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Hemograma y caracteristicas morfologicas de las celulas sanguineas de tortuga golfina (Lepidochelys olivacea) de Oaxaca, Mexico.

Hemogram and Morphological Characteristics of Blood Cells in the Olive Ridley Turtle (Lepidochelys olivacea) of Oaxaca, Mexico

INTRODUCCION

La tortuga marina Lepidochelys olivacea, se encuentra catalogada como vulnerable en la lista de roja de la Union internacional para la conservacion de la naturaleza [12] y en el apendice uno de la convencion sobre el comercio internacional de especies amenazadas de fauna y flora silvestre, lo que la situa como una especie en peligro de extincion [10]. Este organismo, fue depredado por la comercializacion del caparazon y carne en las decadas de los sesenta, setenta y ochenta, principalmente por la empresa Impulsora de Oaxaca (PIOSA), que sacrificaba un promedio de 80 tortugas por hora [15], actualmente se ha determinado la comercializacion ilicita de 12 a 15 toneladas de huevo de tortuga marina, extraido de la playa de anidacion de Morro Ayuta en Oaxaca [9].

El ciclo de vida de las tortugas marinas adultas consiste en migrar, de las zonas de alimentacion a las de anidacion, para la temporada reproductiva. Las costas de Oaxaca, Mexico, son zonas de reproduccion de la tortuga golfina Lepidochelys olivacea, laud Dermochelys coriacea y en menor proporcion de prieta Chelonia agassizii. Las tortugas prieta y laud, pueden ser vistas desovando en las playas de Oaxaca de noviembre a febrero de cada ano [15]. La tortuga golfina presenta dos tipos de anidacion en Oaxaca, la primera se da durante todo el ano, en practicamente todas las Playas de Oaxaca, sale solo una tortuga golfina a desovar, la otra forma de anidacion se presenta de junio a febrero de cada ano [1], en las playas de La Escobilla y Morro Ayuta, en Oaxaca, Mexico y se denomina "arribada" o "arribazon" [15], consiste en la salida de cientos a miles de tortugas golfinas, que salen de manera continua e ininterrumpida a desovar en el transcurso de tres a cinco dias [16, 26]. Frente a la costa se pueden observar a las hembras y machos apareandose, durante la temporada reproductiva, las hembras salen del mar, buscan en la playa el espacio adecuado para hacer su nido, desovan, tapan el nido y regresan al mar. Para extraer la muestra de sangre, primero se debe obtener el permiso de las autoridades federales, posteriormente se recorre la playa, preferentemente de noche, que es cuando sale un mayor numero de hembras, se localiza a la hembra cuando va subiendo en busca de la zona con humedad adecuada para desovar, se espera a que construya el nido e inicie a desovar, durante este espacio de tiempo, la hembra mantiene una conducta de quietud, que es aprovechada para localizar el seno yugular para extraer la muestra de sangre y realizar las mediciones necesarias, se debe esperar a que termine de desovar, tape el nido e inicie su retorno al mar, para proceder a su pesaje, en este punto se coloca sobre su camino un arnes extendido y una vez que la tortuga esta sobre el, entre dos personas levantan el arnes, dejando libres las aletas, para evitar lastimarla, se coloca el arnes en el gancho de la bascula y se registra el peso, una vez concluido, se baja el arnes y se deposita en la arena para que la hembra sola continue su retorno al mar, se debe guardar en todo momento la integridad de la hembra. En las playas de anidacion, la poblacion de tortugas que salen a desovar esta constituida de hembras adultas en edad reproductiva, rara vez los machos salen a la playa [16].

En especies que se encuentran en peligro de extincion es imprescindible contar con herramientas de diagnostico que permitan precisar el estado de salud; para las tortugas marinas se emplea la revision fisica, se recorre de manera visual al animal y se reporta la integridad del carapacho, el plastron, y la presencia de parasitos o crecimientos anormales.

Para comparar los valores hematologicos de las tortugas marinas se cuenta con el sistema de informacion internacional de especies (ISIS), por sus siglas en ingles, sin embargo, debido a que se esta hablando de un reptil en una etapa fisiologica especifica, los valores hematologicos son diferentes. La sangre de las tortugas contiene los siguientes tipos celulares: eritrocitos, leucocitos (granulocitos y agranulocitos) y trombocitos. Dichos elementos son utilizados para evaluar el estado de salud, a su vez se pueden detectar patologias como: anemia, eritrocitosis, inflamacion, desordenes hematopoyeticos y alteraciones hemostaticas, entre otras [5, 6].

