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Taxonomia y distribucion de los anofelinos en el estado de Veracruz, Mexico (Diptera: Culicidae, Anophelinae).

Material examinado. 11 ejemplares. Mexico: Veracruz, Mpo. Amatlan de los Reyes, Amatlan de los Reyes, 16-01-1948 (1 P, CAIM CulH/lam-05731); Mpo. Chinameca, Chinameca, 05-1942 (1 H, CAIM CulH/alf-02146); Mpo. Fortin, Fortin de las Flores, 11-1939 (1 H, CAIM CulH/alf-2180); Mpo. Martinez de la Torre, Zanja de Piedra, 15-10-1956 (2 L, CAIM CulH/lam-01919 y CAIM CulH/lam-01921); Mpo. Misantla, Misantla, 08-10-1956 (1 L, CAIM CulH/lam-01920); Mpo. Tierra Blanca, Tierra Blanca, sin fecha (1 MT, IB07-459); Mpo. Xalapa, Xalapa-Enriquez, sin fecha (1 H, CAIM CulH/lam-02153); Tabasco, Mpo. Teapa, Teapa, 10-1946 (1 P, CAIM CulH/lam-05725); (2 MT, CAIM CulH/lam-05736 y CAIM CulH/lam-05732).

Distribucion conocida. Brasil, Argentina, Uruguay, Paraguay, Bolivia, Venezuela, Colombia, Trinidad y Tobago, Guyana, Centroamerica, Antillas bajas y Mexico. (Knight & Stone 1977). En Mexico se ha encontrado en los estados de Campeche, Chiapas, Hidalgo, Michoacan, Nayarit, Oaxaca, San Luis Potosi, Tabasco, Tamaulipas y Veracruz (Vargas & Martinez-Palacios 1956).

Distribucion en Veracruz (Fig. 174). Mpo. Actopan: Actopan; Mpo. Alto Lucero: Alto Lucero, Xomotla; Mpo. Amatlan de los Reyes: Amatlan de los Reyes; Mpo. Banderilla: Banderilla; Mpo. Camerino Z. Mendoza: Cuidad Mendoza; Mpo. Chinameca: Chinameca; Mpo. Coatepec: Coatepec, Col. Bella Esperanza, Cosolapan, Pacho Viejo; Mpo. Cordoba: Col. Mexico, Amatlan de los Reyes, Cordoba, La Providencia, Los Filtros, Paso Coyol, Rio Tiburcio, Las Tinajas; Mpo. Cuichapa: Cuichapa, Ingenio la Providencia; Mpo. Cuitlahuac: Cuitlahuac; Mpo. Emiliano Zapata: Corral Falso, Chavarrillo, Mata de Cana, Paso Grande, Plan de Nacaxtle, Plan del Rio, La Venta de Lencero; Mpo. Fortin: Barranca de Cuiapichapan, Cuiapichapan, Fortin, Villa Union; Mpo. Huatusco: Laguna de Santo Domingo; Mpo. Ixtaczoquitlan: Escamela, Ixtaczoquitlan; Mpo. Xalapa: Xalapa-Enriquez; Mpo. Jilotepec: Esquilon; Mpo. Juchique de Ferrer: Juchique de Ferrer; Mpo. Manlio Fabio Altamirano: Martinez de la Torre; Mpo. Martinez de la Torre: Zanja de Piedra; Mpo. Mecayapan: Mecayapan; Mpo. Misantla, Misantla; Mpo. Nautla: Jicaltepec; Mpo. Ozulama: La Laja; Mpo. Pajapan: Pajapan; Mpo. Papantla: Papantla; Mpo. Paso de Ovejas: Puente de Jula, Tolome; Mpo. Paso del Macho: Paso del Macho; Mpo. Sotepan: Sotepan; Mpo. Tenaja de Mata: Omelaca; Mpo. Teocelo: Teocelo; Mpo. Tierra Blanca: Tierra Blanca; Mpo. Veracruz: Veracruz; Mpo. Yecuatla, Yecuatla.

Datos bionomicos. Las larvas se crian en aguas claras de arroyos pequenos con media sombra o soleados; se encuentran a los largo de las orillas con pastos de arroyos, y tambien en pozas tranquilas de los arroyos y en pozos de lluvia con pastos. Las hembras parecen no ser atraidas por los humanos, por lo que no se les encuentra en el intradomicilio (Rozeboom 1941). Los adultos son abundantes en el peridomicilio y en el intradomicilio (Horsfall 1955).

Importancia medica. Se ha encontrado infectado naturalmente con Plasmodium, sin embargo raramente se encuentra dentro del domicilio y pocas veces se alimenta de humanos, por lo que en general no se considera un vector primario de la malaria y solo podria ser de importancia cuando su densidad poblacional aumenta (Linthicum 1988).

Comentarios. Esta especie es muy similar a las restantes del subgenero Nyssorhynchus, sin embargo puede diferenciarse por las siguiente combinacion de caracteristicas presente en Anopheles argyritarsis. Larva: sedas 2-C separadas entre si por una distancia menor al diametro de uno de los alveolos que les da origen, sedas abdominales 1-II-VII bien desarrolladas; Pupa: seda 1-P grande y a manera de gancho; Hembra: Pata posterior con el tarsomero 5 revestido en su totalidad con escamas claras. Ala con la vena costal presentando la mancha clara humeral mas larga que la mancha oscura prehumeral; Macho, terminalia: edeago con un par de hojillas.

[FIGURA 178-180 OMITIR]

[FIGURA 181-184 OMITIR]

Parece ser una especie de amplia distribucion en Veracruz y comun en la zona centro del estado, donde se observan dos concentraciones de los puntos de presencia en localidades que se encuentran entre los 820 y los 1560 msnm. En el mapa de la distribucion potencial se observan ademas de estas, otras areas hacia en norte y sur que podrian ser adecuadas como habitat de esta especie.

Anopheles (Nyssorhynchus) strodei Root 1926

(Figs. 175-184)

Anopheles (Nyssorhynchus) strodei Root 1926: 711 (macho, pupa, larva). Localidad tipo: Agua Limpa cerca de Juiz de Fora, Minas Gerais, Brasil. Referencias adicionales.-Senevet 1934: 52 (pupa); Galvao & Lane 1936: 275 (macho, hembra, larva, huevo); Cova-Garcia 1939: 18 (larva), 25 (hembra); Pinto 1939: 425 (sinonimia); Galvao 1941: 516 (macho, hembra, larva); Rozeboom 1941: 102 (distribucion y bionomia); Rozeboom & Gabaldon 1941: 97 (taxonomia); Komp 1942: 71 (hembra), 120 (larva), 158 (macho); Rozeboom 1942: 240 (huevo; taxonomia); Galvao 1943: 143 (taxonomia), 149 (claves hembra, macho, larva); Cova-Garcia 1946: fig. 1 (huevo), 40 (larva), 91 (hembra), 126 (macho); Lassmann 1948: 10 (distribucion en Veracruz); Lane 1953: 270 (hembra, macho, pupa, larva, huevo); Horsfall 1955: 185 (distribucion y bionomia); Stone & Knight 1956: 280 (diseno del lectotipo); Vargas & Martinez-Palacios 1956: 55 (claves pupa), 129 (hembra, macho, larva); Vargas 1959: 382 (claves macho); Faran 1980: 123 (macho, hembra, pupa, larva; recuperado de la sinonimia con evansi).

Anopheles (Nys.) strodei var. ramosi Unti 1940: 489 (larva). Localidad tipo: Lorena, Sao Paulo, Brasil. Referencias adicionales.- Faran 1980: 123 (taxonomia, sinonimia).

Anopheles (Nys.) strodei var. strodei Unti 1940: 393 (biologia).

Anopheles (Nys.) strodei var. arthuri Unti 1941: 9 (huevo). Localidad tipo: Rio Paraiba Sao Paulo, Brasil. Referencias adicionales.- Faran 1980: 123 (taxonomia, sinonimia).

Anopheles (Nys.) strodei var. artigasi Unti 1941: 9 (huevo). Localidad tipo: Rio Paraiba, Sao Paulo, Brasil. Referencias adicionales.- Galvao 1943: 144 (sinonimia); Faran 1980: 123 (taxonomia, sinonimia).

Anopheles (Nys.)strodei var. albertoi Unti 1941: 9 (huevo). Localidad tipo: Rio Paraiba Sao Paulo, Brasil. Referencias adicionales.- Faran 1980: 123 (taxonomia, sinonimia).

Anopheles (Nys.)strodei var. lloydi Unti 1941: 10 (huevo). Localidad tipo: Panama. Referencias adicionales.- Faran 1980:123 (taxonomia, sinonimia).

