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Sucrose levels in the in vitro rooting and ex vitro acclimatization of plantlets of the R110 (Vitis rupestris x Vitis berlandieri) grapevine rootstock/Niveles de sacarosa en el enraizamiento in vitro y aclimatizacion ex vitro de plantulas del portainjerto de vid R110 (Vitis rupestris x Vitis berlandieri)/Niveis de sacarose no enraizamento in vitro e aclimatizacao ex vitro de plantas do portaenxerto de videira R110 ...

SUMMARY

Sucrose concentration and container gas exchange are factors that influence the characteristics of micropropagated and acclimatized plantlets. Apical buds of the rootstock of the R110 (Vitis rupestris x Vitis berlandieri) grapevine were cultivated in media containing O, 43.8, 87.6, 131.4, and 175.2mM sucrose, in containers with or without complementary gas exchange. After 13 days of growth, the plantlets were transplanted and placed in a greenhouse, where they remained for nine weeks. Percentage of rooting, number and length of the roots, bud size, weight of fresh material and water content in vitro, all decreased with the increase in the concentration of sucrose, the change being more pronounced in containers with gas exchange. In the acclimatization stage, sucrose concentration and type of container did not influence the number and length of the roots. However, bud size, number of leaves, and water content were lower in the plantlets growing with 175.2mM sucrose in containers with gas exchange. The survival rate was 100% after nine weeks with 43.8mM of sucrose in containers without exchange, and with 43.8 and 87.6mM in containers with gaseous exchange.

RESUMEN

La concentracion de sacarosa y el intercambio gaseoso del contenedor son factores que influyen en las caracteristicas de las plantulas micropropagadas. Brotes apicales del portainjerto de vid R110 (Vitis rupestris x Vitis berlandieri) fueron cultivados in vitro en medio con O; 43,8; 87,6; 131,4 y 175,2mM de sacarosa, en contenedores con o sin intercambio gaseoso complementario. Despues de 13 dias de cultivo las plantulas fueron trasplantadas y colocadas en invernadero, donde permanecieron por nueve semanas. El porcentaje de enraizamiento, numero y tamano de raices, tamano de brotes, peso de materia fresca y contenido de agua de los explantes in vitro, disminuyeron al incrementar la concentracion de sacarosa, en los contenedores con intercambio gaseoso. En la etapa de aclimatizacion, la concentracion de sacarosa y tipo de contenedor influyeron en el numero y tamano de raices. El tamano de brotes, numero de hojas y el contenido de agua fueron menores en las plantulas que crecieron con 175,2mM de sacarosa, en contenedores sin intercambio gaseoso. La supervivencia fue de 100% despues de nueve semanas en plantas que se desarrollaron en medio con 43,8mM de sacarosa en contenedores sin intercambio; asi como en 43,8 y 87,6mM en contenedores con intercambio gaseoso.

RESUMO

A concentracao de sacarose e o intercambio gasoso do contenedor sao fatores que influenciam nas caracteristicas das plantas micropropagadas e aclimatizadas. Devido ao anterior, se cultivaram in vitro brotes apicais do porta-enxerto de videira R110 (Vitis rupestris x Vitis berlandieri), en medio de cultivo com 0, 43,8; 87,6; 131,4 e 175,2mM de sacarose, em contenedores com ou sem intercambio gasoso complementar. Depois de 13 dias de cultivo, as plantas foram transplantadas e colocadas em estufa onde permaneceram por nove semanas. In vitro, a porcentajem de enraizamento, numero e tamanho de raizes, tamanho de brotos, peso de materia fresca e con teudo de agua diminuiram com o incremento da concentracao de sacarose, de manera mas acentuada nos contenedores com intercambio gasoso. Na etapa da aclimatizacao, a concentracao de sacarose e o tipo de contenedor nao influenciaram no numero e tamanho das raizes. Entretanto, o tamanho de brotos, numero de folhas e o conteudo de agua foram menores nas plantas que cresceram com 175,2mM de sacarose em contenedores sem intercambio gasoso. A sobrevivencia foi de 100%, depois de nove semanas, com 43,8mM de sacarose em contenedores sem intercambio e com 43,8 ou 87,6mM, em contenedores com intercambio gasoso.

