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PROTOCOLO PARA LA OBTENCION DE UN CONCENTRADO AUTOLOGO DE PLAQUETAS EN CONEJOS: ESTUDIO PILOTO.

PROTOCOL FOR OBTAINING AUTOLOGOUS PLATELETS CONCENTRATE IN RABBITS: A PILOT STUDY

INTRODUCCION

Los procedimientos quirurgicos han tenido gran avance en la medicina veterinaria con resultados cada vez mas eficaces y mejores. sin embargo, una de las principales dificultades que se presenta es el restablecimiento de la integridad y funcion de los tejidos afectados, indistintamente de cual sea la patologia que se presente o la tecnica quirurgica realizada para su resolucion. Lo anterior es de especial interes, por cuanto se cuenta con tecnicas o tratamientos que han demostrado mejorar el proceso de regeneracion de los tejidos y cicatrizacion de las heridas. Una de estas tecnicas, es el Concentrado Autologo de Plaquetas (CAP) el cual permite disminuir el uso de farmacos y antibioticos que pueden conducir a mayores costos economicos.

Concentrado Autologo de Plaquetas

El CAP es una porcion de la fraccion de plasma sanguineo que presenta una concentracion de plaquetas superior a los valores basales: es pertinente recordar que las plaquetas intervienen en la modulacion y aceleracion de los procesos de cicatrizacion a traves de los factores de crecimiento (GF, por su denominacion en ingles, growth factors) presentes en los granulos a, los cuales son capaces de promover la regeneracion y reparacion de tejidos (Wu et al. 2016).

Aplicaciones del CAP

El uso de CAP ha sido documentado con antelacion en el sentido que los GF presentes en las plaquetas resultan ser beneficiosos por cuanto optimizan el proceso de cicatrizacion del tejido conectivo, mejoran el proceso de reparacion tisular e influyen en la disminucion de la morbilidad. El CAP se ha utilizado ampliamente en diversas especialidades medicas que incluyen la odontologia, la ortopedia, la neurocirugia, la oftalmologia, la cirugia maxilofacial y la cirugia cosmetica (Carter et al. 2003; Crane y Rverts 2008; Dohan et al. 2005; Gurgen 2008; Bonete et al. 2009; Mishra et al. 2009; sommeling et al. 2013). En medicina veterinaria se han efectuado trabajos principalmente en equinos con lesiones de ligamentos, tendones y osteoartritis (Carmona et al. 2009; Textor 2011), en colgajos cutaneos y asociado a ceramicas en columna vertebral en ratas (Delgado et al. 2009; Li et al. 2012), en ovejas con infarto agudo de miocardio estimulando la formacion de celulas y vasos sanguineos, y en la regeneracion de cartilago (Carneiro 2013; Gallo et al. 2013), y en cerdos evaluando la capacidad osteogenica en trepanaciones mandibulares (Castaneda-vega et al. 2010). Tambien en caninos se ha reportado su uso clinico y en estudios experimentales de regeneracion osea maxilar, apendicular y en pruebas de osteointegracion (Casati et al. 2007; Moreno et al. 2004; silva et al. 2012; silva et al. 2011a; silva et al. 2007).

Se han descrito algunos protocolos para la colecta de sangre y obtencion de CAP en conejos (Batista et al. 2011; Donatti et al. 2013; Gonzalez et al. 2013). Algunos de estos estudios no describen detalladamente las tecnicas o materiales usados, al igual que las gravedades y tiempos de centrifugacion, o los resultados no se han podido replicar por parte de los autores de este reporte.

El presente documento expone el estudio piloto de un metodo para obtener CAP, describiendo la tecnica de colecta, el material utilizado y demas herramientas para la centrifugacion y obtencion del CAP en un modelo experimental como es el conejo, utilizado en diversos campos de investigacion medica y con aplicacion en humanos y otras especies animales.

MATERIALES Y METODOS

Animales

Se utilizaron 10 conejos macho de la raza Nueva Zelanda con pesos comprendidos entre 3 y 3,8 kg procedentes de la granja "Las Brisas", propiedad de la Universidad del Tolima. Los animales se encontraban clinicamente sanos al momento de la colecta y fueron alojados en jaulas individuales, con comida y agua ad libitum. La utilizacion de los animales en el presente estudio fue aprobada por el comite de etica para experimentacion con animales de la institucion de los autores.

