Printer Friendly

Thyroid Tissue and Infrared Laser. A Morphometric Study/Tejido Tiroideo y Laser Infrarrojo. Un Estudio Morfometrico.

INTRODUCCION

La glandula tiroides recibe este nombre por su similitud con un escudo (del griego hyreos: escudo), ya que se pensaba que constituia una autentica proteccion para la laringe de la misma forma que lo constituye el cartilago tiroides (Cian et al., 2004). Es una glandula endocrina impar, casi simetrica constituida de dos lobulos unidos por un istmo central, situada justo por debajo de la laringe y a ambos lados y por delante de la traquea, siendo una de las glandulas endocrinas mas grande, con un peso que oscila entre los 15 y 20 gramos en los adultos sanos (Guyton & Hall, 2011). Su ubicacion definitiva la alcanza durante la septima semana de desarrollo intrauterino (Sadler, 2006).

En lo relativo a la vascularizacion, la glandula esta irrigada por la arteria tiroidea superior (primera rama de la arteria carotida externa), encargada principalmente de la porcion superior de la glandula; y por la arteria tiroidea inferior, la cual se origina del tronco tirocervical, que se deriva de la arteria subclavia. Adicionalmente, se ha reportado la presencia de una arteria inconstante, denominada arteria tiroidea ima, la cual tiene una presencia en los diferentes reportes analizados, que varia entre un 10% y 20% de la poblacion (Rojas & Ballesteros, 2009).

Desde el punto de vista funcional, la glandula tiroides comienza a activarse, aproximadamente, al final del tercer mes de desarrollo fetal, cuando se pueden observar los primeros foliculos que contienen coloide (Sadler), cuyo componente principal es la tiroglobulina (Tg) (Tresguerres, 1992). El tejido endocrino de esta glandula posee celulas foliculares (celulas principales) y parafoliculares (celulas C). Las primeras, se caracterizan por tener un nucleo esferoidal con uno o mas nucleolos prominentes, un Complexus golgiensis (aparato de Golgi) con ubicacion supranuclear, desarrollo de reticulo endoplasmico rugoso con ubicacion basal, asi como microvellosidades cortas en su extremo apical y vesiculas de reabsorcion de coloide. Estas glandulas sintetizan las hormonas tiroxina (T4) y triyodotironina (T3), secretadas por estimulacion de la TSH que se libera desde el lobulo anterior de la hipofisis (Ross & Pawlina, 2007).

La funcion principal de estas hormonas tiroideas en los adultos es proporcionar sustratos para el metabolismo oxidativo y aumentar el consumo de oxigeno en la mayoria de los tejidos, regulando asi el metabolismo y le temperatura corporal. En los ninos, son necesarias para la expresion completa de la hormona del crecimiento, lo que significa que son esenciales para el crecimiento y desarrollo normales, sobre todo del sistema nervioso (Silverthorn, 2008).

Las celulas parafoliculares ubicadas en la periferia del epitelio folicular, se caracterizan por un citoplasma claro, son palidas y se distribuyen en forma de celulas solitarias o en cumulos celulares pequenos. Internamente, presentan muchas vesiculas de secrecion y un Complexus golgiensis prominente; cuya funcion es producir y liberar la hormona calcitonina, que se encarga de regular la concentraciones de calcio en la sangre, ya que inhibe la disolucion de los cristales de calcio en el hueso y estimula la secrecion de calcio por la orina en los rinones. Estas dos acciones dan por resultado la disminucion de la calcemia (Fox, 2011). Por lo tanto, la glandula tiroides presenta una estrecha asociacion morfologica y funcional con las glandulas paratiroides en la mantencion homeostatica del organismo.

En base a lo presentado, el tejido tiroideo se constituye en un excelente modelo para cuantificar y por tanto evidenciar las eventuales transformaciones o variaciones de componentes de este tejido generadas por las inducciones del laser infrarrojo (LIR) las que, en otros tipos tisulares, provocan grandes y significativas diferencias en sus celulas constitutivas resultando, por ende, en una logica variacion de su funcionalidad.

MATERIAL Y METODO

Para el estudio con microscopia optica las glandulas tiroides normales y estimuladas durante 15 dias consecutivos con LIR 16 J/[cm.sup.2], fueron fijadas en formalina al 10%, para proceder a la deshidratacion en bateria creciente de alcoholes de 50 a 100% por dos h; posteriormente fueron incluidas en Paraplast durante 12 h. Se realizaron cortes seriados de 7 [micro]m de espesor fijandolos a portaobjetos albuminizados y dejando secar por 24 h. El proceso requirio desparafinar con Xilol por 40 min y se realizo la tincion citoplasmatica con eosina por 5 min, y la nuclear con hematoxilina por 3 min. Ademas de tincion con Azul de Toluidina. Luego de un lavado con agua, se deshidrataron los cortes con bateria creciente de alcoholes, otorgandoles transparencia mediante xilol fenicado por 5 min. Finalmente se realizo el montaje de los cortes en medio Permount, dejando secar por 24 h, a temperatura ambiente.

