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Seroprevalencia del virus de la rinoneumonitis en caballos (Equus caballus) del Peru.

SEROPREVALENCE OF RHINOPNEUMONITIS VIRUS IN HORSES FROM PERU

INTRODUCCION

El Peru cuenta con una poblacion de 1 260 219 equidos de las cuales 597 969 son caballos (Equus caballus) y la diferencia corresponde a burros y mulas (INEI, 2012). La poblacion de caballos comprende caballos criollos o de crianza familiar que son utilizados como medio de transporte, en labores agricolas, etc., y los caballos de raza dedicados a actividades deportivas o de exhibicion, como el Caballo Peruano de Paso, de equitacion, carrera, etc. Al igual que en otros paises, el caballo cumple diversos roles en el aspecto social, pecuario y economico (Goodwin, 1999; Gordon, 2001).

El caballo, como toda especie animal, es susceptible a infecciones por agentes bacterianos o virales, que pueden afectar al sistema respiratorio, reproductivo o nervioso, entre otros. Algunos de estos agentes virales son los virus herpes equino tipo 1 (VHE-1) y virus herpes equino tipo 4 (VHE-4), causantes de la rinoneumonitis equina (RNE) y perdidas fetales. La RNE es un termino colectivo que refiere a una enfermedad clinica aguda o subclinica causada por el VHE-1 o VHE-4, pues ambos virus pueden infectar al tracto respiratorio. La RNE es una de las enfermedades virales de mayor importancia en la produccion equina mundial, debido a las perdidas economicas que ocasiona (Boelaert et al, 2000; Ploszay et al, 2013).

Los VHE-1/VHE-4 son miembros del genero Varicellovirus de la subfamilia Alfa-herpesvirinae, familia Herpesviridae (Johnson y Baines, 2011). El VHE-1 y el VHE-4 son dos agentes virales inmunologicamente relacionados, aunque molecularmente diferentes, que afectan a los caballos domesticos de todas las edades y razas a nivel mundial (OIE, 2008). El VHE-1 es el principal causante de abortos, muerte temprana de neonatos, problemas respiratorios y mieloencefalopatias (Patel y Heldens, 2005; Pusterla et al, 2009). Aunque la ocurrencia de la mieloencefalopatia por VHE-1 es esporadica y de manifestacion poco comun, puede causar perdidas severas, como lo ocurrido recientemente en escuelas de equitacion, hipodromos y hospitales veterinarios en Norteamerica y Europa (Henninger et al., 2007; Pusterla et al., 2009). Por otro lado, el virus VHE-4 es el agente primario de procesos respiratorios, caracterizados por rinofaringitis, traqueobronquitis y, ocasionalmente, es causante de abortos (Ellis et al., 1995; Ploszay et al, 2013).

En el Peru, la RNE fue reportada por aislamiento viral durante brotes de abortos en caballos de carrera (Rivera et al, 1997) y serologia en caballos, principalmente de la costa (Rios et al, 2002). Dado que la infeccion por VHE-1/VHE-4 puede ser de tipo subclinico y no es restrictiva para el movimiento interno de los caballos, la infeccion podria estar distribuida a nivel nacional, por lo que el presente estudio tuvo por objetivo determinar la seroprevalencia de los virus VHE-1/VHE-4, causantes de la rinoneumonitis equina en caballos del pais.

MATERIALES Y METODOS

Muestras de Suero

El Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA) del Peru, zonifica los departamentos del Peru como A, B y C. Es asi que aquellos de la zona A estan ubicados en la costa y no tienen frontera, los de la zona B tienen frontera y los de la zona C no tienen frontera y no estan en la costa (SENASA, 2013).

Se utilizaron 825 muestras de suero de caballos entre machos (n=451) y hembras (n=374), mayores a seis meses de edad, identificados como caballos de crianza familiar (criollos), Caballo Peruano de Paso, de carrera, de equitacion (deporte) y sin especificar. Los caballos provenian de todos los departamentos de la zonas A (n=145), B (n=310) y C (n=370). Las muestras fueron colectadas en el periodo 2011-2012 por el SENASA.

Tamano de Muestra

El tamano minimo de muestra fue obtenido mediante la formula para muestreo por conglomerado en multi-etapas (Segura y Honhold, 2000). Un muestreo por conglomerados se obtiene midiendo algunos de sus elementos para obtener una muestra probabilistica del conglomerado. Este tipo de tamano de muestra suele incrementar el error estandar entre dos y cuatro veces, por lo que se requiere una muestra entre dos y cuatro veces mas grande que el tamano obtenido para un muestreo simple al azar.

