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Impacto de la parasitosis por gregarinas (Nematopsis sp) en el cultivo de camaron Litopenaeus vannamei.

IMPACT OF PARASITISM BY GREGARINES (Nematopsis sp) IN FARMING SHRIMP Litopenaeus vannamei

INTRODUCCION

En las ultimas tres decadas, se ha incrementado el aprovechamiento de algunos organismos acuaticos para la alimentacion humana (Rodriguez y Le Moullac, 2000; Aguirre-Guzman et al., 2001), promoviendo el desarrollo de explotaciones intensivas que generan la posible dispersion de agentes patogenos en las poblaciones silvestres y cultivadas (Teunissen et al., 1998; Saulnier et al., 2000; Aguirre-Guzman et al, 2001; Van de Braak, 2002).

En la produccion intensiva de cualquier especie animal al paso del tiempo se contaminan las instalaciones con patogenos, transformandose estas en focos de infeccion, por eso la importancia de contar con adecuados programas de sanidad y medicina preventiva (Kautsky et al., 2000). Las especies acuicolas no son la excepcion (Lightner et al., 1992; Luedeman y Lightner, 1992).

Las gregarinas son protozoarios cuyo grupo ha sido tradicionalmente ubicado en el Phyllum protozoa y en la clase Sporozoa (Kudo, 1954), son parasitos monoxenos o estenoxenos con cavidades corporales caracteristica de los invertebrados, durante su ciclo de vida presentan fases de trofozoitos (gamontes) y fases sexuales grandes extracelulares (Reyes-Villanueva, 2004). Las gregarinas del genero Nematopsis, parasitan comunmente el intestino del camaron blanco del pacifico Litopenaeus vannamei, especie que se cultiva actualmente en todo el mundo (Chavez-Sanchez et al., 2002).

Jimenez (1991) por su parte, reporta que la mas alta concentracion de gregarinas en camarones del genero Litopenaeus, esta asociada a intestinos vacios o parcialmente vacios, con tasa de crecimiento baja y que en el caso de invasiones masivas de gregarinas en camarones de talla menor, llegan a producir alta mortalidad.

En una investigacion realizada en un laboratorio de produccion de postlarva de camaron blanco del pacifico L. vannamei en el estado de Texas, E.U. se detecto la presencia de gregarinas en el 56 a 80 por ciento de los ejemplares muestreados (Jones et al., 1994). En otro estudio publicado por Jimenez et al. (2002), evaluaron granjas de camaron L. vannamei de ecuador, revelando una infestacion en el 50 a 80 por ciento de los camarones, con una carga parasitaria de 10 a 5,000 gregarinas por animal, se logro comprobar que las postlarvas antes de la siembra no contenian el parasito, demostrando que la infeccion se produjo en los estanques de las granjas. Esta parasitosis se asocia al medio ambiente marino, sin haberse detectado el parasito en camarones de agua dulce o de baja salinidad.

En las costas del Pacifico Mexicano cercanas a San Blas, Nayarit, entre 1995 y 1996, se presento mortandad de camarones capturados L. vannamei y L. stylirostris que serian utilizados como reproductores, posterior a los analisis realizados se demostro la presencia de bacterias Gram negativas, del virus de la necrosis hipodermica y hematopoyetica infecciosa (IHHNV), del virus del sindrome del Taura (TSV) y gregarinas, provocando contaminacion de algunas granjas en las que se presento alta mortalidad (Morales-Covarrubias y Chavez Sanchez, 1999). En otra investigacion Vidal-Martinez et al. (2006), detectaron baja prevalencia de gregarinas en 248 camarones rosados F. duorarum, colectados en 20 puntos del Golfo de Mexico, en las costas del estado de Campeche. Por otro lado entre 1999 y 2000, se realizo un muestreo de camarones silvestres y cultivados en el Golfo de Mexico, de las especies Litopenaeus setiferus, Farfantepenaeus aztecus, Farfantepenaeus duorarum y Litopenaeus vannamei, confirmando la presencia de gregarinas en el 3 al 56 por ciento de los ejemplares, presentando la mayoria de los casos infestacion baja (Chavez-Sanchez et al., 2002).