Los respectivos cortes de las glandulas tiroides fueron observados y fotografiados en un microscopio Carl Zeiss modelo Axioskop 40, acondicionado con camara digital incorporada. Para la determinacion de areas y perimetros se utilizo el software Sigma Scan Pro 5.0

RESULTADOS

El analisis de las evaluaciones realizadas en las placas histologicas con tincion de Azul de Toluidina a las tiroides normales y estimuladas con LIR mediante metodos morfometricos permitio consignar los resultados que se presentan en las Figuras 1 y 2, y en las Tablas I y II.

DISCUSION

Las estimulaciones con LIR y dosis de 16 J/[cm.sup.2] indican, en base al analisis de nuestros resultados y con absoluta claridad, su capacidad de generar drasticas modificaciones tanto a nivel celular como en los constituyentes fundamentales del tejido tiroideo.

En este contexto, en lo referente a los resultados obtenidos y mostrando una evaluacion correspondiente al diametro de las celulas foliculares derivadas de tiroides normal en relacion con su contrapartida estimulada con LIR, se visualiza una importante diferencia equivalente a 2.25 u, sin duda como respuesta a las inducciones infrarrojas. Este hecho guarda directa relacion con lo descrito por Das & Kalyani (2008), quienes con microscopia optica observaron tejido tiroideo alterado, con foliculos de morfologia y tamano variables mezclados entre si, contornos rigidos y plegamientos internos, que representan senales de hiperfuncion y donde sus celulas foliculares poseen un volumen muy superior, en comparacion a celulas foliculares normales.

De igual manera, esta importante diferencia de volumen, aproximadamente al doble, cuantificada entre celulas foliculares normales e irradiadas de ratas Wistar machos, ha sido descrita por Rognoni et al. (1989).

Por otra parte, a partir de las evaluaciones descritas en nuestros resultados, relativas tanto a las areas correspondiente al coloide como del propio foliculo tiroideo, encontramos una relacion directa entre estos valores puesto que, en ambos aspectos, las inducciones infrarrojas generan una drastica disminucion en los parametros citados, dejando claro que las estimulaciones podrian activar la sintesis de hormonas tiroideas, dado al aumento de volumen traducido en hipersecrecion y aumento celular que determinaria una notable disminucion de las areas tanto folicular como coloidal. Este resultado, y sus respectivas variaciones morfologicas y morfometricas, queda claramente descrito en la "enfermedad de Graves" o simplemente "hipertiroidismo", situacion donde el grado de estimulacion de la glandula produce un aumento considerable en la altura de las celulas foliculares, transformandolas de cubicas a cilindricas, aumentando la sintesis y la utilizacion del coloide y por ende disminuyendo su cantidad (Ross et al., 2006). Todo esto se traduce en irregularidad folicular, incluso apariencia vacia en las regiones de contacto con la superficie apical de las celulas foliculares (Ross et al.).

En un claro antagonismo con este resultado, Azevedo et al. (2005), trabajando en ratas Swiss albinas, estimularon tejido tiroideo con laser infrarrojo y dosis de 4 J/[cm.sup.2] y a traves de microscopia optica indicaron que no se producia ninguna modificacion morfologica en el epitelio folicular, probando entonces que las modificaciones celulares o tisulares, producto de las estimulaciones, son extremadamente dependientes de las dosis utilizadas. Asimismo, Parrado et al. (1990) probaron que existe una directa relacion entre las eventuales modificaciones morfologicas y la energia de la radiacion utilizada.

Los resultados indicarian que en la medida que se estimule con una determinada dosis de LIR el tejido tiroideo, se generan incrementos e inhibiciones tanto de las celulas como de las estructuras tisulares, lo que podria traducirse en distintas funcionalidades de esta glandula.

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

Azevedo, L. H.; Aranha, A. C.; Stolf, S. F.; Eduardo, C. de P. & Vieira, M. M. Evaluation of low intensity laser effects on the thyroid gland of male mice. Photomed. Laser Surg., 23(6):567-70, 2005.

Cian, D. M.; Demarchi, R. V; Gay, C. N. & Perez, M. M. Patologia tiroidea. Prevalencia de patologia benigna y maligna. Rev. Posgrado VIa Catedra Med, (135):17-20, 2004.

Das, S. & Kalyani, R. Sclerosing mucoepidermoid carcinoma with eosinophilia of the thyroid. Indian J. Pathol. Micr obiol., 51(1):34-6, 2008.

Fox, S. I. Fisiologia Humana. 12a ed. Ciudad de Mexico, MacGraw-Hill Interamericana, 2011. pp.337-40.