Protocolo de obtencion de CAP

Previamente a la toma de la muestra sanguinea los animales objeto de estudio fueron premedicados con 0,2 mg/kg de meloxicam (Melodol[R] 0,5%, Laboratorios Chalver) via intramuscular y 25 mg/kg de cefalexina (Rilexine[R] 150, Virbac) via intramuscular. Para la anestesia se realizo inyeccion endovenosa de xilacina (Xilacina[R] 2%, Erma) 2 mg/kg y ketamina (Ketamina[R] 50, Holliday) 6 mg/kg por medio de cateter No. 22 (Safelet[R]) posicionado en la vena marginal de la oreja. se realizo tricotomia y antisepsia del area ventral de la region cervical. Siguiendo la tecnica propuesta por Gonzalez et al. (2013), se realizo infiltracion de lidocaina (Lidocaina[R] 2%, Virbac) en el tejido subcutaneo adyacente a la vena yugular y posteriormente se realizo la venodiseccion de la misma. Una vez identificada la vena, se procedio a la venopuncion de esta, mediante un sistema de colecta de sangre al vacio con aguja de 22G x 1" (BD[R]) el cual permitio almacenarla en tubos de 3,5 ml con citrato de sodio al 3,2% (Vacuette[R]), garantizando con ello la inocuidad de la muestra.

La sangre obtenida se analizo por medio de hemograma automatizado mediante impedancia electrica (FC-620 Vet[R]), determinando los siguientes parametros hematologicos: leucocitos (WBC), eritrocitos (RBC), plaquetas (PLT), Volumen Plaquetario Medio (MPV) y Volumen de distribucion Plaquetario (PDW). Los tubos se mantuvieron a temperatura ambiente y fueron centrifugados a 120 g durante 5 minutos (centrifuga Hermle Z 32 HK[R]).

El plasma obtenido de la centrifugacion se dividio arbitrariamente en partes iguales. Se extrajo un volumen de 2 ml del 50% del plasma que se encontraba en el nivel inmediatamente superior a la interface leuco-plaquetaria (buffy coat) y fue analizado nuevamente por duplicado utilizando el hemograma automatizado.

Analisis estadistico

Por medio del software estadistico GraphPad Prism[R] version 6 (GraphPad software, san diego, CA, USA) se realizo la prueba de Shapiro Wilk a fin de conocer la normalidad de las variables estudiadas. Estas se analizaron por medio del test de Wilcoxon y sus resultados se presentan como media y desviacion estandar. Se determino la eficiencia de coleccion de plaquetas por medio de la siguiente ecuacion (Weibrich et al. 2003):

Eficiencia de Colecta de Plaquetas = [volumen de CAP x recuento de plaquetas en el CAP/volumen de sangre entera x recuento de plaquetas en sangre entera] x 100

Se realizo correlacion de Spearman para evaluar el grado de asociacion entre las variables del CAP obtenido.

RESULTADOS

En el analisis hematologico los resultados que presentaron diferencias estadisticamente significativas (P < 0,05) fueron las variables WBC ([10.sup.*9]/l), RBC ([10.sup.*12]/l) y PLT ([10.sup.*9]/l)(Tabla 1). Se encontro correlacion positiva moderada entre el MPV y el PDW, al igual que entre el conteo de celulas rojas y el conteo de celulas blancas (Tabla 2). La eficiencia en la coleccion de plaquetas fue de 51,06%. El porcentaje de plaquetas concentradas en el CAP fue de 153% con respecto a la media de plaquetas obtenidas en los resultados basales.

DISCUSION

A pesar de que se conocen diversas publicaciones sobre la obtencion de CAP en conejos, la escasa estandarizacion y la disimilitud entre los diferentes metodos para su obtencion dificulta la eleccion del protocolo mas apropiado, razon por la cual a criterio de cada investigador se establece la metodologia conforme a las condiciones de trabajo existentes (Aleixo et al. 2011). Entre los metodos reportados se presentan diferencias notorias principalmente en la obtencion de la sangre, la centrifugacion, el anticoagulante usado y la cantidad de plaquetas concentradas.

La obtencion de la sangre se realizo por medio de venodiseccion de la vena yugular usando el metodo descrito por Gonzalez et al. 2013. A consideracion de los autores fue el procedimiento mas seguro y eficaz, despues de realizar pruebas colectando de la vena femoral, la vena safena y las venas marginales de la oreja, descritas en otros estudios (Batista et al. 2011; Donatti et al. 2013; Gonzalez et al. 2013). En un estudio reciente publicado por Pazzini et al. (2016), lograron colectar sangre de la vena yugular sin diseccion de los tejidos adyacentes; sin embargo, segun la experiencia de los autores, no es posible una adecuada visualizacion de la vena, lo que podria provocar la presentacion de mayores traumatismos vasculares en los conejos y la formacion de trombos en las muestras.