En una encuesta realizado a 23 granjeros de camaroneras de Sinaloa, Mexico, en el ano 2001, reportaron ocho enfermedades en el ciclo anterior, siendo las mas frecuentes, la parasitosis por gregarinas, las infecciones por bacterias del genero Vibrio, sindrome viral de la mancha blanca (WSSV) y Necrosis hepatopancreatica, para lo que los granjeros utilizaron 106 diferentes productos para el control de estos padecimientos, destacando los aditivos en alimento, antibioticos, vitaminas y fertilizantes inorganicos, sin obtener resultados favorables (Lyle-Fritch et al., 2006).

La infestacion de este parasito se asocia a disminucion en la produccion y bajo peso, provocando que los granjeros utilicen antibioticos y metodos empiricos para el control del parasito, sin haber demostrado la efectividad de estos tratamientos. Buscando un tratamiento efectivo Fajer-Avila et al. (2005), adicionaron al alimento 6 g/kg de monensina sodica, alimentando a los camarones por 5 dias consecutivos con el alimento preparado, obteniendo una eficiencia del 92 al 94 por ciento en la eliminacion de las gregarinas.

Con los antecedentes que se mencionaron, queda demostrada la importancia de la parasitosis por gregarinas en los camarones silvestres y de cultivo y de la necesidad de realizar estudios que ayuden a entender las perdidas que provoca, asi como de posibles tratamientos. El presente estudio tiene como objetivo demostrar los beneficios en la productividad que se obtienen al eliminar las gregarinas mediante un tratamiento efectivo.

MATERIALES Y METODOS

El presente trabajo se realizo en la granja Almagre, cercana al poblado de La Pesca, en el municipio de Soto la Marina, estado de Tamaulipas, Mexico, ubicada en las coordenadas 23[grados]50'00.98" N y 97[grados]48'04.95" W, dedicada a la engorda de camaron Litopenaeus vannamei. Cuenta con 7 estanques de cultivo que abarcan una superficie de cultivo de 60 ha. Para este estudio se utilizo el estanque No. 1 de 7,5 ha con profundidad de agua de 50 cm en lo mas bajo a 2,5 m en lo mas profundo, el suelo del estanque fue tratado con 500 kg de cal por ha 15 dias antes de llenarlo para iniciar el ciclo, se sembraron 1,000,000 de postlarvas, con una densidad de poblacion de 13 organismos/[m.sup.2], el ciclo inicio el 12 de Agosto del ano 2009.

Se construyeron 4 jaulas con estructura de tubo PVC y malla plastica con diametro de luz de 6 mm, de 1,7 m de altura y 1,5 m de ancho y largo, cubriendo cada jaula una superficie del fondo del estanque de 2,25 [m.sup.2]. Para alimentar los camarones de la granja se utilizo alimento comercial con 30 por ciento de proteina cruda, mismo que su utilizo en los camarones del estudio, a 3 kg de alimento se les adicionaron 6 g/kg de monensina sodica para ser utilizado como tratamiento en contra de gregarinas (Fajer-Avila et al., 2005), para el pesaje de los camarones fue utilizada una bascula electronica digital IBN(r) (IBN MODEL B-3C(r), BASCULAS MEXICANAS, MEXICO) con escala de 0,01 g, para la busqueda y observacion de las gregarinas fue utilizado un microscopio optico de luz directa Carl Zeiss (K-4, CARL ZEISS, GERMANY) y el conteo de los protozoarios se realizo con un contador manual (MODEL 00401, ELEPHANT PRODUCTS, TAIWAN)