Diagnosis. LARVA (Figs. 175-177). Cabeza: sedas 2,3-C sencillas, con cerdillas en la mitad apical; sedas 3-C de 0.6 veces la longitud de las 2-C; sedas 2-C separadas por una distancia igual al diametro de uno de los alveolos que les da origen. Antena: sedas 2-3-A puntiagudas. Torax: seda 1-P palmeada, con trece a diecisiete ramas delgadas lanceoladas; sedas 9, 10, 12-P sencillas, seda 11-P bifurcada; seda 1-M con treinta y una a treinta y cinco ramas, siendo las apicales mucho mas cortas que las laterales. Abdomen: sedas 0-II-VI con cuatro a nueve ramas moderadamente largas a largas; seda 1-I palmeada con doce a dieciseis ramas lanceoladas delgadas, poco pigmentadas; sedas 1-II-VII palmeadas con las ramas largas, pigmentadas y delgadas a moderadamente anchas; seda 2-V sencilla; sedas 6-IV-V sencilla; seda 13-V muy larga, extendiendose mas alla del margen caudal del segmento (Faran 1980). PUPA (Figs. 178-180). Trompeta: angusticorne, con un surco meatal profundo. Abdomen: seda 5-II con de tres a cinco ramas, moderadamente larga; suma de las ramas de las sedas 1-III, 5-III y 0-VI menor a dieciocho; seda 6-II sencilla o hasta con tres ramas, muy larga, de al menos 2.0 veces la longitud de 7-II; seda 9-II pequena, no pigmentada; seda 9-III corta, gruesa, no pigmentada a fuertemente pigmentada, menos de 2.0 veces la longitud de 9-II, 9-V ligeramente curvada, 9-VI curvada y moderadamente larga, 9-VII-VIII sencillas, adelgazadas hasta un apice muy fino, muy larga, de aproximadamente 0.5 veces la longitud del segmento. Paletas natatorias: margen con espiculas filamentosas que se extienden desde la parte distal del refuerzo del margen externo, hasta la mitad del margen interno; seda 1-P sencilla; seda 2-P sencilla o bifurcada (Faran Op. cit.). HEMBRA (Figs. 181-183). Cabeza: palpomeros 2 y 3 con pocas escamas claras en la superficie dorsal y con una banda apical de escamas claras, palpomero 4 con escamas blancas en la superficie mediolateral, palpomero 5 completamente blanco. Torax: escamas claras del escudo y escudete de color plateado; area del promontorio anterior con escamas largas que se extienden hacia en area acrostical. Ala: manchas claras generalmente blancas, ocasionalmente crema muy claro en la costa; mancha oscura basal de la costa pequena; mancha palida humeral a 2.0-4.0 de la mancha oscura basal; mancha palida subcostal de la costa a 0.25-0.50 de la mancha oscura subcostal. Patas: escamas claras de la coxa color blanco o crema muy claro; tarsomero 2 de la pata anterior claro en los 0.25 (0.18-0.35) apicales; tarsomero 3 de la pata anterior claros en los 0.5 (0.25-0.8) apicales; tarsomero 5 de la pata anterior generalmente totalmente dorado o pardo con pocas escamas claras apicales y en raras ocasiones con la mitad apical mas clara que la basal; tarsomero 5 de la pata media generalmente con una banda pequena color crema en los 0.3 apicales; pata posterior con el tarsomero 2 pardo en los 0.35-0.45 basales y el tarsomero 5 con una banda basal de escamas oscuras. Abdomen: esternito I con pocas sedas laterales y en ocasiones con escamas claras lanceoladas, terguitos II-VII con mechones caudolaterales de escamas oscuras (Faran Op. cit.). MACHO. Terminalia (Fig. 184): gonostilo mas corto que el gonocoxito, delgado, ensanchado en su parte basal; una gonostilar puntiaguda. Gonocoxito con escamas y cuatro a seis sedas mediotergales y una o dos sedas apicolaterales. Espina parabasal moderadamente delgada. Dos espinas accesorias fuertes. Una espina interna del mismo largo que la espina accesoria mas corta y atenuada apicalmente. Lobulo dorsal de la claspeta de aproximadamente 0.5 la longitud del gonocoxito, con tres hojillas lanceoladas, de un poco menos que 0.5 la longitud de la claspeta, una de estas con una proyeccion basomesal. Lobulo ventral de la claspeta de 0.45-0.52 la longitud del gonocoxito, con el apice expandido lateralmente, sin sedas y con un surco en forma de "V" entre los dos lobulos fusionados, con sedas basales evidentes en los margenes laterales. Edeago con el apice redondeado, sin hojillas. Noveno terguito sin lobulos laterales (Faran 1980).

[FIGURA 185-188 OMITIR]

[FIGURA 189-190 OMITIR]

Material examinado. 42 ejemplares. Mexico, Veracruz, Mpo. Chinameca, Chinameca, 01-03-1940 (8 L, CAIM CulH/lam-01961, CAIM CulH/lam-01962, CAIM CulH/lam-01963, CAIM CulH/lam-01964, CAIM CulH/lam-01965, CAIM CulH/ lam-01966, CAIM CulH/lam-01967 y CAIM CulH/lam-01968), 20-09-1941 (3 H, CAIM CulH/alf-02187, CAIM CulH/alf-02188 y CAIM CulH/alf-02189), 01-121941 (10 L, CAIM CulH/lam-01937, CAIM CulH/lam-01938, CAIM CulH/lam01939, CAIM CulH/lam-01940, CAIM CulH/lam-01941, CAIM CulH/lam-01942, CAIM CulH/lam-01943, CAIM CulH/lam-01944, CAIM CulH/lam-01945 y CAIM CulH/lam-01946), 20-12-1941 (1 H, CAIM CulH/alf-02167), 12-1941 (1 MT, CAIM CulH/lam-05744), 05-05-1942 (12 L, CAIM CulH/lam-01950, (2) CAIM CulH/lam01951, CAIM CulH/lam-01952, CAIM CulH/lam-01953, CAIM CulH/lam-01954, CAIM CulH/lam-01955, CAIM CulH/lam-01956, CAIM CulH/lam-01957, CAIM CulH/lam-01958, CAIM CulH/lam-01959 y CAIM CulH/lam-01960), 05-03-1958 (2 L, CAIM CulH/lam-01971 y CAIM CulH/lam-01972), 31-03-1958 (2 L, CAIM CulH/lam-01969 y CAIM CulH/lam-01970), sin fecha, (3 L, CAIM CulH/lam-01947, CAIM CulH/lam-01948 y CAIM CulH/lam-01949).

Distribucion conocida. Argentina, Bolivia, Brasil, Colombia, Costa Rica, Guyana Francesa, Guatemala, Guyana, Honduras, Mexico, Panama, Paraguay, Suriname, Trinidad y Tobago, Venezuela (WRBU 2008).

Distribucion en Veracruz. Mpo. Chinameca: Chinameca; Mpo. Las Choapas, Las Choapas; Mpo. Minatitlan: Las Choapas; Mpo. Veracruz: Paso de San Juan.

Datos bionomicos. Los estados inmaduros se desarrollan predominantemente en pozos. Adicionalmente ha sido colectada en huellas de animales, lagos, pantanos, margenes de arroyos, hoyos de rocas. Solo se desarrolla en agua dulce, generalmente expuesta totalmente a la luz del sol o con sombra parcial, pero ocasionalmente tambien en sombra total. Se encuentra comunmente en areas montanosas y planicies. Los inmaduros se asocian con abundante vegetacion como pastos, algas y Utricularia sp. Pueden tolerar grandes fluctuaciones de temperatura (17.5-33.0 [grados]C), pH (5.9-7.2) y cantidades de materia organica. Las hembras se alimentan del hombre y otros mamiferos, principalmente en el peridomicilio, raramente entran a las casas (Faran 1980).

Importancia Medica. Se ha encontrado infectado en la naturaleza con Plasmodium vivax (Pessoa & Paula-Souza 1937), sin embargo por sus habitos exofilos y zoofilos, se puede considerar un posible problema para la salud solo cuando se encuentra en altas densidades (Faran Op. cit.).

Comentarios. Esta especie es muy similar a las demas del subgenero Nyssorhynchus, pudiendose distinguir por la combinacion de las siguientes caracteristicas presente en Anopheles strodei. Larva: sedas 2-C separadas por una distancia igual al diametro de uno de los alveolos que les da origen, seda 1-P palmeada, sedas 9-P sencillas; Pupa: seda 7-CT con dos ramas, una de ellas evidentemente mas larga que la otra, seda 1-P nunca a manera de gancho; Hembra: tarsomero 5 de la pata anterior generalmente totalmente dorado o pardo con pocas escamas claras apicales, tarsomero 5 de la pata posterior con una banda basal de escamas oscuras, abdomen con el terguito II con mechones postero-laterales de escamas oscuras; Macho, terminalia: claspeta con los lobulos ventrales fusionados con sedas basales evidentes en los margenes laterales.

Esta especie parece ser abundante en el municipio de Chinameca, ya que todos los ejemplares revisados pertenecen a este municipio, sin embargo se tienen pocos puntos de colecta, lo que podria deberse a la falta de una colecta de anofelinos bien realizada,

En Veracruz esta especie puede llegar a ser de importancia medica, tomando en cuenta situaciones en las que su densidad poblacional es alta.

Genero Chagasia Cruz, 1906

Diagnosis. LARVA. Cabeza: sedas 3-C transformadas en una espina, situada en los angulos anteroexternos del clipeo. Torax: seda 2-P dividida cerca de la base en dos ramas gruesas. Abdomen: sedas 1-III-VII palmeadas, con las ramas muy ensanchadas en la porcion distal (forma de raqueta); placa del lobulo espiracular anterior con un proceso mediano anterior largo (Levi-Castillo 1945). PUPA. Abdomen: segmentos abdominales posteriores a partir del VI considerablemente delgados en comparacion con los segmentos anteriores seda 2-III-VII espiniforme, corta, gruesa y oscura (Vargas & Martinez-Palacios 1956). HEMBRA. Torax: escudete trilobulado, con tres grupos de sedas separados entre si; con dos mechones de escamas espatuladas largas en posicion anterior a la insercion del ala; postpronoto con sedas y escamas Patas: algunos tarsomeros con bandas claras. Ala: con escamas ovaladas claras y oscuras alternadas, sin que formen un patron de manchas definido (Levi-Castillo Op. cit.). MA CHO. Terminalia: una gonostilar corta y de punta redondeada. Gonocoxito corto, con sedas largas, sin escamas. Lobulos de la claspeta fusionados, membranosos, revestidos por numerosas sedas cortas. Edeago fuerte, sin hojillas (Levi-Castillo Op. cit.).