Asi mismo, se han descrito metodos de doble centrifugacion: sin embargo, estos podrian provocar una activacion prematura de las plaquetas con la respectiva liberacion de los GF (Gonzalez et al. 2013; Nagata et al. 2010). La eficiencia de coleccion de plaquetas fue de 51,06%, mayor a la obtenida en otra investigacion en la misma especie en la que reportaron eficacias de 20,6% y 18,27% (Gonzalez et al. 2013). Igual sucede en otras especies donde encontraron eficacias de 50% en felinos, de 29,9% en caninos, y de 7,5% y 19,1% en equinos y bovinos respectivamente: en los dos ultimos reportes se usaron metodos de doble centrifugacion (Arguelles et al. 2006; Lopez et al. 2012; silva et al. 2011a; silva et al. 2011b).

Algunos autores han descrito el uso de diversos anticoagulantes como la heparina, el EDTA, el citrato de sodio, el acido citrico y la dextrosa en solucion para colectar sangre para obtener CAP. La eleccion del citrato de sodio se debio a su consecucion esteril en los tubos vacutainer, lo que reduce el riesgo de contaminacion. En comparacion con otros anticoagulantes, el citrato de sodio tiene la capacidad de conservar la estructura y la homogeneidad de las plaquetas (Carmona et al. 2014; White 2000).

La cantidad de plaquetas colectadas en nuestro estudio es menor en comparacion con los metodos de doble centrifugacion realizados por nagata et al. (2010) y Pazzini et al. (2016), en los que obtuvieron 1.986 x [10.sup.3] PLT/[my]l y 1.176 x [10.sup.3] PLT/ [my]l, respectivamente. No obstante, los metodos de doble centrifugacion causan alteracion en la morfologia de las plaquetas y son mas sensibles a errores en el proceso (Nagata et al. 2010). Se puede considerar que la cantidad de plaquetas obtenida en el presente estudio podria ser suficiente para producir su efecto, ya que se ha observado que la respuesta clinica no tiene correlacion con la concentracion de plaquetas sino con su integridad (Lopez et al. 2012). Las caracteristicas de MPV Y PDW, como indicadores de la integridad de las plaquetas, no tuvieron diferencias significativas en los valores basales y el CAP

La cantidad de celulas de linea blanca en el CAP fue 2.080 x [10.sup.*9]/l, menor a la obtenida por Gonzalez et al. (2013), quienes a pesar de colectar mayor numero de plaquetas, obtuvieron 7.060 x [10.sup.*9]/l leucocitos. Algunos autores consideran que la concentracion de un gran numero de leucocitos en los CAP podria ser perjudicial para los tejidos tratados (Chizzolini et al. 2011; Zimmermann et al. 2003) y aunque se ha estudiado su efecto en diferentes circunstancias, como la reduccion del crecimiento bacteriano, su presencia y cantidad en los CAP es aun controversial (Carmona et al. 2011; Lopez et al. 2015).

Aunque se evidencio una diferencia estadistica significativa en la cantidad de celulas de la linea roja entre la sangre entera y el CAP obtenido, esto no supone ningun efecto, pues la concentracion es minima y aun se desconoce su incidencia en los efectos del CAP. Las correlaciones positivas moderadas entre WBC y RBC, y entre MPV y PDW, permiten suponer que a mayor cantidad de hematies mayor seria la cantidad de leucocitos que se concentraran en el CAP. A pesar de la cantidad limitada de animales usados, los resultados permiten inferir que el protocolo descrito es viable para la obtencion de CAP en conejos.

CONCLUSIONES

Los resultados de este estudio piloto permiten concluir que es factible la elaboracion de un CAP para la especie leporina, mediante un protocolo con centrifugacion a 120 g durante 5 minutos, obteniendo 153% mas plaquetas que los niveles basales, y niveles menores de leucocitos a los reportados en otras investigaciones. Los resultados obtenidos son aplicables en los centros veterinarios para tratar lesiones en conejos: sin embargo, se hace necesaria la realizacion de mas investigaciones con una mayor poblacion para determinar de manera mas confiable los resultados aqui expresados.