La evaluacion del hemograma, al igual que en el resto de los reptiles, es complicada debido a que leucocitos y eritrocitos son celulas nucleadas, esto impide el conteo con metodos automatizados de rutina, la evaluacion del frotis requiere del conocimiento detallado de los tipos celulares debido a que puede existir confusion entre tipos celulares como linfocitos y trombocitos o entre heterofilos y eosinofilos [4, 5], por tanto, el objetivo del presente estudio fue determinar los valores del hemograma, las caracteristicas celulares y el tamano celular en sangre de tortugas Lepidochelys olivacea aparentemente sanas, que anidan en la playa de Barra de la Cruz, en Oaxaca, Mexico.

MATERIALES Y METODOS

El presente trabajo se realizo en la playa de Barra de la Cruz ubicada en el municipio de Santiago Astata del estado de Oaxaca, en la region del Istmo de Tehuantepec al sureste del Estado, con las coordenadas 95[grados]40' longitud oeste, 15[grados]59' latitud norte [22]; la playa Barra de la Cruz tiene una extension de 8,5 km, es una de las playas mas importantes en el Estado para la anidacion de tortuga Laud Dermochelys coriacea, tambien anidan otras especies, como la tortuga Golfina Lepidochelys olivacea y la tortuga Prieta Chelonia agassizii. Se realizaron recorridos nocturnos en la temporada de anidacion 2008-2009, para lo cual se obtuvo el permiso: SGPA/DGVS/ 00898 expedido por la Direccion General De Vida Silvestre en Mexico.

Se eligieron 22 tortugas hembras adultas de la especie Lepidochelys olivacea de vida libre, las cuales arribaron por la noche para desovar en esta playa, se incluyeron unicamente las hembras que a la evaluacion visual no presentaban lesiones en la piel como ulceras, neoplasias y/o ectoparasitos (sanguijuelas, percebes, gusanos y cangrejos); que no tuvieran lesiones en el caparazon y tuvieran una condicion corporal aceptable [17]. Se observo a cada hembra desde su desplazamiento al subir la playa, que elaborara su nido de manera habitual en esta especie, el momento de la toma de muestra fue a mitad de la ovoposicion en la que se encuentran totalmente inmoviles. Se realizo la antisepsia correspondiente y utilizando el sistema vacutainer, que consta de un soporte o camisa, aguja calibre 21 de 1" y tubo de 3 mililitros (mL) con heparina de litio como anticoagulante, se obtuvo sangre de las tortugas usando la tecnica descrita por Dutton [6], en la vena yugular externa que se localiza en ambos lados de la linea media del cuello entre 1/3 y 1/2 de la distancia entre la parte posterior de la cabeza y el borde anterior del caparazon. El seno esta aproximadamente 2,5 cm laterales a la linea media, de 2-3 cm debajo de la superficie de la piel, una vez localizadas se inserta la aguja en la vena, la sangre fluyo como consecuencia del vacio, al obtener tres mL de sangre se retiro la aguja de la vena y se cubrio el sitio de venopuncion con algodon haciendo presion para evitar la formacion de hematomas hasta cerciorarse que no salia mas sangre. Utilizando una cinta metrica inextensible (marca Butterfly Brand), se tomaron medidas morfometricas [3], tales como: largo curvo del caparazon (LC), ancho curvo del caparazon (AC), con forcipulas de 50 y 95 cm (marca Haglof, modelo S882 00, Suecia) se midio el largo recto del caparazon (LR), ancho recto del caparazon (AR) y Largo Total (LT), al terminar la ovoposicion y una vez que la hembra concluyo de tapar el nido e iniciara su retorno al mar, se procedio a pesar (P) a la tortuga con un arnes de lona y una balanza de reloj (Torrey, SM, Mexico).

Las muestras de sangre fueron transportadas en una hielera de unicel a 4[grados]C al laboratorio del campamento (a 15 minutos (min) de la playa) donde de inmediato fueron procesadas.

A las muestras de sangre se les realizaron las siguientes determinaciones:

Hematocrito

Fue medido utilizando la tecnica de microhematocrito, el tubo con la muestra se coloco en un agitador mecanico para mantenerla homogeneizada (marca Clay Adams Brand, modelo nutator, Alemania), se procedio a llenar el tubo capilar 3/4 partes, introduciendo uno de los extremos en el tubo que contenia la sangre e inclinando hacia abajo el otro extremo del tubo capilar, se cerro enseguida el extremo vacio del tubo, sosteniendolo horizontalmente y colocando en un extremo una llama fina de fuego, el vidrio se fundio y cerro este extremo. Se centrifugo (marca LW Scientific, modelo DSC-024, China, 14.490 x g) el tubo capilar durante cinco min a 11.000 rpm. Se leyo el volumen del paquete celular con un lector especial para microhematocrito.