Chagasia bathana (Dyar 1928)

(Figs. 185-193)

Anopheles (Chagasia) bathanus Dyar 1928 In: Curry 1928: 244 (hembra, pupa, larva) Localidad tipo: Gatun, Panama.

Chagasia bathana (Dyar) 1928. Referencias adicionales.- Senevet 1934: 29 (pupa); Gabaldon et al. 1940: 58 (claves hembra, pupa, larva); Rozeboom 1941: 98 (distribucion y bionomia); Komp 1942: 46 (hembra), 82 (pupa, larva), 133 (macho); Levi-Castillo 1945: 17 (larva, pupa, hembra, macho); Knight & Chamberlain 1948: 11 (pupa); Lassmann 1948: 9 (distribucion en Veracruz); Lane 1953: 146 (hembra, pupa, larva, huevo); Horsfall 1955: 41 (distribucion, bionomia); Vargas & MartinezPalacios 1956: 52 (pupa), 62 (hembra, macho, larva); Villanueva 1961: 217 (distribucion, bionomia); Fauran & Pajot 1974: 100 (distribucion); Baerg & Boreham 1974: 631 (huevo).

Diagnosis. LARVA (Figs. 185-188). Presenta numerosas espiculas en todo el cuerpo. Cabeza: sedas 2-C muy grandes con largas ramas laterales, las 3-C transformadas en una espina, situada en los angulos anteroexternos del clipeo, las 4-C largas, ramificadas de la misma forma que las sedas 2-C. Antena: sedas 2-3-A cortas, puntiagudas. Torax: seda 1-P con un tallo grueso y varias ramas lanceoladas; seda 2-P dividida cerca de la base en dos ramas gruesas con ramas delgadas distales. Abdomen: sedas 1-III-VI palmeadas con ramas estrechas en la mitad basal y ensanchadas en la porcion distal (en forma de raqueta), cada una con un filamento terminal largo; seda 6-I-II largas y ramificadas; aparato respiratorio caracteristico con la placa del lobulo espiracular anterior con un proceso mediano anterior largo y la placa del lobulo espiracular posterolateral con un fleco de sedas aplanadas (Vargas & Martinez-Palacios 1956). PUPA (Figs. 189-190). Trompeta: laticorne, sin surcos. Abdomen: segmento VI con un marcado estrechamiento que se acentua mas en el VII, segmento VIII del mismo ancho que el VII pero con los angulos posteriores salientes; sedas 2-III-VII transformadas en una espina; sedas 9-V-VII anchas, puntiagudas, curvadas en forma de "S", seda 9-VII espiniforme, ligeramente curvada, 9-VIII espiniforme, recta. Paletas natatorias: con serraciones en el margen externo; seda 1-P espiniforme; 2-P bifurcada (Vargas & Martinez-Palacios Op. cit., Senevet 1934). HEMBRA (Figs. 191-192). Cabeza: occipucio con escamas bifurcadas; con sedas y escamas postpronotales. Torax: escudete ligeramente trilobulado, con sedas confinadas a los lobulos; con un mechon de escamas negras cerca de la base del ala. Ala: revestida de escamas ovaladas, anchas, negras, pardas y blanco-amarillentas entremezcladas, sin que formen un patron de manchas definido. Patas: oscuras con manchas blancas; apices de tibias y femures con escamas claras; tarsomero 1 de la pata trasera con cinco anillos de escamas blancas. Abdomen: integumento pardo oscuro; con sedas oscuras y sin escamas (Curry 1928, Vargas & Martinez-Palacios Op. cit., Wilkerson et al. 1993). MACHO. Terminalia (Fig. 193): gonostilo mas largo que el gonocoxito con la porcion basal ensanchada, una gonostilar pequena y con la punta redondeada. Gonocoxito corto, con sedas largas, sin escamas. Lobulos de la claspeta fusionados, membranosos, revestidos por numerosas sedas cortas. Edeago fuerte, con la parte apical ligeramente curvada, sin hojillas apicales. Noveno terguito delgado en la porcion central; muy ensanchado lateralmente; con dos grupos de sedas largas a los lados de la linea media (Vargas & Martinez-Palacios Op. cit.).

[FIGURA 191-193 OMITIR]

Material examinado. 6 ejemplares: Mexico: Veracruz, Mpo. Acayucan, Acayucan, 03-1945 (1 H, CAIM CulH/lalf-02359; 1 M, CAIM CulH/lalf-02358); Chiapas, Mpo. Palenque, Palenque, 01-04-1942 (2 L, CAIM CulH/lam-01976, y CAIM CulH/lam01974); Mpo. Indeterminado, Macachi, 28-04-1942 (1 L, CAIM CulH/lam-01975); Tabasco, Mpo. Teapa, San Joaquin Teapa, 20-01-1955 (1 H, CAIM CulH/alf 02356).

Distribucion. Panama, Nicaragua, Belize, Guatemala, Guyana Francesa, Mexico, Venezuela, Colombia, Ecuador, Peru, Costa Rica (Fauran & Pajot 1974, Knight y Stone 1977). En Mexico se ha colectado en los estados de Chiapas, Tabasco y Veracruz (Vargas & Martinez-Palacios 1956).

Distribucion en Veracruz. Mpo. Acayucan: Acayucan: Mpo. Sayula: Sayula.

Datos bionomicos. Las larvas se encuentran en agua limpia, con movimiento, con sombra o media sombra y en ocasiones con completa exposicion a la luz solar, siendo mas abundantes entre las raices de los arboles y en los margenes con pastos. Estan asociadas a vegetacion helofita y flotante (Villanueva 1961, Horsfall 1955).

Comentarios. Esta especie por pertenecer a otro genero, presenta caracteristicas morfologicas muy distintivas con respecto a las demas especies de anofelinos presentes en el estado, mismas que se tratan en la diagnosis.

Se trata de una especie rara en Veracruz, estando distribuida en un area muy pequena al sur del estado, unicamente ha sido informada en dos localidades localizadas entre los 80 y los 100 msnm. Podria ser que esta distribucion tan restringida se deba, como en otras especies, a la falta de una buena colecta de anofelinos.

Chagasia bathana nunca ha sido incriminada como vector de ninguna enfermedad, y considerando que es una especie rara en el estado, su importancia medica es nula.

DISCUSION

Se considera que Veracruz es una entidad rica en especies de anofelinos, ya que si se compara el numero de especies informadas para este estado con el de otras colindantes, se asume que el primero tiene una mayor riqueza de especies de la subfamilia Anophelinae, ya que se han informado 18 especies para Veracruz, 13 para Chiapas, 12 para Tabasco, 10 para San Luis Potosi, 7 para Oaxaca, 5 para Tamaulipas, 5 para Hidalgo, 2 para Puebla y una para Tlaxcala. Ademas de que estas 18 especies corresponden al 64% de las conocidas para Mexico (28 especies) y al 30% de Norte y Centroamerica.

En el presente trabajo se reunen por primera vez las descripciones de las fases de larva, pupa y adultos de las especies de anofelinos de Veracruz, asi como las claves para su identificacion. En el caso de las pupas, se presentaron dificultades para su descripcion y elaboracion de las claves ya que los trabajos anteriores que abordan estos temas se encuentran dispersos y en muchos casos la descripcion es muy vaga. Esto se debe a que a partir de los anos 60s, los trabajos referentes a la morfologia de anofelinos se han enfocado a las especies vectoras de malaria. Por otro lado, en general las pupas no se utilizan para la identificacion de las especies, sino que se espera a que emerja el adulto para realizar la determinacion, lo que contribuye a la falta de estudios sobre morfologia de pupas de anofelinos. Es por esto que se recomienda que en un futuro se realicen mas trabajos sobre morfologia de pupas de anofelinos, en primer lugar porque en algunos casos, como el de An. bradleyi y An crucians, la determinacion taxonomica por caracteristicas morfologicas hasta el nivel de especie solo se puede realizar en las fases de larva y pupa; y en segundo lugar porque las caracteristicas de los organismos se conservan mejor en preparaciones permanentes que en organismos adultos montados en alfiler, por lo que si se quiere realizar una consulta de alguna coleccion historica, las primeras resultaran de mayor ayuda.

Se considera que 14 de las especies de anofelinos presentes en Veracruz tienen importancia medica por su condicion como vectores de los plasmodios que causan la malaria humana, pudiendose dividir en tres grupos de riesgo.

En el primer grupo se encuentran las especies mas significativas: Anopheles (Ano.) pseudopuntipennis y Anopheles (Nys.) albimanus, ya que ambos son vectores primarios comprobados en varias regiones de Mexico y America, ademas de estar ampliamente distribuidos en el estado.

En un segundo grupo de especies con interes regional o de vectores secundarios se encuentran las siguientes especies que se recomienda esten bajo vigilancia, aunque no se tenga la certeza de que estas funjan como vectores en Veracruz: Anopheles (Ano.) quadrimaculatus, ya que es un vector primario en Estados Unidos pero no tiene una distribucion muy amplia en el estado; Anopheles (Ano.) punctimacula que ha sido incriminada como vector de malaria en Centro y Sudamerica, pero en el caso de Veracruz nunca ha sido incriminada, a pesar de que parece ser comun en el centro del estado; Anopheles (Ano.) vestitipennis, que ha sido incriminada como vector de malaria en Chiapas, pero no lo ha sido en Veracruz, a pesar de su amplia distribucion en el estado; Anopheles (Nys.) argyritarsis que se considera tienen una distribucion amplia y es comun en la zona centro del estado, ademas de ser vector secundario en otras zonas; Anopheles (Ano.) neomaculipalpus, que se considera un vector secundario de malaria en otras regiones, en zonas recientemente colonizadas por el hombre; Anopheles (Ano.) crucians, que se ha incriminado como vector de malaria en Estados Unidos; Anopheles (Ano.) bradleyi, que se ha logrado infectar con plasmodios experimentalmente; y Anopheles (Nys.) strodei, que se considera vector secundario de malaria en otras regiones.