PALABRAS CLAVE / Adaptacion ex vitro / Contenedor / Fuente de Carbono / Intercambio Gaseoso / Micropropagacion / Vitis/

NIVEIS DE SACAROSE NO ENRAIZAMENTO IN VITRO E ACLIMATIZACAO EX VITRO DE PLANTAS DO PORTAENXERTO DE VIDEIRA R110 (Vitis rupestris x Vitis berlandieri)

Introduccion

Aun cuando la micropropagacion ha sido utilizada extensivamente para la multiplicacion de numerosas especies, su uso a escala comercial es restringido debido a la perdida de plantulas al ser transferidas a invernadero (Pospisilova et al., 1999), debido a las diferencias que existen entre las condiciones, tales como intensidad luminosa, temperatura, humedad relativa, sustrato sin azucar y condiciones no esteriles, en que se desarrollan las plantas in vitro e in vivo. Ademas, las plantulas propagadas in vitro poseen caracteristicas anatomicas y fisiologicas diferentes de las cultivadas convencionalmente: cuticula mas delgada en las hojas (Majada et al., 2000), funcionamiento deficiente de los estomas (Shackel et al., 1990), celulas en empalizada no uniformes (Fabbri et al., 1986; Smith et al., 1986), tejidos hiperhidratados (Majada et al, 2000), y modificacion en el sistema vascular (Piccotino et al., 1997), entre otras. Ademas, la condicion fisiologica y las caracteristicas intrinsecas de las plantulas cultivadas in vitro tienen influencia en la supervivencia en invernadero. Por ello se han utilizado algunas estrategias para que las plantulas producidas in vitro se asemejen a las propagadas convencionalmente; tal es el caso de reducir o eliminar la fuente de azucar en el medio de cultivo (Zobayed et al., 2000), incrementar la intensidad luminosa en el cuarto de incubacion (Wilson et al., 2001) y elevar la concentracion de C[O.sub.2] dentro de los contenedores (Heo et al., 2001). Tambien se disminuye la humedad relativa dentro de los contenedores para estimular cambios significativos en el crecimiento, anatomia y fisiologia de las plantulas (Nguyen et al., 2001). Las respuestas al enraizamiento y crecimiento de las plantulas varian con el genotipo, concentraciones de sacarosa y condiciones de cultivo. Asi, el aumento en la concentracion de sacarosa influyo de manera negativa en el enraizamiento y numero de raices en Vitis, hybrido 'Remaily Seedless' (Chee y Pool, 1988), por lo que se prefiere eliminar (Han et al., 2003), reducir (Blazina et al., 1991) o mantener la concentracion de sacarosa utilizada en la etapa de multiplicacion (Thomas, 2000). La aclimatizacion se puede mejorar si se incrementa la concentracion de sacarosa en el medio de cultivo, debido a la produccion de biomasa durante el crecimiento in vitro, que persiste aun despues del transplante (Fila et al., 1998); tras 30 dias obtuvieron 100% en la aclimatizacion del portainjerto de Vitis vinifera 'Chasselas'xVitis berlandieri 41B, al emplear en medio con 18,3; 36,4; 73,0 y 109,6mM de sacarosa. Otro aspecto importante a considerar es el potencial osmotico. George (1993) comenta que el azucar, ademas de actuar como fuente de carbohidratos, modifica el potencial osmotico del medio. En estas condiciones, el estres causado por la reduccion del potencial osmotico disminuye el crecimiento, debido a senales generadas en las raices por las hormonas (Munns, 2002).

El uso de contenedores con intercambio gaseoso durante el cultivo in vitro, puede incrementar la tasa de supervivencia ex vitro en Delphinium y Hosta (Murphy et al., 1998) y Rehmannia glutinosa (Cui et al., 2000). Por su parte, Shim et al., (2003) sugieren que el intercambio gaseoso es el factor clave para incrementar la supervivencia durante la aclimatizacion y permite la reduccion del periodo de trasplante para la produccion de portainjertos de Vitis. Por lo anterior, el objetivo del presente trabajo fue evaluar el efecto del uso de diferentes concentraciones de sacarosa en contenedores con o sin intercambio gaseoso en el enraizamiento y aclimatizacion de plantulas del portainjerto de vid R110 enraizadas in vitro.