Guyton, A. C. & Hall, J. E. Guyton & Hall. Tratado de Fisiologia Medica. 12a ed. Barcelona, Elsevier, 2011. pp.907-14.

Parrado, C.; Pelaez, A.; Vidal, L. & Perez De Vargas, I. Quantitative study of the morphological changes in the thyroid gland following IR laser radiation. Lasers Med. Sci., 5(1):77-80, 1990.

Rognoni, J. B.; Penel, C.; Bastiani, P.; Roccabianca, M. & Lemarchand-Beraud, T. Down regulation of hypertrophied follicular cell volume in thyroid hyperplastic gland. Histol. Histopathol., 4(2):193-200, 1989.

Rojas, O. J. D. & Ballesteros, A. L. E. Branches arise of the aortic arch in human fetus. a descriptive direct study in colombian population. Int. J. Morphol., 27(4):989-96, 2009.

Ross, M. H.; Kaye, G. I. & Pawlina, W. Histologia. Texto y Atlas Color con Biologia Celular y Molecular. Buenos Aires, Medica Panamericana, 2006. pp.657-60.

Ross, M. H. & Pawlina, W. Histologia. Texto y Atlas Color con Biologia Celular y Molecular. 5[degrees] edicion. Buenos Aires, Medica Panamericana, 2007. pp.753-8.

Sadler, T. W. Langman. Embriologia Medica con Orientacion Clinica, 9a ed. Buenos Aires, Medica Panamericana, 2006. pp.353-5.

Silverthorn, D. U. Fisiologia Humana. Un Enfoque Integrado. 4a ed. Buenos Aires, Medica Panamericana, 2008. pp.85-100.

Tresguerres, J. A. F. Fisiologia Humana . 3a ed. Madrid, MacGraw-Hill Interamericana, 1992. pp.891-8.

Direccion para correspondencia:

Dr. Ricardo Cornejo U.

Depto. Ciencias Basicas

Facultad de Medicina

Universidad de La Frontera

Temuco--CHILE

Email: rene.cornejo@ufrontera.cl

Recibido: 04-09-2016

Aceptado:28-07-2017

Ricardo Cornejo (1), Roberto Jaramillo (2), Orlando Garrido (2) & Luis Vergara (1)

(1) Depto. de Ciencias Basicas, Facultad de Medicina, Universidad de La Frontera, Temuco, Chile.

(2) Instituto de Ciencias Marinas y Limnologicas, Universidad Austral, Valdivia, Chile. Financiado por Proyecto DI 15-0005.

Caption: Fig. 1. Micrografia optica correspondiente a tejido tiroideo de rata normal, evidenciando constituyentes tisulares y enfatizando foliculos, disposicion coloidal y celulas foliculares. Tincion Azul de Toluidina. 1000 X.

Caption: Fig. 2. Micrografia optica de tejido tiroideo de rata estimulado con LIR y dosis de 16 J/[cm.sup.2], evidenciando constituyentes tisulares y enfatizando foliculos, disposicion coloidal y celulas foliculares Tincion Azul de Toluidina. 1000 X.
Tabla I. Evaluaciones del tejido tiroideo de ratas normales.

                  Diametro       Area del coloide   Area del foliculo
              celular [micro]m   [micro][m.sup.2]   [micro][m.sup.2]

Promedio           3,669             252,336             326,471

Desviacion         0,718              98,047             108,343
estandar

Error              0,065              32,682             36,114
estandar

Tabla II. Evaluaciones del tejido tiroideo de ratas estimuladas con
dosis infrarrojas de 16 J/[cm.sup.2].

              Diametro       Area del           Area del
              celular        coloide            foliculo
              [micro]m   [micro][m.sup.2]   [micro][m.sup.2]

Promedio       5,921         180,857            242,452

Desviacion     1,493          79,319             93,997
estandar

Error          0,121          26,44              29,724
estandar
COPYRIGHT 2017 Universidad de La Frontera, Facultad de Medicina
No portion of this article can be reproduced without the express written permission from the copyright holder.
Copyright 2017 Gale, Cengage Learning. All rights reserved.

Article Details
Printer friendly Cite/link Email Feedback
Author:Cornejo, Ricardo; Jaramillo, Roberto; Garrido, Orlando; Vergara, Luis
Publication:International Journal of Morphology
Article Type:Ensayo
Date:Sep 1, 2017
Words:1874
Previous Article:Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy (ALPPS)/Asociacion de Particion Hepatica y Ligadura Portal para...
Next Article:Prevalence of Accessory Head (Humeral) of the Biceps Brachii. Literature Review/Prevalencia de Cabeza Accesoria (Humeral) del Musculo Biceps...
Topics:

Terms of use | Privacy policy | Copyright © 2018 Farlex, Inc. | Feedback | For webmasters