En el tercer grupo de bajo riesgo, se encuentran tres especies que solo han sido informadas para una localidad, pero que se alguna manera han sido incriminadas como vectores de malaria: Anopheles (Ker.) neivai, que es un vector comprobado en otras regiones; Anopheles (Ano.) walkeri, que se considera un vector secundario en Estados Unidos; y por ultimo Anopheles (Ano.) punctipennis, que se ha infectado con plasmodios experimentalmente. Las especies restantes nunca han sido incriminadas como vectores de ninguna enfermedad.

Las especies restantes corresponderian a especies no riesgosas ya que nunca han sido incriminadas como vectores de patogenos, no obstante, Anopheles (Ano.) apicimacula, se considera debiera mantenerse bajo vigilancia por su distribucion en el estado.

En cuanto a la distribucion potencial de las especies se sabe que el algoritmo genetico GARP permite predecir areas potenciales de distribucion de las especies, aun en regiones donde no se ha colectado y en situaciones en las que unicamente se cuenta con datos de presencia de las especies (Peterson 2001), como es el caso de datos obtenidos de colecciones historicas. Estos modelos se han aplicado para conocer la distribucion de insectos de importancia medica (Foley et al. 2008, Levine et al. 2004a, 2004b, Peterson et al. 2005, Sandoval-Ruiz et al. 2008; Sweeney et al. 2006). Sin embargo, se debe de tomar en cuenta que estos mapas predicen una distribucion potencial, mas no la distribucion actual de las especies (Foley et al. 2008), ya que se toman en consideracion los registros por localidad de colecta y factores como la temperatura, humedad y otros datos de indole topografica. Estos son datos recientes, por lo que en algunos casos la distribucion potencial puede dejar fuera algunos de los puntos donde hace tiempo se habia encontrado la especie. La mayoria de los datos de presencia con los que se elaboraron los mapas de distribucion, son de mediados del siglo XX mientras que las coberturas bioclimaticas utilizadas son actuales. En anos recientes la vegetacion se ha fragmentado severamente y muchos factores que influyen en la distribucion de los mosquitos se han alterado, como por ejemplo, la calidad de los cuerpos de agua por contaminacion. No obstante, se ha demostrado que se pueden obtener distribuciones potenciales aceptables utilizando registros pasados y actuales, con coberturas bioclimaticas actuales (Raxwothy et al. 2003). Es por esto que se considera que algunos de los mapas de distribucion potencial obtenidos en este estudio pueden tomarse como una base para el posterior desarrollo de mapas de riesgo de transmision de malaria en Veracruz.

Para poder desarrollar en un futuro los mapas de riesgo de transmision de malaria en el estado, se necesita reconocer y evaluar las variables climaticas que influyen en la distribucion de cada una de las especies de interes, asi como la variacion de estas a traves del tiempo, ademas de incluir otros factores como la demografia y el cambio de uso de suelo.

AGRADECIMIENTOS. Esta es una contribucion producto del proyecto "Estratificacion de tres enfermedades prioritarias en zonas de riesgo con base en sus insectos vectores en el estado de Veracruz" (FOMIX- CONACYT- Gobierno del Estado de Veracruz de Ignacio de la Llave- Salud, No. 68317), Coordinado por Sergio Ibanez-Bernal, del Instituto de Ecologia, A. C. (INECOL), y en el cual participan los Servicios de Salud de Veracruz (SESVER) y el Instituto de Diagnostico y Referencia Epidemiologicos, Secretaria de Salud, Mexico (InDRE). Adriana Beltran Aguilar agradece la beca de Ayudante de Investigacion I otorgada mediante este proyecto por CONACYT. A Heron Huerta Jimenez por las facilidades brindadas para la consulta de la Coleccion de Artropodos con Importancia Medica (CAIM), del InDRE. Los autores tambien agradecen a tres revisores anonimos sus comentarios, los cuales enriquecieron el presente trabajo.

Resibido: 03/03/2011; aceptado: 24/08/2011

LITERATURA CITADA

Agramonte, A. 1900. Los mosquitos malaricos. El Progreso Medico, 10: 455-465.

Aitken, T. H. G. 1945. Studies on the Anophelinae Complex of Western America. University of California Publications in Entomology, 7: 273-364.

Alvarado, C. A. & R. L. Heredia. 1947. Observaciones sobre una nueva variedad del Anopheles (A.) pseudopunctipennis Theobald 1901, encontrada en la provincia de Tucuman (Nota previa). Anales del Instituto de Medicina Regional, 2: 73-78.

Baerg, D. C. & M. M. Boreham. 1974. Anopheles neivai Howard, Dyar & Knab: laboratory observations on the life cycle and description of the egg stage (Diptera: Culicidae). Journal of Medical Entomology, 11: 629-630.

Bautista-Garfias, C. R., S. Mercado-Sanchez & A. Morilla-Gonzalez. 1977. Experimental infection of Anopheles albimanus and Culex thriambus mosquitoes with Venezuelan Equine Encephalomyelitis Virus TC-85 strain. Mosquito News, 72: 15-18.

Belkin, J. N. 1952. The homology of the chaetotaxy if inmature mosquitoes and a revised nomenclature for the chaetotaxy of the pupae. Proceedings of the Emtomological Society of Washington, 54: 115130.

Belkin, J. N. 1968. The type specimens of New World mosquitoes in European museums. Contributions of the American Entomology Institute, 3: 1-69.

Belkin J. N., R. X. Schick & S. J. Heinemann. 1965. Mosquitoes originally described from Middle America. Contributions of the American Entomology Institute, 1: 1-95.

Belkin J. N., R. X. Schick & S. J. Heinemann. 1966. Mosquitoes originally described from North America. Contributions of the American Entomology Institute, 1: 1-39.

Belkin, J. N., R. X. Schick & S. J. Heinemman. 1968. Mosquitoes originally described from Argentina, Bolivia, Chile, Paraguay, Peru and Uruguay. Contributions of the American Entomology Institute, 4: 11-29.

Belkin, J. N., S. J. Heinemann & W. A. Page. 1970. The Culicidae of Jamaica. Contributions of the American Entomology Institute, 6: 1- 458.

Belkin, J. N., R. X. Schick & S. J. Heinemman. 1971. Mosquito studies (Diptera: Culicidae). XXV. Mosquitoes originally described from Brazil. Contributions of the American Entomology Institute, 7: 1-64.

Bellamy, R. E. & R. P. Repass. 1950. Notes on the ova of Anopheles georgianus King. Journal of the National Malaria Society, 9: 84-88.

Blanchard, R. 1902. Nouvelle note sur les moustiques. Comptes rendus de la Societe de Biologie, 54: 793-795.

Bonne, C. & J. Bonne-Wepster. 1925. Mosquitoes of Surinam. A study on Neotropical mosquitoes. Vol. 13. Royal Colonial Institute of Amsterdam. 558 pp.

Bordas, E., L. Navarro & W. G. Downs. 1951. Estudio comparativo de los habitos del adulto de tres especies de Anopheles mexicanos. Revista del Instituto de Salubridad y Enfermedades Tropicales, 12: 35-38.

Boyd, M. F. 1949. Malariology. A comprehensive survey of all aspects of this group of diseases from a global standpoint. Vol. 1. 787 pp.

Boyd, M. F. & W. K. Stratman-Thomas.1934. The comparative susceptibility of Anopheles quadrimaculatus Say and Anopheles crucians Wied. (inland variety) to the parasites of human malaria. The American Journal of Hygiene, 20: 247-257.

Boyd, M. F., W. K. Stratman-Thomas & S. F. Kitchen. 1935. On the relative susceptibility of Anopheles quadrimaculatus to Plasmodium vivax and Plasmodium falciparum. The American Journal of Tropical Medicine, 15: 485-493.

Boyd, M. F. & S. F. Kitchen. 1936. The comparative susceptibility of Anopheles quadrimaculatus Say and Anopheles punctipennis, Say to Plasmodium vivax, Grassi and Feletti, and Plasmodium falciparum, Welch. The American Journal of Tropical Medicine, 16: 67-71.

Boyd, M. F., S. F. Kitchen & J. A. Mulrennan. 1936. On the relative susceptibility of the inland and coastal varieties of A. crucians Wied. to P. falciparum Welch. The American Journal of Tropical Medicine, 16: 159-161.

Bradley, G. H. 1932. On the identification of Anopheles mosquito larvae in Florida. Proceedings of the Entomological Society of Washington, 34: 41-43.

Bradley, G. H. 1936. On the identification of mosquito larvae of the genus Anopheles occurring in the United States (Diptera: Culicidae). Southern Medical Journal, 29: 859-861.

Breeland, S. G. 1951. Identification of the early larval instars of three comon anophelines of Southern Georgia, USA. Journal of the National Malaria Society, 10: 224-232.

Brethes, J. 1912. Los mosquitos de la Republica Argentina. Boletin del Instituto de la Patagonia, 1: 1-48.

Brethes, J. 1926. Notas sobre los anophelinos argentinos. Physis, 8: 305-315.