Materiales y Metodos

El estudio se llevo a cabo en el Laboratorio de Cultivo in vitro del Programa de Fruticultura y en el invernadero de las instalaciones del Colegio de Postgraduados en Montecillo, Estado de Mexico, Mexico.

Material vegetal, condiciones de incubacion y aclimatizacion

Se utilizaron brotes apicales de ~15mm del portainjerto de vid R110 (Vitis rupestris x V. berlandieri) multiplicados in vitro. Los explantes se establecieron en dos tipos de contenedores de policarbonato de 7,62 x 7,62 x 10,16cm (Magenta GA-7, Sigma). El primer tipo consistio de contenedores intactos, sin intercambio gaseoso complementario, y el segundo grupo tenia una perforacion de 1,33[cm.sup.2] a un lado del contenedor a 5cm de la base, cubierta con papel filtro Whatman No 42 con poros de 2,5[micro]m, para el intercambio gaseoso complementario. En los contenedores se depositaron 50ml del medio de cultivo utilizado por Villegas et al (1991), complementado con 0,1[micro]M de acido indolacetico (ALA); 6,5g.[1.sup.-1] de agar agar (Merck) y cinco niveles de sacarosa Sigma (0; 43,8; 87,6; 131,4 y 175,2mM), que corresponden a potenciales osmoticos calculados de -0,113; -0,218; -0,323; -0,428 y -0,534MPa, respectivamente. La sacarosa y el agar se incorporaron al medio antes de ajustar el pHa 5,7 y se procedio a la esterilizacion a 121[degrees]C y 201b durante 15min. En condiciones asepticas, se sembraron nueve explantes por contenedor, que fueron mantenidos en cuarto de incubacion con 25 [+ or -]2[degrees]C, 16h de fotoperiodo con intensidad luminosa de 76[micro]mol-[m.sup.-2].[s.sup.-1], producida a partir de lamparas fluorescentes blancas frias. Despues de 13 dias de cultivo in vitro, las plantulas se trasplantaron a vasos de unicel No6, que contenian mezcla de peat moss y agrolita en proporcion 1:1 (v/v), cubiertos con vasos transparentes No 12, utilizados como domos. Antes del transplante, las raices de todas las plantulas fueron podadas a 1cm, enjuagadas y posteriormente mantenidas durante 2min en solucion de Captan (2g.[1.sup.-1]). Los vasos con las plantulas fueron mantenidos en invernadero cubierto por malla sombra al 50%. A los siete dias del trasplante se retiraron los domos, durante 10min en el primer dia, 20min en el segundo, 30min en el tercero, 1h en el cuarto, 2h en el quinto, 4h en el sexto y 8h en el septimo dia. En el dia ocho, se retiraron completamente los domos. A partir de esa fecha se encendieron lamparas fluorescentes blancas frias de las 18:00 hasta las 22:00, para que el fotoperiodo fuera de 16h. Despues que los domos fueron retirados, las plantulas se regaron cada tres dias con agua destilada.

[FIGURA 1 OMITIR]

Variables evaluadas

In vitro. Despues de 13 dias de cultivo, se evaluo el porcentaje de enraizamiento, numero y longitud de raices, tamano de brotes, peso de materia fresca y seca de la parte aerea, asi como contenido de agua en los tejidos.

In vivo. A las tres y nueve semanas del trasplante, se determinaron el numero y longitud de raices, numero de hojas, tamano de brotes, peso de materia fresca y seca, contenido de agua de la parte aerea, y tasa de supervivencia.