Se pescaron con red tipo Atarraya con luz de malla de %" 50 camarones L. vannamei de 5 distintas zonas del estanque No.1 de la granja almagre, a cada camaron en fresco se le extrajo el intestino y se corto este en forma longitudinal, se extrajo el contenido mediante barrido y se coloco diseminado junto con el tejido intestinal en un portaobjetos, se agrego una gota de verde malaquita y se coloco un cubreobjetos, las laminillas se observaron al microscopio para localizar las gregarinas y efectuar un conteo de estos protozoarios en cualquier fase de desarrollo, concluido el conteo de gregarinas, se obtuvo la media de los 50 camarones, en base a la cantidad de parasitos se catalogaron con una infestacion grado 2 de gregarinas Nematopsis (6 a 10 parasitos por camaron) segun el grado de infestacion propuesto por Bush et al. (1997) citado por (Chavez-Sanchez et al., 2002), Otros camarones del mismo estanque se utilizaron para identificar el genero de las gregarinas presentes.

Se colocaron las jaulas dentro del estanque a una profundidad de 1,5 m, se pescaron camarones para formar 4 lotes de 29 ejemplares cada uno, se pesaron las biomasas de cada lote y se coloco cada lote en una jaula, durante todo el desarrollo de la investigacion se alimento a los camarones 3 veces por dia a razon de 30 g/lote/dia, a los lotes 3 y 4 se les suministro alimento adicionado con monensina sodica los primeros 5 dias (Fajer-Avila et al., 2005), a los lotes 1 y 2 alimento sin medicacion tambien por 5 dias, posterior a esto, se continuo alimentando con alimento comercial con 30 por ciento de proteina cruda a los 4 lotes por igual, hasta la terminacion del ciclo productivo.

Un dia antes de cosechar se extrajeron las jaulas, se contaron los camarones de cada lote, se pesaron las biomasas y se obtuvo la media de peso de cada lote, se procedio a inyectar solucion Davidson (33 por ciento de alcohol etilico al 95 por ciento, 22 por ciento de formalina al 100 por ciento, 11,5 por ciento de acido acetico glacial y 33,5 por ciento de agua destilada) a los camarones, en hepatopancreas, cefalotorax, 2, 4 y 6 segmentos abdominales (Lightner, 1996), se les realizo un corte longitudinal lateral a todo lo largo de la cuticula y se colocaron en frascos (uno para cada lote) con solucion Davidson, etiquetados para su identificacion (Lightner, 1996), se trasladaron al laboratorio, para realizar estudios histopatologicos y conteo de gregarinas.

Los pesos de biomasas obtenidos, se analizaran mediante la prueba t de Student.

RESULTADOS

En el conteo de gregarinas realizado a 50 camarones antes de iniciar el tratamiento se obtuvo una media de infestacion de 8 parasitos por ejemplar, catalogandolos segun los criterios de Bush, et al. 1997, citado por (Chavez-Sanchez et al., 2002) con una grado 2 de severidad. Al termino del experimento, los camarones de los lotes tratados (Jaulas 3 y 4), mantuvieron una media de 2 parasitos por ejemplar y los de los lotes no tratados (Jaulas 1 y 2) 12 gregarinas por camaron. Segun las caracteristicas morfologicas observadas de las gregarinas se clasificaron dentro del genero Nematopsis sp.

Al termino del experimento, en las jaulas 2, 3 y 4 se detecto una perdida de camarones, recuperando 27, 26 y 28 ejemplares respectivamente.

Lotes testigo sin tratamiento

Peso de la biomasa al inicio

Jaula No. 1: 206,2 g entre 29 camarones 7,11 g por camaron

Jaula No. 2: 207,0 g entre 29 camarones 7,13 g por camaron

Peso promedio de los camarones de las jaulas 1 y 2 al inicio de la investigacion 7,12 g

Peso de la biomasa al final

Jaula No. 1: 268,7 g entre 29 camarones 9,26 g por camaron

Jaula No. 2: 250,7 g entre 27 camarones 9,28 g por camaron (dos muertos)