Carpenter, S.J. & W. J. LaCasse. 1955. Mosquitoes of North America (North of Mexico). University of California Press. 495 pp.

Carpenter, S. J., W. W. Middlekauff & R. W. Chamberlain. 1946. The Mosquitoes of the Southern United States, East of Oklahoma and Texas. The University of Notre Dame, Notre Dame, Ind. 292 pp.

Christophers, S. R. 1924. Provisional list and reference catalogue of the Anophelini. Indian Medical Research, 3: 1-105.

Coetzee M., J. G. Estrada-Franco, A. A. Wunderlinch & R. H. Hunt. 1999. Cytogenetic evidence for species complex within Anopheles pseudopunctipennis Theobald (Diptera: Culicidae). The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 60: 649-653.

Coquillet, D. W. 1902. New forms of Culicidae from North America. Journal of the New York Entomological Society, 10: 191-194.

Correa, R. R. 1942. Das formas evolutivas do Anopheles (Anopheles) eiseni Coquillet, 1902. Archivos de Hygiene e Saude Publica, 7: 25-33.

Cova-Garcia, P. 1939. Notas sobre los anofelinos de Venezuela y su identificacion. Publicaciones de la Division de Malariologia. Ministerio de Sanidad y Asistencia Social de Caracas, Venezuela. 2: 1-34.

Cova-Garcia, P. 1946. Notas sobre los anofelinos de Venezuela y su identifcacion. XII Conferencia Sanitaria Panamericana. Cuadernos Amarillos No 1. Ed. Grafalit. Caracas, Venezuela. 208 pp.

Cruz, O. G. 1906. Um novo genero da sub-familia Anophelina. Brazil-medico, 20: 199-200.

CSVA, 2006. Consejo del Sistema Veracruzano del Agua. Participacion del estado de Veracruz en el IV Foro Mundial del Agua, 2006. Disponible en: www.csva.gob.mx/foromundial/Material/ doc_CSVA_070206. pdf

Curry, D. P. 1928. A new anophelinae mosquito Anopheles (Chagasia) bathanus Dyar, discovered in the Canal Zone. American Journal of Tropical Medicine, 8: 243-248.

Curry, D. P. 1931. Anopheles (Anopheles) neomaculipalpus. A new species of the Arribalzagaia group of Anopheles from Panama. The American Journal of Hygiene, 13: 643-647.

Darsie, R. F. 1949. Pupae of the Anophelinae mosquitoes of Northeastern United States (Diptera, Culi cidae). Rev. de Entomologia, 20: 509-530.

Darsie, R. F. & R. A. Ward. 2005. Identification and geographical distribution of the mosquitoes of North America, North of Mexico. University Press of Florida, Gainesville, USA. 383 pp.

De Leon, J. R. 1938. El Anofelismo de altura en Guatemala. Boletin de la Direccion General de Sanidad Publica, 9: 411-429.

DGEPI. 2009 Direccion General de Epidemiologia. Vigilancia epidemiologica semana 20. Disponible en: www.dgepi.salud.gob.mx/boletin/2009/sem20/pdf/ cua7.pdf

Diario Oficial de la Federacion. 10 de abril de 2006. Criterios para la certificacion de areas geograficas que han logrado la eliminacion de la transmision de paludismo.

Dozier, H. L. 1936. Observations on breeding places and winter activities of mosquitoes in the vicinity of New Orleans, Louisiana. Proceedings of the Entomological Society of Washington, 38: 148155.

Dyar, H. G. 1918. Notes on American Anopheles. lnsecutor lnscitiae Menstruus, 6: 141-151.

Dyar, H. G. 1925. Note on bromelicolous Anopheles (Diptera: Culicidae). lnsecutor lnscitiae Menstruus, 13: 25-27.

Dyar, H. G. & F. Knab. 1906a. Diagnoses of new species of mosquitoes. Proceedings of the Biological Society of Washington, 12: 133-142.

Dyar, H. G. & F. Knab. 1906b. Notes on some American mosquitoes with descriptions of new species. Proceedings of the Biological Society of Washington, 19: 159-172.

Dyar, H. G. & F. Knab. 1907. Descriptions of new mosquitoes from the Panama Canal Zone. Jounal of the New York Entomological Society, 15: 197-212.

Edwards, F. W. 1932. Genera Insectorum. Diptera. Fam. Culicidae. Fascicle 194. Belgica. 258pp.

Estrada-Franco, J. G., M. C. Ma, G. C. Lanzaro, R. Gwadz, C. Galvan-Sanchez, J. L. Cespedes, R. Vargas-Sagarnaga & R. Rodriguez. 1993a. Genetic Evidence of a Species Complex in Anopheles pseudopunctipennis sensu lato. Bulletin of PAHO, 27: 26-31.

Estrada-Franco J. G., M. C. Ma, R. Gwadz, R. Sakai, G. C. Lanzaro, A. Laughinghouse, C. Galvan-Sanchez, J. L. Cespedes & R. Vargas-Sagarnaga. 1993b. Evidence through crossmating experiments of a species complex in Anopheles pseudopunctipennis sensu lato: a primary malaria vector of the American Continent. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 49: 746-755.

Evans, A. M. 1922. Notes on Culicidae in Venezuela, with descriptions of new species. II. Annals of Tropical Medicine and Parasitology, 16: 213-222.

Faran, M. E. 1980. A revision of the Albimanus section of the subgenus Nyssorhynchus of Anopheles. Contributions of the American Entomology Institute, 15: 1-214.

Fauran, P. & F. X. Pajot. 1974. Complement to the catalog of the Culicidae recorded from French Guiana (South America). Mosquito Systematics, 6: 99-110.

Fitch, A. 1847. Winter insects of Eastern New York. American Journal of Agriculture Science, 5: 274-284.

Floch, H. & E. Abonnenc. 1951. Anopheles de la Guyane Francaise. Archives de l'Institute Pasteur de la Guyane et du territoire d l'Inini, 296: 1-91.

Floore, T. G., B. A. Harrison & B. F. Eldridge. 1976. The Anopheles (Anopheles) crucians subgroup in the United States (Diptera: Culicidae). Mosquito Systematics, 8: 1-109.

Foley, L. H., L. M. Rueda, A. T. Peterson & R. C. Wilkerson. 2008. Potential distribution of two species in the medically important Anopheles minimus complex (Diptera: Culicidae). Journal of Medical Entomology, 45: 852-860.

Gabaldon, A., J. Herrera, M. A. Perez-Vivas & J. A. Rausseo. 1940. Estudio sobre anofelinos, serie I. 6. Chagasia bathanus Dyar, 1928: su hallazgo en Venezuela y nota sobre variaciones morfologicas de las pupas. Publicaciones de la Division de Malariologia, 5: 57-62.

Galvao, A. L. A. 1941. Notas sobre algunos anofelinos do sub-genero Nyssorhynchus do Norte do Brasil. Revista do Biologia e Hygiene do Sao Paulo, 11: 92-96

Galvao, A. L. A. 1943. Chaves para a desterminacao das especies do subgenero Nyssorhynchus do Brasil. Archivos de Hygiene e Saude Publica, 8: 141-162.

Galvao, A. L. A. & J. Lane. 1936. Notas sobre os Nyssorhynchus de Sao Paulo. Annaes da Faculdade de Medicina de Sao Paulo, 12: 269-288.

Gerry, B. I. 1932. Morphological studies of the female genitalia of Cuban mosquitoes. Annals of the Entomological Society of America, 24: 31-75.

Gobierno del Estado de Veracruz. 2008. El Entorno y la Poblacion (Semblanza de Veracruz). Disponible en: www.veracruz.gob.mx.

Goeldi, E. A. 1905. Os Mosquitos no Para. Memorias do Museu Goeldi. Vol. 4. Brasil. 154 pp.

Gomez-Dantes H & A. E. Birn. 2000. Malaria and social movements in Mexico: the last 60 years. Parassitologia, 42: 69-85.

Gorham, J. R., C. J. Stojanovich & H. G. Scott. 1973. Clave ilustrada para los mosquitos anofelinos de Sudamerica occidental. Mosquito Systematics, 5: 97-156.

Gratz, N. G. 1999. Emerging and resurging vector-borne diseases. Annual Review of Entomology, 44: 51-75.

Harbach, R. E. & K. L. Knight. 1980. Taxonomists' glossary of mosquito anatomy. Ed. Plexus Publishing. E. U. A. 415 pp.

Harbach, R. E. & T. M. Howard. 2007. Corrections in the status and rank of names used to denote varietal forms of mosquitoes (Diptera: Culicidae). Zootaxa, 1542: 35-48.

Heinemann, S. J. & J. N. Belkin. 1977. Collection Records of the Project "Mosquitoes of Middle America" 9. Mexico (MEX, MF, MT, MX). Mosquito systematic, 9: 483-534.

Herms, W. B. & H. F. Gray. 1940. Mosquito control. The Commonwealth Fund, New York. 317 pp.

Hijmans, R. J., S. E. Cameron, J. L. Parra, P. G. Jones & A. Jarvis. 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology, 25: 1965-1978.

Hoffmann, C. C. 1931. Anopheles pseudopunctipennis y su relacion con el paludismo en la Republica Mexicana. Traduccion del trabajo presentado por invitacion especial del "Nacional Malaria Comittee" de los Estados Unidos en su Sesion Anual celebrada en Nueva Orleans del 17 al 20 de noviembre de 1931. Revista de Salubridad, 2: 179-187.

Hoffmann, C. C. 1938. La formacion de razas en los Anopheles mexicanos II. Anopheles albimanus y sus variedades en la Republica Mexicana. Anales del Instituto de Biologia, 9: 167-180.