Analisis estadistico

Para el experimento in vitro se utilizo un diseno experimental con bloques completamente al azar con arreglo factorial 5 x 2. Los factores fueron concentracion de sacarosa (0; 43,8; 87,6; 131,4 y 175,2mM) y tipo de contenedor (con o sin intercambio gaseoso complementario). Cada tratamiento estuvo compuesto por cuatro repeticiones de un contenedor Magenta con nueve explantes (36 explantes). Para las variables numero y tamano de raices, se tomaron datos de las 360 plantulas. Para determinar el peso de materia fresca, seca y contenido de agua, se utilizaron tres plantulas de cada contenedor (120 plantulas). Las seis plantulas restantes de cada contenedor (240 en total) se utilizaron para la etapa de aclimatizacion. La respuesta in vitro fue analizada por regresion para determinar las tendencias, y para la aclimatizacion mediante analisis de varianza y comparacion de medias con la prueba de la diferencia minima significativa protegida por el procedimiento MIXED (SAS, 1999).

Resultados y Discusion

En general, para todas las variables evaluadas in vitro, la respuesta de los explantes que permanecieron en los contenedores sin intercambio complementario fueron mayores que en los contenedores con intercambio. Esta respuesta no coincide con lo encontrada por Smith et al (1992), donde el uso de contenedores con intercambio gaseoso favorecio el enraizamiento de Vitis vinifera.

La sacarosa influyo negativamente en el enraizamiento ([R.sup.2] = 0,95), numero y tamano de raices ([R.sup.2] = 0,97 y [R.sup.2] = 0,86, respectivamente), asi como el tamano de brotes ([R.sup.2] = 0,85), para las plantas propagadas en contenedores con o sin intercambio gaseoso (Figura 1). Las mejores concentraciones de sacarosa para las variables estudiadas fueron de 0 o 43,8mM. La reduccion del enraizamiento y crecimiento se debe a la disminucion del potencial osmotico que dificulta la absorcion de agua y nutrientes del medio de cultivo (Aguilar et al., 2000; Cardenas y Villegas, 2002). El efecto negativo del potencial osmotico en el enraizamiento ha sido comprobado en Vitis (Dami y Hughes, 1995) y Saintpaulia ionantha (Sawwan et al., 1998). Al utilizar contenedores con intercambio gaseoso complementario, la reduccion en los valores de las variables estudiadas fue mayor que en los contenedores sin intercambio gaseoso; principalmente con 175,2mM de sacarosa (-0,534MPa), lo que se pudo corroborar con las regresiones (Figura 1). Las respuestas al enraizamiento y crecimiento de las plantulas varian con el genotipo y condiciones de cultivo, tal como se observo en este trabajo y por otros autores (Raya et al., 2009), por lo cual es necesario definir las condiciones de enraizamiento para cada especie y portainjerto.

El peso de la materia fresca de la parte aerea disminuyo con el incremento de la sacarosa, mientras que el peso de materia seca tuvo la tendencia de aumentar, tendencia que fue mas clara en contenedores con intercambio gaseoso (Figura 2). Ha sido reportado que el incremento de sacarosa en el medio de cultivo aumenta tanto el peso de materia fresca como el de materia seca (Kubota et al., 2002; Shim et al., 2003); de igual forma, el peso se favorece al utilizar contenedores con intercambio gaseoso (Lucchesini et al., 2001; Nguyen et al., 2001). Lo anterior se debe a que al aumentar el contenido de sacarosa, el potencial osmotico del medio disminuye (Cardenas v Vi llegas, 2002) y se limita la absorcion de agua, pero se favorece el ingreso de sacarosa y con ello el aumento de materia seca.

Otra alternativa para favorecer el crecimiento de las plantulas in vitro, es promover la fotosintesis controlando niveles de luz y C[O.sub.2], (Zobayed et al., 2000; Heo et al., 2001; Wilson et al., 2001). Se observo que el contenido de agua no vario en ausencia de sacarosa, entre ambos tipos de contenedores. Sin embargo, cuando la concentracion se incremento hasta 175,2mM, esta variable disminuyo 16 y 23%, en contenedores sin y con intercambio gaseoso complementario (Figura 2). Calvete et al. (2002) al propagar plantulas de Fragariaxananassa 'Campinas' durante tres semanas in vitro, observaron disminucion en el contenido de agua de 90 a 82%, en la parte aerea, cuando incremento de 0 a 175,2mM la concentracion de sacarosa. En el presente trabajo, tanto la materia fresca como el contenido de agua disminuyeron y el peso de la materia seca aumento, lo que pone de manifiesto el efecto de esta fuente de carbono como modificador del potencial osmotico del medio de cultivo, ademas de aportar energia a las plantulas.