DOI: 10.15446/RFMVZ.V64N1.65813

AGRADECIMIENTOS

Al Dr. Fabian Castaneda, por su colaboracion. Al Laboratorio de Diagnostico veterinario (LADIVE), al Laboratorio de servicios de Extension en analisis Quimico (LASEREX) y a la Oficina Central de Investigaciones de la Universidad del Tolima.

REFERENCIAS

Aleixo GAS, Coelho MCOC, Teixeira MN, Mesquita EP Oliveira FF, Zubieta LMV, Almeida TLC, Guimaraes ALN, Maia FC, Zacarias TFL, et al. 2011. Comparison between two protocols to obtain platelet-rich plasma in dogs. Arq Bras Med Vet Zootec. 63(3): 567-573. Doi: 10.1590/ S0102-09352011000300005.

Arguelles D, Carmona JU, Pastor J, Iborra A, Vinals L, Martinez P, Bach E, Prades M. 2006. Evaluation of single and double centrifugation tube methods for concentrating equine platelets. Res Vet Sci. 81(2): 237-245. Doi: 10.1016/j. rvsc.2005.12.008.

Batista M, Leivas T, Rodrigues C, Arenas GC, Belitardo DR, Guarniero R.. 2011. Comparison between the effects of platelet-rich plasma and bone marrow concentrate on defect consolidation in the rabbit tibia. Clinics. 66(10): 1787-1792. Doi: 10.1590/S1807-59322011001000018.

Bonete D, Gomar F, Carrasco J. 2009. Utilizacion de geles plaquetarios en la curacion de los defectos oseos. Estudio experimental. Rev Esp Cir Osteoart. 44: 93-101.

Carmona J, Lopez C, Giraldo C. 2011. Uso de concentrados autologos de plaquetas como terapia regenerativa de enfermedades cronicas del aparato musculoesqueletico equino. Arch Med Vet. 43(1): 1-10. Doi: 10.4067/S0301732X2011000100002.

Carmona J, Prades M, Arguelles D. 2009. Concentrados autologos de plaquetas como tratamiento de lesiones de tejidos blandos del aparato locomotor en caballos. Arch Med Vet. 41(1): 77-82. Doi: 10.4067/S0301-732X2009000100011.

Carmona JU, Rios E, vilar JM, Giraldo CE, Lopez C. 2014. efectos de dos anticoagulantes sobre el conteo celular y parametros de activacion plaquetaria de plasma rico en plaquetas de bovinos. Arch Med Vet. 46(3): 375-380. Doi: 10.4067/S0301-732X2014000300005.

Carneiro M, Barbieri CH, Barbieri N. 2013. Platelet-rich plasma gel promotes regeneration of articular cartilage in knees of sheeps. Act Ort Bras. 21(2): 80-86. Doi: 10.1590/S141378522013000200003.

Carter C, Jolly DG, Worden CE, Hendren DG, Kane CJ. 2003. Platelet-rich plasma gel promotes differentiation and regeneration during equine wound healing. Exp Mol Pathol. 74(3): 244-255. Doi: 10.1016/S0014-4800(03)00017-0.

Casati MZ, de Vasconcelos Gurgel BC, Goncalves PF, Pimentel SP, da Rocha Nogueira Filho G, Nociti Jr. FH, Sallum EA. 2007. Platelet-rich plasma does not improve bone regeneration around peri-implant bone defects--A pilot study in dogs. Int J Oral Max Surg. 36(2): 132-136. Doi: 10.1016/j.ijom.2006.06.004.

Castaneda-Vega P, Lopez-Lopez J, Chimenos-Kustner E, Manzanares-Cespedes C, Munoz-Sanchez J, Jane-Salas E, Alvarez-Lopez JM, Gimeno-Sanding A. 2010. Estudio histomorfologico de la capacidad de regeneracion osea del plasma rico en plaquetas, medula osea y fosfato tricalcico. Estudio experimental en cerdos "regeneracion osea en cirugia experimental en cerdos". Kiru. 7(1): 25-33.

Chizzolini C, Brembilla NC, Montanari E, Truchetet ME. 2011. Fibrosis and immune dysregulation in systemic sclerosis. Autoim Rev. 10(5): 276-281. Doi: 10.1016/j.autrev.2010.09.016.

Crane D, Everts P. 2008. Platelet rich plasma (PRP) matrix grafts. Prac Pain Manag. [Internet]. [Citado 2016 ago 19]; (Feb): 1-10. Disponible en: http://www.elitesportperformance.com/ ieadmin/files/Rehab-PRPMatrix.pdf.