Hoffmann, C. C. 1939. La formacion de razas de Anopheles mexicanos III. Anopheles chiriquiensis Komp en el interior del estado de Chiapas. Anales del Instituto de Biologia, 10: 347-352.

Horsfall, W. R. 1955. Mosquitoes, their bionomics and relation to disease. The Ronald Press Company. New York. 723 pp.

Howard, L. O., H. G. Dyar & F. Knab. 1912-1917. The mosquitoes of North and Central America and the West Indies. Carnegie Institute of Washington Publication 159, 4 Vols. 1064 pp.

Hurlbut, H. S. 1938a. Study of the larval chaetotaxy of Anopheles walkeri Theobald. The American Journal of Hygiene, 28: 149-173.

Hurlbut, H. S. 1938b. Further notes on the overwintering of the eggs of Anopheles walkeri Theobald with a description of the eggs. The Journal of Parasitology, 24: 521-526.

Ibanez-Bernal, S. 1988. Perspectivas de la investigacion entomologica del paludismo en Mexico. Folia Entomologica Mexicana, 76: 249-264.

Ibanez-Bernal, S., S. Strickman y C. Martinez-Campos. 1996. Culicidae (Diptera). In: Llorente, B. J., A. N. Garcia y E. Gonzalez (Eds.). Biodiversidad, taxonomia y biogeografia de artropodos de Mexico: hacia una sintesis de su conocimiento. Universidad Nacional Autonoma de Mexico. 660 pp.

INEGI, 2009. Mapa de Fisiografia de Veracruz. Disponible en: http://mapserver.inegi.org.mx/geogra fia/espanol/estados/ver/fisio.cfm?c=444&e=11

Johnson, C. W. 1919. A revised list of the Diptera of Jamaica. Bulletin of the American Museum of Natural History, 41: 421-449.

King, W. V. 1939. Varieties of Anopheles crucians Wied. The American Journal of Tropical Medicine, 19: 461-471.

King, W. V. & G. H. Bradley. 1941. General morphology of Anopheles and classification of Neartic species. American Association for the Advancement of Science, 15: 63-87.

King, W. V., G. H. Bradley & T. E. McNeel. 1939. The mosquitoes of the Southeastern States. United States Department of Agriculture, Miscellaneous Publication, 336: 1-91.

Kitzmiller, J. B., D. Joslyn & H. W. Kreutzer. 1974. The Salivary gland crhomosomes of Anopheles walkeri Theobald. Mosquito News, 34: 22-28.

Knight, K. L & R. W. Chamberlain. 1948. A new nomenclature for the chaetotaxy of the mosquito pupa, based on a comparative study of the Genera (Diptera: Culicidae). Proceedings of the Helmintological Society of Washington, 15: 1-18.

Knight, K. L. & A. Stone. 1977. Catalog of the mosquitoes of the World (Diptera: Culicidae). 2a ed. Entomological Society of America. 611 pp.

Komp, H. W. 1937. The species of the Subgenus Kerteszia of Anopheles (Diptera: Culiicidae). Annals of the Entomological Society of America, 30: 492-529.

Komp, W.H.W. 1941. The classification and identification of the Anopheles mosquitoes of Mexico, Central America, and the West Indies. The American Association for the Advancement of Science, Publications, 15: 88-97.

Komp, W. H. W. 1942. The Anopheline mosquitoes of the Caribbean region. National Institute of Health Bulletin, 179: 1-195.

Kreutzer, R. D. 1977. Hybridization between the Nearctic Anopheles punctipennis and the Paleartic Anopheles atroparvus. Canadian Journal of Genetics and Cytology, 19: 265-270.

Kreutzer, R. D. & J. B. Kitzmiller. 1971. Hibridization between Anopheles crucians and Anopheles bradleyi. Evolution, 25: 195-206.

Kreutzer, R. D. & J. B. Kitzmiller. 1972. Hybridization between two species of mosquitoes Anopheles punctipennis Say and Anophelesperplexens Ludlow. Journal of Heredity, 63: 191-196.

Kreutzer, R. D., J. B. Kitzmiller & M. G. Rabbani. 1975. The salivary gland chromosomes of Anopheles argyritarsis compared with those of certain other species in the subgenus Nyssorhynchus. Mosquito News, 35: 354-365.

Kumm, H.W. 1941. The eggs of some Costa Rican anophelines. American Journal of Tropical Medicine, 21: 91-102.

Lahille, F. 1912. Sobre un Anopheles, una Stegomyia y la notacion de las nervaduras alares de los mosquitos. Anales del Museo Nacional de Buenos Aires, 23: 253-263.

Lane, J. 1953. Dixinae, Chaoborinae and Culicinae, tribes Anophelini, Toxorhynchitinae and Culicini (Genus Culex only). Neotropical Culicidae Vol. I. University of Sao Paulo, Brasil. 548 pp.

Lassmann, G. W. 1948. Distribucion de los Anopheles en el Estado de Veracruz. Boletin de los Servicios Coordinados de Salubridad y Asistencia en el Estado de Veracruz, 4: 6-11.

Levi-Castillo, R. 1944. El complejo "Pseudopunctipennis" en el Ecuador (Diptera -Culicidae). Universidad de Guayaquil, Ecuador, 28: 1-7.

Levi-Castillo, R. 1945. Los anofelinos de la Republica del Ecuador. Vol. 1. Disponible en: http://www. mosquitocatalog.org/pdfs/077800-1.pdf

Levine, R. S., A. T. Peterson & M. Q. Benedict. 2004a. Geographic and ecologic distributions of the Anopheles gambiae complex predicted using a genetic algorithm. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 70: 105-109.

Levine, R. S., A. T. Peterson & M. Q. Benedict. 2004b. Distribution of members of Anopheles quadrimaculatus Say s.l. (Diptera: Culicidae) and implications for their roles in malaria transmission in the United States. Journal of Medical Entomology, 41: 607-613.

Linley, J. R. & P. E. Kaiser. 1994. The eggs of Anopheles punctipennis and Anopheles perplexens (Diptera: Culicidae). Mosquito Systematics, 26: 43-56.

Linley, J. R., P. E. Kaiser & A. F. Cockburn. 1993. A description and morphometric study of the eggs of species of the Anopheles quadrimaculatus complex (Diptera: Culicidae). Mosquito systematic, 5: 124-147.

Linthicum, K. J. 1988. A revision of the Argyritarsis section of the subgenus Nyssorhynchus of Anopheles (Diptera: Culicidae). Mosquito Systematics, 20: 98-271.

Loyola E. G., J. I. Arredondo-Jimenez, M. H. Rodriguez, D. N. Brown & M. Vaca-Marin. 1991. Anopheles vestitipennis, the probable vector of Plasmodium vivax in the Lacandon forest of Chiapas, Mexico. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 85: 171-174.

Loyola E. G., L. Gonzalez-Ceron, M. H. Rodriguez, J. I. Arredondo-Jimenez, S. Bennett & D. N. Brown. 1993. Anopheles albimanus (Diptera: Culicidae) host selection patterns in three ecological areas of the Coastal Plains of Chiapas, Southern Mexico. Journal of Medical Entomology, 30: 518-523.

Ludlow, C. S. 1919. Mew mosquitoes from Panama. Psyche, 26: 166-169.

Manguin, S., D. R. Roberts, E. L. Peyton, E. Rejmankova & J. Pecor. 1996. Characterization of Anopheles pseudopunctipennis larval habitats. Journal of the Mosquito Control Association, 12: 619-626.

Manguin S., D. R. Roberts, E. L. Peyton, I. Fernandez-Salas, M. Barreto, R. Fernandez, R. Elgueta, R. Martinez & M. H. Rodriguez. 1995. Biochemical systematics and population genetic structure of Anopheles pseudopunctipennis, vector of malaria in Central and South America. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 53: 362-377.

Mann, F. G. 1950. Dos nuevas sub-especies del Anopheles pseudopunctipennis Th. 1901. Biologica, 13-21: 33-42.

Martinez-Palacios, A. & D. J. Pletsch. 1963. Highlights of mosquito investigation and control in Mexico: past, present and future. Proceedings of the fiftieth annual meeting of the New Jersey Mosquito Extermination Association, pp. 72-80.

Martini, E. 1932. Dos nuevos mosquitos Anopheles, procedentes del Estado de Chiapas, Mexico. Revista Mexicana de Biologia, 12: 98-102.

Martini, E. 1935. Los mosquitos de Mexico. Departamento de Salud Publica. Boletines Tecnicos, Serie A, No. 1. 65 pp.

Meigen, J. W. 1818. Systematische Beschreibung der bekannten europaischen zweiflugeligen Insekten. Vol. 1. 333 pp.

Moreno, J. E., Y. Ribio-Palis, E. Paez, E. Perez, V. Sanchez & E. Vaccari. 2005. Anopheles (Anopheles) neomaculipalpus: a new malaria vector in the Amazon basin? Medical and Veterinary Entomology, 19: 329-332.

Mulhern, T. D. 1941. Mosquito control in New Jersey in 1940 and its contributions to national defense. Proceedings of the New Jersey Mosquito Extermination Association, 28: 72-114.

Neiva, A. 1906. Uma nova especie de Anophelina brazileira. Brazil-Medico, 20: 3-8.

O'Malley, C. 1992. The Biology of Anopheles quadrimaculatus Say. Proceedings of the New Jersey Mosquito Control Association, 79: 136-144.

OMS. 2005. World Malaria Report. Disponible en: http://rbm.who.int/wmr2005/

OMS. 2007. World Health Report. 2007. Disponible en: http://www.who.int/whr/2007/whr07_en.pdf.