[FIGURA 2 OMITIR]

La concentracion de sacarosa y el tipo de contenedor utilizados durante el cultivo in vitro, no afectaron el numero y tamano de las raices de las plantulas durante el establecimiento en invernadero. Por otra parte, el tamano de brotes y el numero de hojas disminuyeron al aumentar la concentracion de sacarosa (Tabla I). Se observo, de manera general, que durante el periodo de adaptacion de las plantulas a las condiciones ex vitro (tres semanas) practicamente no hubo crecimiento. A partir de ese momento hasta las nueve semanas, con excepcion del numero de raices, incrementaron todas las demas variables estudiadas (Tabla I). Se pudo observar que en las primeras semanas del trasplante a suelo, crecen mas las raices que la parte aerea. En las plantas crecidas en ausencia de sacarosa en contenedores sin intercambio gaseoso, la relacion parte aerea/raiz fue de 2,35 a las tres semanas y disminuyo a 0,31 a las nueve semanas. La mayor diferencia se observo al utilizar 175,2mM de sacarosa en contenedores sin intercambio gaseoso complementario, donde la relacion fue de 5,69 a las tres semanas y disminuyo a 0,20 a las nueve semanas. Esto demuestra que de las cuatro a las nueve semanas crece mas la parte aerea, tendencia que es mayor en las plantas que se desarrollaron en medios con concentraciones de sacarosa <87,6mM. Debido a que en los primeros dias las plantulas no tienen actividad fotosintetica, las reservas almacenadas en los explantes vienen a ser un factor importante durante la aclimatizacion. Por ello el trasplante se debe realizar cuando las raices tengan 1-1,5cm, situacion que se logra antes de los 15 dias, dependiendo de la especie y no a los 28 dias como en muchos casos sucede (Raya et al., 2009). Estos resultados son contrarios a los de Shim et al. (2003), quienes senalaron que el intercambio gaseoso fue mas importante que la concentracion de sacarosa para el crecimiento del portainjerto de Vitis '5BB' en condiciones ex vitro. El hecho que el tipo de contenedor no tenga influencia en las variables estudiadas puede ser debido al poco tiempo que las plantulas permanecieron en cultivo in vitro. Se considero hacer el trasplante a los 13 dias porque la mayor parte de las plantulas ya tenian raices >1cm; ademas, fue necesario podar las raices para uniformizar esta variable y facilitar el trasplante. En estudios previos (datos no mostrados) se determino que plantulas con raices de lcm, eran capaces de establecerse facilmente en el suelo. Este metodo se implemento tomando en cuenta lo indicado por Thomas y Ravindra (1997), quienes para facilitar el trasplante y economizar tiempo en la etapa de aclimatizacion, utilizaron plantulas de Vitis vinifera 'Arka Neelamani' con raices podadas.

El peso de materia seca de la parte aerea se incremento a las tres semanas en invernadero en relacion al cultivo in vitro; principalmente en las plantulas crecidas en ausencia de sacarosa y contenedores con intercambio gaseoso, donde aumento 95% (Tabla II). Por otra parte, el contenido de agua disminuyo, lo cual implica que las plantulas cultivadas in vitro poseen mayor cantidad de agua. Estos resultados concuerdan con los de Fila et al. (1998) quienes comentan que la aclimatizacion se puede mejorar si se incrementa la concentracion de sacarosa en el medio de cultivo, debido a la mayor produccion de materia seca in vitro.

A las nueve semanas de cultivo en invernadero, el peso de materia fresca y seca de la parte aerea de las plantulas no fueron influenciados por las condiciones de cultivo in vitro; sin embargo, el contenido de agua fue menor en las plantulas cultivadas en contenedores sin intercambio gaseoso y con 175,2mM de sacarosa (Tabla II). Ello implica que el efecto de los tratamientos in vitro es importante en las primeras semanas.

