiere a futuro profundizar mecanismos automatizados para la mejora de la jaula Mediana, con el fin de evitar el desecamiento de los huevos y producir millones de pupas requeridas para la implementacion de la TIE. Para hidratar los huevos de A. fraterculus tambien pudiera agregarse un gel (fursellerone, que se prepara mezclando 10 L de agua con 900 g de fursellerone, para luego mezclarlo con 35 L de agua caliente).

CONCLUSIONES

Se determino un periodo de oviposicion de 10 dias, para obtener el volumen de huevos y el porcentaje de viabilidad adecuado y optimo que alimente el pie de cria de A. fraterculus en una cria masiva. Entre los modelos de jaulas evaluadas, la Mediana mostro los mejores resultados al evaluar el indice de produccion numero de huevos/hembra/dia con un valor promedio de 11,4 [+ o -] 0,5. En cambio, la jaula que mostro los valores mas bajos es el modelo Mission con un valor promedio de 4,6 [+ o -] 0,2 huevos/ hembra/dia.

Recibido: 25-IV-2011; aceptado: 31-VIII-2011

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GARCIA, JULIANA * y JOSE IANNACONE **

* Laboratorio de Desarrollo de Metodos de la Unidad de Centros de Produccion de Moscas de la Fruta (UCPMF)--La Molina. Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA), Lima, Peru

** Laboratorio de Ecofisiologia Animal. Facultad de Ciencias Naturales y Matematica. Universidad Nacional Federico Villarreal. Av. Chepen s/n. Urb. Villa Hermosa. El Agustino. Lima, Peru. E-mail: joseiannacone@yahoo.es
Tabla I. Porcentaje de viabilidad y volumen de huevos de
Anastrepha fraterculus durante 21 dias de colecta. Se
empleo un estimado de 47.200 pupas vivas.

                 Viabilidad                       Volumen de huevos

Dias    X [+ o -] EE    Significancia    X [+ o -] EE    Significancia

1     65,8 [+ o -] 3,8       ab        15,3 [+ o -] 2,2      bcde
2     69,8 [+ o -] 3,1       ab        23,5 [+ o -] 4,6       efg
3     72,8 [+ o -] 3,4        b        28,3 [+ o -] 2,8       fg
4     70,6 [+ o -] 2,7       ab        34,0 [+ o -] 4,9        g
5     72,7 [+ o -] 2,3        b        30,5 [+ o -] 2,4       fg
6     69,6 [+ o -] 2,0       ab        28,2 [+ o -] 2,9       fg
7     67,7 [+ o -] 1,4       ab        24,6 [+ o -] 1,6       efg
8     70,6 [+ o -] 1,8       ab        22,5 [+ o -] 2,8      defg
9     69,8 [+ o -] 2,5       ab        21,5 [+ o -] 1,7      cdef
10    67,4 [+ o -] 0,9       ab        22,4 [+ o -] 2,6      cdef
11    69,2 [+ o -] 2,1       ab        20,1 [+ o -] 1,3      cdef
12    67,3 [+ o -] 4,3       ab        15,5 [+ o -] 1,1      bcde
13    62,1 [+ o -] 5,7       ab        13,2 [+ o -] 1,3      abcde
14    59,6 [+ o -] 3,9       ab        11,8 [+ o -] 1,2      abcd
15    60,3 [+ o -] 3,1       ab        10,8 [+ o -] 1,0       abc
16    62,2 [+ o -] 2,6       ab        8,1 [+ o -] 0,7        ab
17    62,3 [+ o -] 2,1       ab        6,3 [+ o -] 1,1        ab
18    58,4 [+ o -] 2,5       ab        5,9 [+ o -] 0,7        ab
19    56,8 [+ o -] 4,6       ab        4,8 [+ o -] 0,8        ab
20    58,8 [+ o -] 4,7       ab        3,5 [+ o -] 0,6         a
21    54,4 [+ o -] 6,8        a        2,9 [+ o -] 0,7         a
      65,4 [+ o -] 0,8                 16,8 [+ o -] 0,9

* Las letras iguales junto a los promedios en una misma columna
indican que no hay diferencias estadisticas significativas
(Tukey, P > 0,05). X = Promedio. EE = Error estandar.

Tabla II. Variacion en el volumen de huevos y en el numero de
huevos por hembra de Anastrepha fraterculus por dia en los tres
modelos de jaulas.

                  Volumen de huevos         Numero de huevos
                   (mL) en 21 dias            por hembra/
Modelo de jaula      X [+ o -] EE           dia X [+ o -] EE

Grande            304,9 [+ o -] 33,3   a    8,6 [+ o -] 1,1    a
Mediana           260,2 [+ o -] 13,6   ab   11,4 [+ o -] 0,5   a
Mission           187,3 [+ o -] 13,2   b    4,6 [+ o -] 0,2    b
F                                  2,27                    8,19
Significancia                    < 0,001                 < 0,001

* Las letras iguales junto a los promedios en una misma columna
indican que no hay diferencias estadisticas significativas
(Tukey, P > 0,05). X = Promedio. EE = Error estandar.

Tabla III. Variacion en el promedio del numero de individuos
emergidos, voladores, hembras y hembras voladoras procedentes
de los tres modelos de jaulas a partir de 25 mL de pupas.

                    Numero de individuos

Modelo de jaula    Emergidos X [+ o -] EE

Grande            169.521,8 [+ o -] 7.666,2   a
Mediana           111.197,0 [+ o -] 5.900,9   b
Mission           189.254,0 [+ o -] 4852,3    a
F                           11,34
Significancia              < 0,001

                    Numero de individuos

Modelo de jaula    Voladores X [+ o -] EE

Grande            145.459.0 [+ o -] 7.552,2   a
Mediana           98.988.8 [+ o -] 7.307,9    b
Mission           169.841.0 [+ o -] 8.504,1   a
F                           6,84
Significancia              < 0,001

                    Numero de individuos

Modelo de jaula     Hembras X [+ o -] EE

Grande            84.530,6 [+ o -] 3.267,1   b
Mediana           52.403,4 [+ o -] 2.037,5   c
Mission           91.989,0 [+ o -] 1.252,2   a
F                          14,35
Significancia             < 0,001

                    Numero de individuos

                     Hembras voladoras
Modelo de jaula         X [+ o -] EE

Grande            72.493,8 [+ o -] 3.105,3   a
Mediana           46.510,6 [+ o -] 2.500,7   b
Mission           82.447,6 [+ o -] 3.116,9   a
F                          14,03
Significancia             < 0,001

* Las letras iguales en una misma columna junto a los promedios
indican que no hay diferencias estadisticas significativas
(Tukey, P > 0.05). X = Promedio. EE = Error estandar.
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Author:Garcia, Juliana; Iannacone, Jose
Publication:Revista de la Sociedad Entomologica Argentina
Date:Jul 1, 2011
Words:6623
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