OPS. 1985. El Control de las enfermedades transmisibles en el hombre. 14a edicion. 536 pp.

OPS (1998). 2000. Report on the situation of malaria programs in the Americas Revista Panamericana de Salud Publica 8: 363-367. Disponible en: http://www.scielosp.org/ scielo.php?

Osorno-Mesa, E. & F. Munoz-Sarmiento. 1948. Una nueva variedad de Anopheles pseudopunctipennis. Caldasia, 5: 105-113.

Panday, R. S. 1975. Mosquito identification studies in a savanna forest in Surinam. Mosquito News, 35: 141-146.

Pampana, E. 1966. Erradicacion de la Malaria. Ed. Limusa-Wiley. Mexico. 605 pp.

Pelaez, D. 1945. Anofelinos de Mexico. Clave para la determinacion de especies y subespecies basada en los caracteres de las hembras adultas. Ciencia, 6: 69-77.

Penn, G. H. 1949. Pupae of the neartic Anopheline mosquitoes North of Mexico. Journal of the National Malaria Society, 8: 50-69.

Pessoa, S. B. & Paula-Souza, G. H. 1937. Notas sobre os Nyssorhynchus de S. Paulo. IV. Sobre a infe ccao experimental do Anopheles algitarsis e A. strodei da ciudade de Sao Paulo, pelo Plasmodium vivax. Folia Clinica et Biologica, 3: 65-69.

Peterson, A. T. 2001. Predicting species' geographic distributions based on ecological niche modeling. The Condor, 103: 599-605.

Peterson, A. T., C. Martinez-Campos, Y. Nakazawa y E. Martinez-Meyer. 2005. Time-specific ecological niche modeling predicts spatial dynamics of vector insects and human dengue cases. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 99: 647-655.

Peyton, E. L., R. C. Wilkerson & R. E. Harbach. 1992. Comparative analysis of the subgenera Ker teszia and Nyssorhynchus of Anopheles (Diptera: Culicidae). Mosquito Systematics, 24: 51-69.

Pinto, C. 1939. Chave para identificacao das larvas de Anofelinas de interesse medico, observadas no Brasil. Disponible en : http://www.mosquitocatalog.org /pdfs/102700-3.pdf

Pratt, H. D. 1943. The identification of first stage larvae of Puerto Rican Anopheles. Public Health Report, Washington, 58: 1715-1717.

Reinert J. F., P. E. Kaiser & J. A. Seawright. 1997. Analysis of the Anopheles (Anopheles) quadrimaculatus complex of sibling species (Diptera: Culicidae) using morphological, cytilogical, molecular, genetic, biochemical, and ecological techniques in an integrated approach. Journal of the American Mosquito Control Association, 13 (supplement): 1-102.

Robineau-Desvoidy, J. B. 1827. Essai sur la tribu des culicides. Memoires de la Societe d'Histoire Naturelle de Paris, 3: 390-413.

Rodriguez, M. H., R. A. Betanzos, L. R. Danis, C. L. Gonzalez, A. L. Duran, G. J. Mendez, M. M. Vazquez, M. O. Velasquez, B. H. Holguin & C. R. Tapia. 2004. An ecosystem approach study of malaria transmission and control interventions in southern Mexico. Global Forum for Health Research, Forum 8. Disponible en: http://www.globalforumhealth.org/Forum8/Forum8-CDROM/ Posters/Rodriguez% 20MH%20F8-181.doc.

Rodriguez, M. H., B. Chavez, A. Orozco & A. Martinez-Palomo. 1996. Fine structure of the eggs of Anopheles (Anopheles) apicimacula (Diptera: Culicidae). Journal of the American Mosquito Control Assocciation, 12: 454-459.

Rodriguez, M. H., B. Chavez, A. Ulloa & J. I. Arredondo-Jimenez. 2002. Fine structure of the eggs of Anopheles (Anopheles) punctimacula. Journal of the American Mosquito Control Association, 18: 1-9.

Root, F. M. 1922. Notes on mosquitoes and other blood-sucking flies from Porto Rico. The American Journal of Hygiene, 2: 394-405.

Root, F. M. 1924. Notes on the mosquitoes of Lee County, Georgia. The American Journal of Epidemiology, 4: 449-455.

Root, F. M. 1926.. Studies on Brazilian mosquitoes. I. The anophelines of the Nyssorhynchus group. The American Journal of Hygiene, 6: 684-717.

Root, F. M. 1929. Anopheles. In: Animal parasitology. D. Appleton-Century Co., Inc. New York, USA. Pags 476-502.

Ross, E. S. & H. R. Roberts. 1943. Mosquito Atlas. Part I. The Neartic Anopheles important malaria vectors of the Americas and Aedes aegypti, Culex quinquefasciatus. The American Entomological Society, the Academy of Natural Sciences. Philadelphia, USA. 44 pp.

Roth, L. M. 1944. A key to the Anopheles of the southeastern United States, by male genitalia (Diptera, Culicidae). The American Midle Naturalist, 31: 96-110.

Rozeboom, L. E. 1938. The eggs of the Nyssorhynchus group of Anopheles (Culicidae) in Panama. The American Journal of Hygiene, 27: 95-107.

Rozeboom, L. E. 1941. Distribution and ecology of the Anopheles mosquitoes of the Caribbean Region. American Association for the Advancement of Science, 15: 98-115.

Rozeboom, L. E. & A. Gabaldon. 1941. A summary of the "Tarsimaculatus" complex of Anopheles (Diptera: Culicidae). The American Journal of Hygiene, 33: 88-100.

Rueda, L. M., E. L. Peyton & S. Manguin. 2004. Anopheles (Anopheles) pseudopunctipennis Theobald (Diptera: Culicidae): Neotype Designation and Description. Journal of Medical Entomology, 41: 12-22.

Russell, P. F., L. E. Rozeboom & A. Stone. 1943. Keys to the anopheline mosquitoes of the World. The American Entomological Society. The Academy of Natural Sciences. Philadelphia, USA. 152 pp.

Russell, P. F. 1953. Paludismo. Compendio de principios basicos. Ed. La Prensa Medica Mexicana. Mexico. 205 pp.

Sandoval-Ruiz, C. A., J. L. Zumaquero-Rios & O. R. Rojas-Soto. 2008. Predicting geographic and ecological distributions of Triatomine species in the Southern Mexican State of Puebla using ecological niche modeling. Journal of Medical Entomology, 45: 540-546.

Say, T. 1823. Descriptions of dipterous insects of the United States. Journal of the Academy of Natural Sciences of Philadelphia, 3: 9-54.

Say, T. 1824. Appendix. Part I.- Natural history. 1. Zoology. E.Class Insecta. 378. In: Keating, W. H. Narrative of an expedition to the source of St. Peter's River. Vol. 2. Philadelphia. 459 pp.

Scachetti-Pereira, R. 2003. Desktop GARP user's manual. Disponible en: http://beta.lifemapper.org/ desktopgarp/

Senevet, G. 1931. Contibution a l'etude des nymphes d'anophelines (2a memoire). Archives d l'Institute PasteurD'Algerie, 9: 17-112.

Senevet, G. 1934. Contribution a l'etude des nymphes d'anophelines (4a memoire). Archives dl'Instiyute Pasteur D'Algerie, 12: 29-76.

Senevet, G. 1948. Au sujet de quelques nymphes de Nyssorhynchus. Archives d l'Institute Pasteur D'Algerie, 26: 4363-440.

Senevet, G. & E. Abonnenc. 1938. Quelques anophelies de la Guyane Francaise. Archives d l'Institute Pasteur D'Algerie, 16: 486-512.

Simmons, J. S. 1937. Observations on the importance of Anopheles punctimacula as a malaria vector in Panama, and report of experimental infections in A. neomaculipalpus, A. apicimacula, and A. eiseni. American Journal of Tropical Medicine, 17: 191-212.

Soto, E. M. & E. Garcia. 1989. Atlas climatico del estado de Veracruz. Instituto de Ecologia, A. C. 125 pp.

Stearns, L. A. 1940. The present mosquito control situation in Delaware. Proceedings of the New Jersey Mosquito Extermination Association, 27: 106-112.

Stockwell, D. & D. Peters. 1999. The GARP modelling system: problems and solutions to automated spatial prediction. International Journal of Geographical Information Science, 13: 143-158.

Stojanovich, C. J., J. R., Gorham & Scott, H. G. 1966. Clave Ilustrada para los mosquitos anofelinos de America Central y Panama. U.S. Department of Health, Edication and Welfare. Atlanta, Georgia. 44 pp.

Stone, A. & K. L. Knight. 1956. Type specimens of mosquitoes in the United States National Museum: III, The genera Anopheles and Chagasia (Diptera, Culicidae). Journal of the Washington Academy of Sciences, 46: 276-280.

Sweeney, A. W., N. W. Beebe, R. D. Cooper, J. T. Bauer & A. T. Peterson. 2006. Environmental factors associated with distribution and range limits of malaria vector Anopheles farauti in Australia. Journal of Medical Entomology, 43: 1068-1075.

Tamayo, M. O. & C. A. Gargia. 1907. Las aquas de Huacachina informe presentado a la Sociedad Geografica de Lima. Memorias de la Municipalidad de Lima, 1906: 1-63.

Theobald, F. V. 1901. A monograph of the Culicidae or mosquitoes. Vol. 2. British Museum of Natural History, London, England. 391 pp.

Theobald, F. V. 1903. A monograph of the Culicidae of the World. Vol. 3. British Museum of Natural History, London, England. 351 pp.