Peso promedio de los camarones de las jaulas 1 y 2 al final de la investigacion 9,27 g

Lotes con tratamiento

Peso de la biomasa al inicio

Jaula No. 3: 205,0 g entre 29 camarones 7,07 g por camaron

Jaula No. 4: 206,4 g entre 29 camarones 7,11 g por camaron

Peso promedio de los camarones de las jaulas 3 y 4 al inicio de la investigacion 7,09 g

Peso de la biomasa al final

Jaula No. 3: 258,9 g entre 26 camarones 9,95 g por camaron (tres muertos)

Jaula No. 4: 274,9 g entre 28 camarones 9,82 g por camaron (dos muertos)

Peso promedio de los camarones de las jaulas 3 y 4 al final de la investigacion 9,88 g

Analisis estadistico

Despues del analisis estadistico de los pesos mediante la prueba t de Student, se obtuvieron los siguientes resultados:

Peso medio ([+ o -] desviacion estandar) de camarones al inicio del experimento en ambos tratamientos.

[FIGURA 1 OMITIR]

Peso medio ([+ o -] desviacion estandar) de camarones al final del experimento en ambos tratamientos.

[FIGURA 2 OMITIR]

CONCLUSIONES Y DISCUSION

En diversos estudios como el de Vidal-Martinez et al. (2006) y Chavez-Sanchez et al. (2002) detectaron la parasitosis por gregarinas del genero Nematopsis sp. en camarones silvestres capturados en aguas del Golfo de Mexico, lo que sugiere que los camarones de la granja en estudio se parasitaron debido a la contaminacion de las aguas utilizadas para llenar los estanques.

La parasitosis por gregarinas juega un papel importante en los cultivos de granjas camaroneras en Mexico, como lo demuestra la investigacion realizada por Lyle-Fritch et al. (2006), en la que 23 granjeros de Sinaloa, Mexico, reportaron que de las 8 enfermedades mas comunes que se han presentado en sus cultivos, la infestacion por gregarinas es la mas frecuente. Por otro lado Chavez-Sanchez et al. (2002) tambien detecto la presencia de gregarinas en camarones cultivados en granjas aledanas a las costas del Golfo de Mexico, esta informacion concuerda con la presencia de gregarinas en el area de estudio del presente trabajo y corrobora la necesidad de evaluar tratamientos en contra de esta parasitosis con la finalidad de mejorar la productividad de los cultivos y buscar la inocuidad alimentaria del producto final.

Despues de una investigacion Fajer-Avila et al. (2005), proponen como tratamiento para controlar la parasitosis por gregarinas, la adicion de 2 a 8 g/kg de monensina sodica al alimento. En esta investigacion se comprueba la efectividad del tratamiento, logrando disminuir considerablemente el grado de infestacion despues del tratamiento con monensina sodica. En el mismo estudio Fajer-Avila et al. (2005) manifiesta la asociacion de la parasitosis por gregarinas con disminucion en la produccion y bajo peso de los camarones, esto concuerda con la diferencia significativa que se obtuvo en el presente trabajo, en el aumento de peso de los camarones despues del tratamiento.

Al termino del presente estudio, se concluye que la parasitosis por gregarinas del genero Nematopsis en camarones Litopenaeus vannamei de cultivo, afecta en forma negativa en el aumento de peso, ocasionando disminucion en la productividad y las utilidades de las granjas camaronicolas, tambien se concluye que el tratamiento con monensina sodica es efectivo en contra de este protozoario y favorece el aumento de peso de los camarones del cultivo.

Esta investigacion se realizo en una explotacion con baja carga parasitaria, se recomienda mas investigacion sobre este aspecto en explotaciones con mayor carga de gregarinas.