Cepa Viral (Antigeno)

Se utilizo la cepa vacunal Rhinomune HVE-1 (Herpes Virus Equino tipo-1), donada por el Dr. Robert Ellis (EEUU), como antigeno en la prueba de neutralizacion viral con un titulo de [10.sup.-5] [DL.sub.50] CC/50 [micron]l.

Deteccion de Anticuerpos

La deteccion de anticuerpos contra el VHE-1/VHE-4 fue realizado mediante la prueba de neutralizacion viral segun el protocolo descrito por la Organizacion Mundial de Sanidad Animal (OIE, 2008), y disponible en la Seccion de Virologia de la Facultad de Medicina Veterinaria de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima.

Una muestra de suero capaz de neutralizar el 100% de la capacidad infectante del virus en la monocapa celular fue considerada positiva a anticuerpos contra el virus y una muestra fue considerada negativa a anticuerpos cuando se observo 100% de efecto citopatico en la monocapa celular.

Analisis de Datos

La seroprevalencia del VHE-1/VHE-4 fue determinada mediante la formula descrita por Segura y Honhold (2000) y expresada en porcentaje con intervalo de confianza del 95% (Daniel, 1996). Las asociaciones entre la variable presencia o ausencia de anticuerpos contra VHE-1/VHE-4 y las variables sexo y lugar de procedencia fueron determinadas mediante la prueba de Regresion Logistica empleando el Programa Estadistico y Analisis de Datos STATA v. 12. La variable tipo de actividad de los caballos no fue considerada como una variable valida para el analisis ante la imposibilidad de diferenciar anticuerpos vacunales de los inducidos por virus de campo en los caballos Peruano de Paso, de carrera y de equitacion.

RESULTADOS

La seroprevalencia del VHE-1/VHE-4 detectada en las muestras de caballos a nivel nacional fue 48.9 [+ o -] 3.4% (403/825). Se pudo detectar anticuerpos en caballos de practicamente todos los departamentos del pais (Cuadro 1).

En el Cuadro 2 se presentan los resultados de seroprevalencia, segun tipo de actividad de los caballos. Los titulos de anticuerpos tuvieron un rango entre 2 a >256. El 58.6% de los animales tuvieron titulos bajos entre 2 a 8, el 29.5% de 16 a 64 y el 11.9% entre 128 a >256 (Cuadro 3).

El analisis de regresion logistica indico que las variables sexo y lugar de procedencia no afectaron la presencia de anticuerpos contra el virus.

DISCUSION

Los resultados del presente estudio indican que el VHE-1/VHE-4 esta presente en el 48.9 [+ o -] 3.4% de la poblacion de caballos del pais. La seroprevalencia detectada involucra ambos sexos y departamentos por igual, indicando que la infeccion viral esta ampliamente difundida en la poblacion de caballos en el pais (Cuadro 1). En un estudio previo en caballos de carrera, equitacion y caballos Peruano de Paso de la provincia de Lima se obtuvo una seroprevalencia similar (44.2%) (Rios et al., 2002).

En caballos de municipios del noreste de la ciudad de Sao Paulo se reporto una seroprevalencia de 27.2% (Cunha et al., 2002), en caballos del Valle de Aburra y Oriente cercano a Antioquia, Colombia, se encontro 98.7 y 96.6% para VHE-1 y VHE-4, respectivamente, utilizando la prueba de ELISA (Ruiz Saenz et al., 2008). Asi mismo, se han llevado a cabo estudios de prevalencia del virus herpes equino en paises como Argentina (Galosi et al., 1998) y Chile (Berrios et al, 2002) con similares resultados.

La amplia distribucion del VHE-1/ VHE-4 en la poblacion de caballos del pais podria deberse, en parte, al libre movimiento interno de caballos, ya que este virus no es restrictivo para el movimiento de los equidos en general. Ademas, se debe considerar el caracter subclinico de la enfermedad en caballos adultos (Goodman et al, 2012). Como en toda infeccion herpetica, luego de la infeccion primaria, el virus puede permanecer en estado de latencia en el ganglio trigemino, en el tejido linforeticular y en los leucocitos en casi el 80% de los caballos, aunque estos animales se encuentran en un estado fisiologicamente normal (Borchers et al., 1999). Sin embargo, bajo condiciones de estres como el transporte, desnutricion, parasitismo, prenez, etc., el virus puede reactivarse e infectar a otros caballos, y asi mantenerse en la poblacion (Walter et al., 2013).