Theobald, F. V. 1905. A catalogue of the Culicidae in the Hungarian National Museum, with descriptions of new genera and species. Annales Musei Nationalis Hungarici, 3: 61-120.

Theobald, F. V. 1907. A monograph of the Culicidae or mosquitoes. Vol. 4. British Museum of Natural History, London, England. 639 pp.

Thowson, H. Nathan, M. B., Zaim, N., Guillet, P. Manga, L., Bos, R. & Kindhauser, M. 2005. Exploiting the potential of vector control for disease prevention. Bulletin of the World Health Organization, 83: 942-947.

Ulloa, A., M. H. Rodriguez, J. I. Arredondo-Jimenez & I. Fernandez-Salas. 2005. Biological variation in two Anopheles vestitipennis populations with different feeding preferences in Southern Mexico. Journal of the American Mosquito Control Association, 21: 350-354.

Unti, O. 1940. Anofelinos do Vale do Paraiba. Nota 111. Biologia do Anopheles (Nyssorhynchus) strodei Root, 1926 com a descricao d'uma variedade nova Anopheles (Nyssorhynchus) strodei ramosi var. n. Annaes Paulistas de Medicina e Cirugia, 15: 489-491.

Unti, O. 1941. Anofelinos do vale do Paraiba, Anopheles (Nyssorhynchus) strodei Root 1926, com a descricao de tres variedades novas. Publicaciones del Servicio de Profilaxis de la Malaria, 33: 3-18.

Van Der Wulp, F. M. 1867. Eenige Noord-Americaansche Diptera. Tijdschrift voor Ent. 10: 125-130.

Vargas, L. 1939. Datos acerca del A. pseudopunctipennis y de un Anopheles nuevo de California. Revista Mexicana de Medicina,19: 356-362.

Vargas, L. 1940a. Clave para identificar las hembras de Anopheles mexicanos. Revista del Instituto de Salubridad y Enfermedades Tropicales, 1: 199-203.

Vargas, L. 1940b. Clave para identificar las larvas de Anopheles mexicanos. Ciencia, Mexico, 1: 6668.

Vargas, L. 1941a. Anopheles (Anopheles) gabaldoni n. sp. en el estado de Tabasco, Mexico (Dipt. Cu licidae). Revista Medicina de Mexico, 21: 385-394.

Vargas, L. 1941b. El problema de las variedades de A. punctipennis. Revista de la Sociedad Mexicana de Historia Natural, 2: 175-186.

Vargas, L. 1941c. Notas sobre los huevecillos de Anopheles mexicanos. Gaceta Medica de Mexico, 71: 107-123.

Vargas, L. 1941d. Anopheles pseudopunctipennis willardi n. var. (Dipt. Culicidae). Revista de la Sociedad Mexicana de Historia Natural, 2: 47-49.

Vargas, L. 1948. Nota sobre la antigua presencia de Anopheles (Nyssorhynchus) albimanus Wiedemann, 1821 en Brasil. Revista del Instituto de Salubridad y Enfermedades Tropicales, 9: 153-163.

Vargas, L. 1949. Caracteres morfologicos diferenciales de algunas pupas de anofelinos neotropicales (Diptera: Culicidae). Rivista di Parassitologia, 10: 231-235.

Vargas, L. 1951. Problemas en la identificacion de vectores del paludismo y su biologia en las principales zonas endemicas de Mexico. Boletin de Sanidad Militar, 4: 435-439.

Vargas, L. 1959. Lista de Anopheles de las Americas y su identificacion por caracteres masculinos (Diptera: Culicidae). Revista del Instituto de Salubridad y Enfermedades Tropicales, 19: 367-386.

Vargas, L. 1963. La interpretacion epidemiologica del paludismo, con enfasis en campanas de erradicacion. Revista Venezolana de Sanidad y Asistencia Social, 28: 339-509.

Vargas, L. & A. Martinez-Palacios. 1946. Descripcion del huevo, larva y pupa de Anopheles gabaldoni Vargas, 1941. Revista del Instituto de Salubridad y Enfermedades Tropicales, 7: 19-27.

Vargas L. & A. Martinez-Palacios. 1956. Anofelinos mexicanos. Taxonomia y distribucion. Secretaria de Salubridad y Asistencia. Comision Nacional para la Erradicacion del Paludismo. Mexico. 181 pp.

Vargas, M. 1975. Clave para anofelinos adultos (hembras) de Costa Rica. Brenesia, 6: 77-80.

Villanueva, R. C. 1961. Distribucion Geografica de Chagasia bathanus (Dyar, 1928) y algunos aspectos bionomicos de la larva. Revista Brasileira de Entomologia, 10: 217-226.

Villareal C., J. I. Arredondo-Jimenez, M. H. Rodriguez & A. Ulloa. 1998. Colonization of Anopheles pseudopunctipennis from Mexico. Journal of the American Mosquito Control Association, 14: 369-372.

WRBU. 2008. Walter Reed Biosystematics. Systematic Catalog of Culicidae. Disponible en: http:// www.mosquitocatalog.org/main.asp.

Weidhaas D. E., D. B. Woodard, C. H. Schmidt & H. R. Ford. 1965. Biology of Anopheles quadrimaculatus under field conditions in Central America. Annals of the Entomological Society of America, 52: 145-150.

Wilkerson, R. C. 1989. Elevation of Anopheles chiriquiensis from synonymy with Anopheles parapunctipennis and designation of Name-bearing types for Anopheles parapunctipennis and Anopheles parapunctipennis guatemalensis (Diptera: Culicidae). Mosquito Systematics, 21: 178-187.

Wiedemann, C. R. G. 1820. Diptera Exotica. Vol. 1. 42 pp.

Wiedemann, C. R. G. 1828. Aussereuropaische zweiflugelige insekten. Vol. 1. 608 pp.

Wilkerson, R. C. 1989. Elevation of Anopheles chiriquiensis from synonymy with Anopheles parapunctipennis and designation of name-bearing types for Anopheles parapunctipennis guatemalensis (Diptera: Culicidae). Mosquito Systematics, 21: 178-187.

Wilkerson, R. C. 1990. Redescriptions of Anopheles punctimacula and An. malefactor (Diptera: Culi cidae). Journal of Medical Entomology, 27: 225-247.

Wilkerson R. C., D. Strickman & T. R. Litwak. 1990. Ilustrated key to the female Anopheline mosquitoes of Central America and Mexico. Journal of the American Mosquito Control Association, 6: 7-34.

Wilkerson R. C., D. Strickman, I. Fernandez-Salas, S. Ibanez-Bernal & T. R. Litwak, 1993. Clave ilustrada para la identificacion de las hembras de mosquitos anofelinos de Mexico y Centroamerica. Secretaria de Salud. Subsecretaria de Coordinacion y Desarrollo. Mexico. 46 pp.

Williams, D. D. & B. W. Feltmate. 1992. Aquatic Insects. Ed. CAB International. Reino Unido. 358 pp.

Yamaguti, S. 1952. Illustrated Keys to the Adult Culicine Mosquitoes of America North of Mexico. Publicado por el autor. 48 pp.

Zavortink, J. T. 1973. A review of the subgenus Kerteszia of Anopheles. Contributions of the American Entomology Institute, 9: 1-54.

Zimmerman, R. H. 1992. Ecology of malaria vectors and future direction. Memorias do Instituto Oswaldo Cruz, 87: 371-383.
Cuadro 1. Generos, subgeneros y especies conocidos en el estado de
Veracruz, Mexico

Genero                   Subgenero                 Especie

Anopheles Meigen,     Anopheles         apicimacula Dyar y Knab, 1906
1818                  Meigen, 1818

                                        bradleyi King, 1939

                                        crucians Wiedemann, 1828

                                        eiseni Coquillett, 1902

                                        gabaldoni Vargas, 1941

                                        neomaculipalpus Curry, 1931

                                        parapunctipennis Martini,
                                        1932

                                        pseudopunctipennis Theobald,
                                        1901

                                        punctimacula Dyar y Knab,
                                        1906

                                        punctipennis (Say, 1823)

                                        quadrimaculatus Say, 1824

                                        vestitipennis Dyar y Knab,
                                        1906

                                        walkeri Theobald, 1901

                      Kerteszia         neivai Howard, Dyar y Knab,
                      Theobald 1905     1912 (1913)

                      Nyssorhynchus     albimanus Wiedemann, 1820
                      Blanchard, 1902

                                        argyritarsis
                                        Robineau-Desvoidy, 1827

                                        strodei Root, 1926

Chagasia Cruz, 1906   --                bathana (Dyar, 1928)


Adriana Beltran-Aguilar, (1) Sergio Ibanez-Bernal, (1,3) Fredy Mendoza-Palmero, (2) Cesar A. Sandoval-Ruiz (1) & Ruth A. Hernandez-Xoliot (2)

(1) Instituto de Ecologia, A.C., Red Ambiente y Sustentabilidad. Carretera antigua a Coatepec No. 351, El Haya, Xalapa, C. P. 91070, Veracruz, Mexico.

(2) Departamento de Control de Enfermedades Transmitidas por Vector, Servicios de Salud de Veracruz. Soconusco No. 31, Col. Aguacatal, C.P. 91130), Xalapa, Veracruz, Mexico.

(3) Autor corresponsal: <sergio.ibanez@inecol.edu.mx>
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Title Annotation:p. 730-755
Author:Beltran-Aguilar, Adriana; Ibanez-Bernal, Sergio; Mendoza-Palmero, Fredy; Sandoval-Ruiz, Cesar A.; He
Publication:Acta Zoologica Mexicana (nueva serie)
Date:Sep 1, 2011
Words:10301
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