Delgado R, Bonatelli A, Alves M. 2009. Study about fusion using ceramic with platelet-rich plasma in the spine of rats. Act Ortop Bras. 17(5): 282-285. Doi: http://dx.doi.org/10.1590/ S1413-78522009000500006.

Dohan S, Dohan A, Choukroun J, Diss A, Simonpier A, Girard MO, Dohan D. 2005. De l'usage des concentres plaquettaires autologues en application topique. EMC--Odont. 1(2): 141-180. Doi: 10.1016/j.emcodo.2005.04.001.

Donatti C, Brandao C, Ranzani JJT, Perches CS, Padovani CR, Pellizzon CH, Sereno MG. 2013. Use of platelet-rich plasma in the treatment of deep corneal ulcers induced in rabbits. Clinical and histomorphometric evaluation. Arq Bras Med Vet Zootec. 65(3): 809-818. Doi: 10.1590/ S0102-09352013000300029.

Gallo I, Saenz A, Arevalo A, Roussel S, Perez-Moreiras I, Artinano E, Martinez-Penuela A, Esquide J, Aspiroz A, Camacho I. 2013. Efecto del plasma autogeno rico en plaquetas sobre el infarto de miocardio en ovejas. Arch Cardiol Mex. 83(3): 154-158. Doi: 10.1016/j. acmx.2013.04.011.

Gonzalez JC, Lopez C, Carmona JU. 2013. Evaluacion de un metodo manual para producir plasma rico en plaquetas-puro (P-PRP) en conejos: estudio hematologico. Arch Med Vet. 272(3): 267-272. Doi: 10.4067/S0301732X2013000300006.

Gurgen M. 2008. Treatment of chronic wounds with autologous platelet-rich plasma. EWMA J. 8(2): 5-10.

Li W, Enomoto M, Ukegawa M, Hirai T, Sotome S, Wakabayashi Y, Shinomiya K, Okawa A. 2012. Subcutaneous injections of platelet-rich plasma into skin flaps modulate proangiogenic gene expression and improve survival rates. Plast Reconstr Surg. 129(4): 858-866. Doi: 10.1097/ PRS.0b013e3182450ac9.

Lopez C, Alvarez ME, Carmona JU. 2015. Effect of equine leukocyte-reduced platelet concentrates on methicillin-resistant Staphylococcus aureus cultures and measurement of temporal growth factor degradation. J Equine Vet Sci. 35(3): 219-224. Doi: 10.1016/j.jevs.2015.01.001.

Lopez C, Giraldo C, Carmona J. 2012. Evaluacion de un metodo de doble centrifugacion en tubo para concentrar plaquetas bovinas: estudio celular. Arch Med Vet. 44(2): 109-115. Doi: 10.4067/S0301-732X2012000200003.

Mishra A, Woodall J, Vieira A. 2009. Treatment of tendon and muscle using platelet-rich plasma. Clin sports Med. 28(1): 113-125. Doi: 10.1016/j.csm.2008.08.007.

Moreno L, Marin G, Enriquez F, Gonzalez J, Moreno L, Cisneros L, De la Sancha LM. 2004. Utilizacion de plasma rico en plaquetas para regeneracion periodontal en un perro. Rev Odont Mex. 8(3): 64-69.

Nagata MJ, Messora Mr, Furlaneto Fa, Fucini sE, Bosco AF, Garcia vG, deliberador TM, de Melo LG. 2010. Effectiveness of two methods for preparation of autologous platelet-rich plasma: an experimental study in rabbits. Eur J Dent. 4(4): 395-402.

Pazzini JM, de Nardi AB, Huppes RR, Gering AP, Ferreira M, Silveira C, Luzzi M, Santos R. 2016. Method to obtain platelet-rich plasma from rabbits (Oryctolagus cuniculus). Pesq Vet Bras. 36(1): 39-44. Doi: 10.1590/S0100736X2016000100007.

Silva s, Ferrigno C, Sterman F, Baccarin d, Yazbek K, Muramoto C, Amaku M. 2007. Platelet-rich plasma combined with hydroxyapatite on bone callus formation in experimental radii fractures in dogs. Cien Rural. 37(4): 1045-1051. Doi: 10.1590/S0103-84782007000400020.