La supervivencia fue de 100% en contenedores con y sin intercambio gaseoso y 43,8mM de sacarosa y en contendores con intercambio gaseoso y 87,6mM de sacarosa, mientras que los menores porcentajes se obtuvieron en ausencia de sacarosa o en concentraciones [greater than or equal to]131,4mM (Tabla II). Por lo tanto, se considera que estos tratamientos afectaron negativamente la supervivencia, aspecto que puede estar relacionado en el primer caso (sin sacarosa) a la falta de energia y en el segundo (niveles altos) al potencial osmotico. En los contenedores con intercambio gaseoso, la supervivencia fue de 100% con 43,8 y 87,6mM de sacarosa. Sin embargo, al utilizase 175,2mM la supervivencia se redujo a 62,5% (Tabla II). Esto significa que las plantas necesitan de una fuente de energia, durante la etapa de crecimiento in vitro, para poder sobrevivir en la etapa de aclimatizacion. Sin embargo, el exceso de sacarosa, disminuye el potencial osmotico del medio de cultivo y con eso la absorcion de agua y nutrientes del medio de cultivo (Calvete et al., 2002). En este trabajo las plantas que tuvieron menor tamano y reservas almacenadas, murieron en la etapa de aclimatizacion. Shim et al. (2003), al cultivar plantulas del portainjerto de Vitis '5BB' en medio sin o con 87,6mM de sacarosa en contenedores sin y con intercambio gaseoso, obtuvieron 100% de supervivencia en todos los tratamientos. Eso indica que los genotipos de vid responden de manera diferente a la aclimatizacion, dependiendo de la concentracion de sacarosa y tipo de contenedores en que fueron cultivados.

Conclusiones

Las concentraciones de sacarosa utilizadas durante el cultivo in vitro del portainjerto R110 afectaron el tamano de brote y numero de hojas in vitro a las tres y nueve semanas.

Las plantulas aclimatizadas en invernadero en las tres primeras semanas desarrollan la raiz y a partir de la cuarta semana la parte aerea. Esta respuesta es mayor en las plantas desarrolladas in vitro en 43,8y 87,6mM de sacarosa.

El intercambio gaseoso del contenedor no afecto el porcentaje de supervivencia, pero si la concentracion de sacarosa, donde niveles superiores a 131,4mm fueron negativos.

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Recibido: 18/12/2007. Modificado: 20/11/2009. Aceptado 25/11/2009.

Raquel Paz da Silva. Ingeniera Agronomica, Pontificia Universidade Catolica do Rio Grande do Sul, Brasil. M.C., Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Brasil. Doctora, Colegio de Postgraduados (COLPOS), Mexico. Direccion: Vivero Cazones, Reforma 180, Cazones, Ver., Mexico, CP 93970. Email: raquel_paz@ hotmail.com

Angel Villegas Monter. Ingeniero Agronomo, Escuela Nacional de Agricultura, Mexico. M.C., COLPOS, Mexico. Doctor, Universidad de Cordoba, Espana. Profesor Investigador, COLPOS, Mexico.
TABLA I
EFECTO DE LA CONCENTRACION DE SACAROSA
Y TIPO DE CONTENEDOR UTILIZADOS IN VITRO,
EN EL TAMANO DE BROTES Y NUMERO DE HOJAS
DE PLANTULAS DEL PORTAINJERTO DE VID R110, DESPUES
DE TRES Y NUEVE SEMANAS EN INVERNADERO

Tratamientos      Tamano de brotes (cm)        Numero de hojas

                    Tres        Nueve         Tres        Nueve
                  semanas      semanas      semanas      semanas

          0        2,50 a       4,43 ab      4,25 ab      6,57 a
         43,8      2,55 a       4,00 ab      4,25 ab      6,00 ab
SIGC     87,6      2,25 ab      3,56 ab      3,88 ab      5,25 ab
        131,4      1,96 ab      3,44 ab      3,75 ab      5,00 ab
        175,2      1,88 ab      2,86 b       3,00 b       4,43 b