Pese a su amplia distribucion en los caballos del pais, existen escasos reportes sobre la ocurrencia de casos clinicos compatibles con rinoneumonitis equina o aborto equino. Clinicamente, brotes de problemas respiratorios son frecuentes en animales jovenes en los haras de Lima (R. Oballe, Lima, comunicacion personal), pero no se han realizado estudios para determinar la participacion del VHE-1/VHE-4 en estos procesos respiratorios. Solo existe un reporte de un brote de abortos por este virus, donde el 76% (13/17) de la yeguas abortaron en un corto periodo de tiempo (Rivera et al., 1997). Usualmente, la prevalencia o incidencia de los abortos en caballos es poco conocida, probablemente, porque los fetos equinos abortados no son enviados a los laboratorios para su diagnostico por problemas de logistica, costos, etc. (Maanen et al, 2000).

Los anticuerpos neutralizantes detectados en los caballos pudieron haber sido inducidos por infecciones naturales o por vacunaciones contra la RNE, ya que la prueba de neutralizacion viral no discrimina entre anticuerpos inducidos por virus de campo o por vacuna (Van Oirschot et al, 1996). No obstante, los anticuerpos detectados en los caballos criollos fueron inducidos por virus de campo, ya que, usualmente, estos animales no reciben vacunacion contra el VHE-1/ VHE-4 u otras enfermedades virales. Algunos criadores de caballos dedicados a actividades de exhibicion o deporte, como los caballos de carrera y los caballos Peruano de Paso, indican que vacunan contra el VHE-1/ VHE-4 para prevenir problemas respiratorios en los animales jovenes y abortos en las yeguas. Es asi, que los anticuerpos detectados en estos caballos podrian ser de origen vacunal como lo indica la seropositividad detectada en estos animales. Ademas, los titulos de los anticuerpos corresponden al rango de titulos inducidos por vacuna inactivada que usualmente no son titulos altos (Kidd et al, 2006). El 90% de caballos de carrera seropositivos evidencia que los caballos fueron vacunados, mientras que la moderada seropositividad detectada en los caballos Peruano de Paso y de equitacion podria indicar que no todos los criadores utilizan la vacuna para prevenir esta infeccion viral.

Los titulos de anticuerpos neutralizantes fueron similares a aquellos detectados en caballos de la provincia de Lima, donde el 65% presento titulos entre 2 a 8 y 30% entre 16 y 64 (Rios et al, 2002). Estos niveles de anticuerpos son detectados en caballos vacunados contra VHE-1 y VHE-4, pero tambien podria indicar reacciones cruzadas entre VHE-1 y VHE-4 (Paweska et al, 1994) o anticuerpos detectados en estadios tempranos o tardios, producto de reactivaciones o infecciones naturales (Smith, 1997). Titulos de anticuerpos mayores a 128, detectados en el 11.9% de los caballos positivos a anticuerpos contra VHE-1/VHE-4, indican una infeccion activa o reciente, tal vez producto de reactivaciones o infecciones respiratorias agudas. Es notar que la mayoria de estos casos correspondio a caballos criollos (Cuadro 3).

Respecto a la inmunidad humoral en infecciones herpeticas existen aun divergencias. Algunos autores manifiestan que despues de una infeccion primaria con el VHE-1/ VHE-4, el animal desarrolla anticuerpos neutralizantes que lo protegen contra reinfecciones durante 4 a 8 meses, aunque algunos reportes indican una duracion de la proteccion de menos de 3 meses, lo que significa que el rol protectivo de la IgG no es de larga duracion, pudiendo persistir en titulos moderados por un ano o mas (Van Maanen, 2002; Paillot et al, 2008), siendo entonces la inmunidad celular de mayor relevancia en estas infecciones (Allen et al., 1999).

La prueba de neutralizacion viral utilizada en el presente estudio es la prueba estandar contra la cual se han estandarizado otras pruebas mas sensibles, como las pruebas de ELISA y las moleculares. No existen datos de su especificidad y sensibilidad para el caso de diagnostico del VHE-1/VHE-4; sin embargo, es una prueba que posee una especificidad del 100%, aunque su sensibilidad puede variar, dependiendo del cultivo celular utilizado como sistema indicador. Esta es una prueba alternativa para el diagnostico del herpes equino (OIE, 2012).