Silva RF, Rezende CM, Paes-Leme FO, Carmona JU. 2011a. Evaluacion del metodo del tubo para concentrar plaquetas felinas: estudio celular. Arch Med Vet. 43(2): 187-190. Doi: 10.4067/ S0301-732X2011000200013.

Silva RF, Rezende CM, Paes-Leme FO, Carmona JU. 2011b. Evaluacion del metodo del tubo para concentrar plaquetas caninas: estudio celular. Arch Med Vet. 98: 95-98. Doi: 10.4067/ S0301-732X2011000100014.

Silva R, Carmona J, Rezende C. 2012. The use of intra-articular platelet rich-plasma as a postsurgical treatment of cranial cruciate ligament rupture in a dog. Arq Bras Med Vet Zootec. 64(4): 847-852. Doi: 10.1590/S0102-09352012000400009.

Sommeling CE, Heyneman A, Hoeksema H, Verbelen J, stillaert FB, Monstrey s. 2013. The use of platelet-rich plasma in plastic surgery: a systematic review. J Plast Reconstr Aesthet. Surg. 66(3): 301-311. Doi: 10.1016/j.bjps.2012.11.009.

Textor J. 2011. Autologous biologic treatment for equine musculoskeletal injuries: Platelet-rich plasma and IL-1 receptor antagonist protein. Vet Clin Norht Am Equine Pract. 27(2): 275-298. Doi: 10.1016/j.cveq.2011.05.001.

Weibrich G, Kleis WK, Buch R, Hitzler WE, Hafner G. 2003. The Harvest smart PReP [TM] system versus the Friadent-schutze platelet-rich plasma kit. Comparison of a semiautomatic method with a more complex method for the preparation of platelet concentrates. Clin Oral Implants Research. 14(2): 233-239. Doi: 10.1034/j.1600-0501.2003.140215.x.

White JG. 2000. EDTA-induced changes in platelet structure and function: clot retraction. Platelets. 11(1): 49-55.

Wu P, Diaz R, Borg-stein, J. 2016. Platelet-Rich Plasma. Phys Med Rehabil Clin N Am. 27: 825-853. Doi: 10.1016/j.pmr.2016.06.002.

Zimmermann R, Arnold D, strasser E, Ringwald J, Schlegel A, Wiltfang J, Eckstein R. 2003. Sample preparation technique and white cell content influence the detectable levels of growth factors in platelet concentrates. Vox sang. 85(4): 283-289. Doi: 10.1111/j.0042-9007.2003.00361.x.

A. F Bonilla-Gutierrez * (1), C. Aragon-Urrego (1), O. L. Aristizabal-Paez (1)

Articulo recibido: 11 de marzo de 2016 * Aprobado: 21 de febrero de 2017

(1) Grupo de Investigacion en Medicina y Cirugia de Pequenos Animales, Facultad de Medicina veterinaria y Zootecnia, Universidad del Tolima. Barrio santa Helena Parte Alta, A.A. 546, Ibague, Tolima (Colombia).

* Autor para correspondencia: afbonillag@gmail.com
TABLA 1. Comparacion de resultados hematologicos en los
niveles basal y CAP.

Parametro                  Basal             CAP

WBC X [10.sup.*9]/l    4,370 (1,072)   2,080 (0,963) *
RBC X [10.sup.*12]/l   3,204 (0,625)   0,955 (0,480) *
PLT X [10.sup.*9]/l    163,7 (53,92)   250,8 (65,84) *
MPV f/l                6,910 (0,284)    6,750 (0,380)
PDW %                  14,37 (20,96)   7,450 (0,6819)

Las variables se muestran como Media y (SD).

* Denota diferencia estadisticamente significativa (P < 0,05).

TABLA 2. Correlacion de Spearman para resultados de variables en CAP.

Parametro                WBC        RBC        PLT        MPV

RBC X [10.sup.*12]/l   0,7530 *
PLT X [10.sup.*9]/l     0,3140     0,05488
MPV f/l                -0,1380     0,1104    -0,08282
PDW %                  -0,3704    -0,09877   -0,06791   0,7826 *

* Correlacion significativa al nivel 0,01 (dos colas).

WBC: leucocitos, RBC: eritrocitos, PLT: plaquetas, MPV: Volumen
Plaquetario Medio, PDW: Volumen de Distribucion Plaquetario.
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Title Annotation:INVESTIGACION
Author:Bonilla-Gutierrez, A. F.; Aragon-Urrego, C.; Aristizabal-Paez, O. L.
Publication:Revista Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia
Date:Jan 1, 2017
Words:3892
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