          0        2,50 a       4,50 ab      4,13 ab      6,00 ab
         43,8      2,50 a       4,94 a       4,38 a       6,25 a
CIGC     87,6      2,13 ab      3,50 ab      3,75 ab      5,60 ab
        131,4      1,53 b       3,58 ab      3,63 ab      5,17 ab
        175,2      1,94 ab      3,70 ab      3,75 ab      5,20 ab

Significancia
  Cont. (B)          NS           NS           NS           NS
  Sac.(A)            **           **           **           **
  A x B              NS           NS           NS           NS

SAC: sacarosa, CONT: contenedor, SIGC: sin intercambio
gaseoso complementario, CIGC: con intercambio gaseoso
complementario. Medias con la misma literal en la columna
son iguales estadisticamente al 0,05 (prueba de Tukey).
**: p< 0,01, NS: no significativo.

TABLA II
EFECTO DE LA CONCENTRACION DE SACAROSA Y TIPO DE CONTENEDOR
UTILIZADOS IN VITRO, EN EL PESO DE MATERIA FRESCA (PMFA), SECA
(PMSA) Y CONTENIDO DE AGUA, DE LA PARTE AEREA Y SUPERVIVENCIA
DE PLANTULAS DEL PORTAINJERTO DE VID R110, DESPUES DE TRES
Y NUEVE SEMANAS EN INVERNADERO

Tratamientos      Peso de materia fresca    Peso de material seca
                           (mg)                      (mg)

Cont.    Sac.       Tres        Nueve         Tres        Nueve
         (mM)     semanas      semanas      semanas      semanas

          0       65,41 ab     152,34 a     20,14 a      38,03 a
         43,8     56,40 ab     103,96 a     19,11 a      26,63 a
SIGC     87,6     55,63 ab      79,72 a     18,20 a      21,23 a
        131,4     60,13 ab     167,04 a     17,86 a      40,03 a
        175,2     42,00 b      129,08 a     19,34 a      33,33 a

          0       71,83 a      150,65 a     19,93 a      37,83 a
         43,8     72,45 a      119,35 a     22,93 a      29,71 a
CIGC     87,6     66,96 ab     162,77 a     21,79 a      37,00 a
        131,4     53,76 ab     105,72 a     18,25 a      24,76 a
        175,2     62,95 ab     106,36 a     23,06 a      26,18 a

Significancia
  Cont. (B)          *            NS           NS           NS
  Sac. (A)           NS           **           NS           **
  A x B              NS           NS           NS           NS

Tratamientos        Contenido de agua       Supervivencia
                           (%)                   (%)

Cont.    Sac.       Tres        Nueve           Nueve
         (mM)     semanas      semanas         semanas

         0        67,95 ab     74,90 ab         87,5
        43,8      65,63 ab     74,54 ab        100,0
SIGC    87,6      65,83 ab     72,99 ab         87,5
        131,4     67,34 ab     75,93 ab         87,5
        175,2     53,81 b      70,23 b          87,5

         0        71,70 a      74,01 ab         75,0
        43,8      67,86 ab     74,78 ab        100,0
CIGC    87,6      65,71 ab     76,87 a         100,0
        131,4     63,20 ab     76,08 ab         75,0
        175,2     62,91 ab     75,33 ab         62,5

Significancia
  Cont. (B)          NS           NS
  Sac. (A)           *            NS
  A x B              NS           NS

SAC: sacarosa, CONT: contenedor, SIGC: sin intercambio
gaseoso complementario, CIGC: con intercambio
gaseoso complementario.

Medias con la misma literal en la columna son iguales
estadisticamente al 0,05 (prueba de Tukey). *: p< 0,05,
*: p< 0,01, NS: no significativo.
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Title Annotation:REPORTS/COMUNICACIONES/COMUNICACOES
Author:da Silva, Raquel Paz; Monter, Angel Villegas
Publication:Interciencia
Date:Dec 1, 2009
Words:5113
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