CONCLUSIONES

* Se confirma la presencia de los virus causales de la rinoneumonitis equina (VHE-1/VHE-4) en los caballos del pais.

* Los anticuerpos neutralizantes contra el VHE-1/VHE-4 tuvieron un rango de 2 a >256.

http://dx.doi.org/10.15381/rivep.v26i2.11005

Agradecimientos

Los autores agradecen a los veterinarios y personal de campo del SENASA que colectaron las muestras de suero de los caballos para el presente estudio.

LITERATURA CITADA

1. Allen GP, Kydd JH, Slater JD, Smith KC. 1999. Advances in understanding of the pathogenesis, epidemiology, and immunological control of equine herpesvirus abortion. In: Wernery U, Wade JF, Mumford JA, Kaaden OR (eds). Equine infectious diseases. Proc VIII International Conference. Newmarket, England: R&W Publications. p 129-146.

2. Berrios PE. 2002. Antecedentes en Chile de enfermedades virales de los animales domesticos. II. Enfermedades de presentacion clinica y de alta seroprevalencia. Avan Cienc Vet 17: 3-13.

3. Boelaert F, Biront P, Soumare B, Dispas M, Vanopdenbosch E, Vermeersch JP, Raskin A, et al. 2000. Prevalence of bovine herpesvirus-1 in the Belgian cattle population. Prev Vet Med 45: 285-295. doi: 10.1016/S01675877(00)00128-8

4. Borchers K, Wolfinger U, Ludwing H. 1999. Latency-associated transcripts of equine herpesvirus type 4 in trigeminal ganglia of naturally infected horses. J Gen Virol 80: 2165-2171.

5. Cunha ESM, Ferrari CI, Lara M do CCSH, da Silva LHQ. 2002. Presenta de anticorpos contra o herpesvirus equino 1 (HVE-1) em equinos do noroeste do Estado de Sao Paulo. Arq Inst Biol 69: 1-5.

6. Daniel W. 1996. Bioestadistica: base para el analisis de las ciencias de la salud. 5a ed. Mexico: Uteha Noriega Ed. 878 p.

7. Ellis JA, Bodgan JR, Kanara EW, Morley PS, Haines DM. 1995. Cellular and antibody responses to equine herpesviruses 1 and 4 following vaccination of horses with modified-live and inactivated viruses. J Am Vet Med Assoc 206: 823-832.

8. Galosi CM, Norimine J, Echeverria MG, Oliva GA, Nosetto EO, Etcheverrigaray ME, et al. 1998. Diversity of genomic electropherotypes of naturally occurring equine herpesvirus 1 isolates in Argentina. Braz J Med Biol Res 31: 771-774. doi: 10.1590/S0100879X1998000600007

9. Goodman LB, Wimer C, Dubovi EJ, Gold C, Wagner B. 2012. Immunological correlates of vaccination and infection for equine herpesvirus 1. Clin Vaccine Immunol 19: 235-241. doi: 10.1128/CVI.05522-11

10. Gordon J. 2001. The horse industry. Rural Industries Research & Development Corporation. [Internet]. Disponible en: http://www.horsecouncil. org.au/ahic/index.cfm/topics/surveys/ the-horse-industry-contributing-to-theaustralian-economy/

11. Goodwin D. 1999. The importance of ethology in understanding the behaviour of the horse. Equine Vet J 28: 15-19. doi: 10.1111/j.2042-3306.1999.tb05150.x

12. Henninger RW, Reed SM, Saville WJ, Allen GP, Hass GF, Kohn CW, Sofaly C. 2007. Outbreak of neurologic disease caused by equine herpesvirus-1 at a university equestrian center. J Vet Intern Med 21: 157-165. doi: 10.1892/08916640(2007)21[157:OONDCB]2.0.CO; 2

13. [INEI] Instituto Nacional de Estadisticas e Informatica. 2012. Ministerio de Agricultura y Riego. Lima-Peru. IV Censo Nacional Agropecuario. 62 p.