LITERATURA CITADA

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Francisco M. Guzman-Saenz (1); Roberto Perez-Castaneda (1); Gilberto Gutierrez-Salazar (1); Pablo Gonzalez-Alanis (1); Mario Hernandez-Acosta (2) y Jesus G. Sanchez-Martinez (1)

(1) Profesor investigador. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autonoma de Tamaulipas. Direccion Postal: Km. 5 Carretera Ciudad Victoria--Cd. Mante, Cd. Victoria, Tamaulipas, Mexico, C.P. 87000, Tel 52+(834) 31-2-10-61. Correo-e: fmguzman@uat.edu.mx. (2) Profesor investigador. Universidad Tecnologica del Mar de Tamaulipas Bicentenario. Direccion Postal: Domicilio Conocido Poblado La Pesca, Municipio de Soto la Marina, Tamaulipas, Mexico. C.P. 87678, Telefonos: 52+(835) 327 1538 y 52+(835) 327 1539.Correo-e: mhernandeza1901@utmart.edu.mx.

Sintesis curricular

Francisco Manuel Guzman Saenz

Doctorado en Manejo de Vida Silvestre y Desarrollo Sustentable por la Facultad de Ciencias Biologicas de la Universidad Autonoma de Nuevo Leon. Profesor de Carrera e Investigador categoria "D" en la Universidad Autonoma de Tamaulipas, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Integrante del Cuerpo Academico de Sanidad y Produccion Acuicola. Investigaciones enfocadas a Sanidad Acuicola.

Roberto Perez Castaneda

Profesor de Carrera categoria "D" en la Universidad Autonoma de Tamaulipas, adscrito a la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Pertenece al Cuerpo Academico de Acuacultura. Sus investigaciones se enfocan principalmente a la ecologia y manejo de recursos pesqueros, colaborando tambien en temas de contaminacion costera, acuacultura y sanidad acuicola. Pertenece al SNI (Sistema Nacional de Investigadores) nivel 2.

Gilberto Jesus Gutierrez Salazar

Profesor de tiempo completo e investigador en la Universidad Autonoma de Tamaulipas. Medico Veterinario Zootecnista, Estudios de Posgrado: Maestria en Produccion Acuicola y Doctorado en Manejo de Vida Silvestre y Desarrollo Sustentable.25 anos de experiencia en Acuacultura (sistemas de recirculacion de agua marina para la reproduccion y larvicultura en L vannamei, manejo de diferentes sistemas de cultivos de la misma especie y Sanidad Acuicola.

Pablo Gonzalez Alanis

PhD. Doctorado: Departments of soil, water and environmental science and wildlife and fisheries science (Universidad de Arizona, in Tucson, Arizona, U.S.A.). Profesor Investigador de tiempo completo Universidad Autonoma de Tamaulipas, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Lider del Cuerpo Academico de Sanidad y Produccion Acuicola.

Mario Hernandez Acosta

PhD. Doctorado: Departments of soil, water and environmental science and wildlife and fisheries science (Universidad de Arizona, in Tucson, Arizona, U.S.A.) Profesor investigador de tiempo completo en la Universidad Tecnologica del Mar de Tamaulipas Bicentenario. Responsable de la calidad del agua en el laboratorio de organismos acuaticos de la FMVZ de la Universidad Autonoma de Tamaulipas. Gerente operativo de la Empresa "Productora Acuicola Especializada SPR de RL"

Jesus Genaro Sanchez Martinez

Ph.D. Doctorado en Patobiologia Acuatica por el Atlantic Veterinary College, University of Prince Edward Island. Investigador Nacional Nivel II. LGAC Sanidad Acuicola y Acuacultura. Revisor para revistas indizadas en JCR como Aquaculture, Biologia, Aquaculture Research. Coordinador del Cuerpo Academico de Acuacultura, asi como Profesor/Investigador en la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autonoma de Tamaulipas.
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Author:Guzman-Saenz, Francisco M.; Perez-Castaneda, Roberto; Gutierrez-Salazar, Gilberto; Gonzalez-Alanis,
Publication:Ra Ximhai: revista cientifica de sociedad, cultura y desarrollo sustenable
Date:Jul 1, 2014
Words:3705
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