14. Johnson DC, Baines JD. 2011. Herpesviruses remodel host membranes for virus egress. Nat Rev Microbiol 9: 382-394. doi: 10.1038/nrmicro2559

15. Kidd JH, Townsend HGG, Hannant D. 2006. The equine immune response to equine herpes virus-1: The virus and its vaccines. Vet Immunol Immunopathol 111: 15-30. doi: 10.1016/J.vetimm. 2006.01.005

16. [OIE] World Organization for Animal Health. 2008. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. Chapter 2.5.9. Equine rhinopneumonitis. p 894-903. [Internet]. Available in: http:/ /www. oie. int/fileadmin/Home/eng/ Health_standards/tahm/ 2.05.09_equine_rhino.pdf

17. Paillot R, Case R, Ross J, Newton R, Nugent J. 2008. Equine herpes virus-1: virus, immunity and vaccines. Open Vet Sci J 2: 68-91.

18. Patel JR, Heldens J. 2005. Equine herpesviruses 1 (EHV-1) and 4 (EHV4)-epidemiology, disease and immunoprophylaxis: a brief review. Vet J 170: 14-23. doi: 10.1016/j.tvjl.2004.04.018

19. Paweska JT, Gerdes T, Van Heerden J. 1994. Serological relationship between a donkey alphaherpesvirus (isolate M7/91) and equid herpesvirus type 1 and 4. J S Afr Vet Assoc 65: 64-66.

20. Pusterla N, Wilson WD, Madigan JE, Ferraro GL. 2009. Equine herpesvirus1 myeloencephalopathy: a review_of recent developments. Vet J 180: 279-289. doi: 10.1016/j.tvjl.2008.08.004

21. Ploszay G, Rola J, Larska M, Zmudzinski JF. 2013. First report on equine herpesvirus type 4 isolation in Poland--evaluation of diagnostic tools. Polish J Vet Sci 16(3): 493-500. doi: 10.2478/pjvs-2013-0069

22. Rios P, Benito A, Rivera H. 2002. Rinoneumonitis equina en caballos del valle de Lima. Rev Inv Vet Peru 13(2): 66-71.

23. Rivera H, Alvitres R, Manchego A, Sandoval N, Rosadio R. 1997. Aborto por virus herpes equino. Rev Inv Pec IVITA 8(1): 49-55.

24. Ruiz-Saenz J, Goez Y, Urcuqui-Inchima S, Gongora A, Lopez A. 2008. Serologic evidence of equine herpesvirus 1 and 4 infection in two regions of Colombia. Rev Colom Cienc Pecua 21: 251-258.

25. Segura JC, Honhold N. 2000. Metodos de muestreo para la produccion y la salud animal. Yucatan, Mexico: Universidad Autonoma de Yucatan. 160 p.

26. [SENASA] Servicio Nacional de Sanidad Agraria. 2013. Documento sustentatorio para la declaracion del Peru como pais libre de Arteritis Viral Equina, Durina y Muermo. Lima: SENASA. 51 p. [Internet] Disponible en: http:// www.senasa.gob .pe/senasa/wp-content/ uploads/jer/equidos/Declaracion%20 Peru%20Libre%20de%20AVE _Durina_Muermo. pdf

27. Smith KC. 1997. Herpesviral abortion in domestic animals. Vet J 153: 253-268. doi: 10.1016/S 1090-0233(97)80061-5

28. Van Maanen C, Willink DL, Smeenk LA, Brinkhof J, Terpstra C. 2000. An equine herpesvirus 1 (EHV1) abortion storm at a riding school. Vet Q 22: 83-87. doi: 10.1080/01652176.2000.9695030

29. Van Maanen C. 2002. Equine herpesvirus 1 and 4 infections: an update. Vet Q 24: 58-78. doi: 10.1080/ 01652176.2002.9695126

30. Van Oirschot JT, Kaashoek MJ, Rijsewijk FA. 1996. Advances in the development and evaluation of bovine herpesvirus 1 vaccines. Vet Microbiol 53: 43-54.

31. Walter J, Seeh, Fey K, Bleul U, Osterrieder N. 2013. Clinical observations and management of a severe equine herpesvirus type 1 outbreak with abortion and encephalomyelitis. Acta Vet Scand 55: 19. doi:_10.1186/1751-0147-55-19

David Galindo H. (1), Hermelinda Rivera G. (1,3), Mercy Ramirez V. (1), Juan More B. (1), Alberto Manchego S. (1), Jorge Mantilla S. (2), William Valderrama B. (2)

(1) Laboratorio de Microbiologia y Parasitologia Veterinaria, Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima, Peru

(2) Direccion de Analisis de Riesgo y Vigilancia Epidemiologica, Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA), Lima, Peru

(3) E-mail: hriverag2010@gmail.com

Recibido: 11 de setiembre de 2014

Aceptado para publicacion: 30 de diciembre de 2014
Cuadro 1. Seroprevalencia del virus Herpes Equino-1-Herpes Equino-4
en caballos de los departamentos, segun zonas del Peru (2011-2012)

Zona   Departamento      Animales   Positivos a anticuerpos
                         (No. )       contra VHE-1/VHE-4

                                    n     % [+ o -] IC (1)

A      Ancash                 40    30    75.0 [+ o -] 3.4
       Arequipa               15     3    20.0 [+ o -] 20.2
       Ica                    10     7    70.0 [+ o -] 28.4
       La Libertad            30    22    73.3 [+ o -] 15.8
       Lambayeque             15     5    33.3 [+ o -] 23.9
       Lima-Callao            30    27    90.0 [+ o -] 10.7
       Moquegua                5     4    80.0 [+ o -] 35.1
       Sub-total             145    98    67.9 [+ o -] 7.6
B      Amazonas               35    18    51.4 [+ o -] 16.6
       Cajamarca             130    53    40.8 [+ o -] 8.4
       Loreto                  5     1    20.0 [+ o -] 35.1
       M adre de Dios          5     0            0
       Piura                  80    30    37.5 [+ o -] 10.6
       Puno                   40    29    72.5 [+ o -] 13.8
       Ucayali                 5     2    40.0 [+ o -] 42.9
       Tacna                   5     5          100.0
       Tumbes                  5     2    40.0 [+ o -] 42.9
       Sub-total             310    140   45.2 [+ o -] 5.5
C      Apurimac               75    34    45.3 [+ o -] 11.3
       Ayacucho               40    16    40.0 [+ o -] 15.2
       C erro de Pasco        15    10    66.7 [+ o -] 23.9
       Cusco                  85    14    16.5 [+ o -] 7.9
       Huancavelica           50    38    76.0 [+ o -] 11.8
       Huanuco                45    26    57.8 [+ o -] 14.4
       Junin                  20    19    95.0 [+ o -] 9.6
       San Martin             40     8    20.0 [+ o -] 12.4
       Sub-total             370    165   44.6 [+ o -] 5.1
Total                        825    403   48.9 [+ o -] 3.4

(1) Intervalo de confianza del 95%

Cuadro 2. Seroprevalencia del virus Herpes Equino-1-virus Herpes
Equino-4 en caballos, segun tipo de actividad (2011-2012)

Tipo de actividad        Animales   Positivos a anticuerpos
                         (No.)      contra VHE-1/VHE-4

                                    n      % [+ o -] IC (1)

Caballo criollo          670        324   48.3 [+ o -] 3.8
Caballo Peruano de Paso  92         41    44.7 [+ o -] 10.2
Caballo de carrera       30         27    90.0 [+ o -] 10.7
Caballo de equitacion    15         10    66.7 [+ o -] 23.9
Sin especificar          18          1    5.5 [+ o -] 10.5
Total                    825        403   48.9 [+ o -] 3.4

(1) Intervalo de confianza del 95%

Cuadro 3. Distribucion de los titulos de anticuerpos neutralizantes
contra el virus Herpes Equino-1-virus Herpes Equino-4 en caballos,
segun tipo de actividad (2011-2012)

Titulos de anticuerpos (1)

Tipo de actividad         2-8          16-64        128->256

                           n     %      n     %     n     %

Caballo criollo           188   46.6   94    23.3   42   10.4
Caballo Peruano de Paso   26    6.5    11    2.7    4    1.0
Caballo de carrera         9    2.2    16    4.0    2    0.5
Caballo de equitacion      7    1.7     3    0.8    0    0.0
Sin especificar            1    0.3     0    0.0    0    0.0
Total                     231   57.3   124   30.8   48   11.9

(1) Inversa de la dilucion
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Author:Galindo H., David; Rivera G., Hermelinda; Ramirez V., Mercy; More B., Juan; Manchego S., Alberto; Ma
Publication:Revista de Investigaciones Veterinarias del Peru (RIVEP)
Article Type:Report
Date:Apr 1, 2015
Words:3778
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