Proteinas totales

Fueron determinadas utilizando el metodo del refractometro de Goldberg [5] (modelo REF312, ATC, China). El diseno de este instrumento se basa en el principio de la refraccion. Para realizar esta prueba se coloco una gota de plasma sobre la cara del prisma del refractometro, a traves de la ranura de acceso en la cubierta, o levantando la misma. La cubierta se mantuvo cerrada mientras se observo por el refractometro y se oriento hacia una fuente de luz. El valor de las proteinas se leyo en gramos por litro.

Conteo de leucocitos y eritrocitos totales

Una vez que la sangre fue sometida a un homogeinizador (APSA, SM, Mexico), se procedio a llenar una pipeta para dilucion de eritrocitos de Thoma (marca superior con precision [+ o -] 3%, sin modelo, Alemania) (1:200) hasta la marca 0,5 de sangre y posteriormente el liquido diluyente de Natt y Herrick [19] hasta la marca 101, se dejo reposar durante 20 min. La pipeta se agito de 2 a 3 min en el agitador mecanico (marca Clay Adams Brand, modelo Nutator, Alemania). Se dejaron caer las cuatro primeras gotas para eliminar el liquido de la porcion capilar de la pipeta que no se mezclo con la sangre, se lleno de manera habitual el hemocitometro (marca Brand, modelo CE, Alemania) y se dejo reposar durante 20 min para proceder al conteo. Con el objetivo 40 X (microscopio marca Carl Zeiss modelo Primostar, Alemania), se contaron todos los eritrocitos en cinco de los 25 cuadros pequenos del area central.

Para el calculo de eritrocitos se sumaron las celulas de los cinco cuadros pequenos y se dividieron entre 100, el resultado fue el numero de eritrocitos x [10.sup.12]/L.

Para el conteo de leucocitos se utilizo el objetivo de 40 X, contando en los nueve cuadrantes de toda la camara, el resultado se multiplico por 220 y se dividio entre 1000, el resultado final fue el numero de leucocitos x [10.sup.9]/L.

Conteo diferencial de leucocitos

Mediante la observacion directa del frotis que fue tenido empleando la tincion de Wright, se evaluo primero con el objetivo 10x, para ver la distribucion de las celulas y seleccionar la porcion del frotis que estuviese cerca del extremo mas delgado, donde los eritrocitos no se sobreponen. Se puso una gota de aceite de inmersion sobre la preparacion y se cambio al objetivo de inmersion (100x) para realizar el examen. La cuenta diferencial se realizo contando y clasificando 100 leucocitos, se expreso en porcentaje, este es el numero relativo de los diferentes tipos de leucocitos que se encontraron en la sangre. El valor absoluto de cada tipo de leucocitos se obtuvo multiplicando el porcentaje por la cuenta leucocitaria hecha en el hemocitometro.

Se realizo un recuento de estas celulas en diferentes campos del frotis bajo el objetivo de inmersion, y se contaron los trombocitos encontrados por cada 100 leucocitos, tecnica descrita por Sypek y Borysenko, citados por Campbell and Ellis [5].

El volumen globular medio (VGM), se calculo utilizando la siguiente formula:

VGM(millones/[mm.sup.3]) = Hematocrito x 1000/ Recuento total de globulos rojos

Para la toma de microfotografias se utilizo una camara para microscopio (marca Leica, modelo DC, Alemania) y para la medicion las celulas, se utilizo el programa para medir celulas (marca Leica, modelo 1M 1000, Alemania) [14]. El numero de celulas a medir se determino con el metodo de Fuentes-Mascorro [8], este se basa en medir un numero de celulas igual al porcentaje que ese tipo celular representa en el hemograma. Los frotis que se emplearon para estas mediciones, fueron los mismos que se utilizaron para el conteo diferencial. En celulas aparentemente redondas se tomaron las medidas en los ejes x-y de un plano cartesiano, asignandose como largo, la medida mayor y como ancho la medida menor, que son llamados largo maximo y largo minimo [7], el cociente de la division entre el largo (largo maximo) y el ancho (largo minimo) se le denomino indice morfologico IM: un indice mas cercano a uno indica una forma redonda y mas alejado de uno indica forma eliptica. Para monocitos y basofilos, cuyos nucleos son lobulados o no evidentes, se omitio esta medida.

Los resultados fueron sometidos a estadistica descriptiva, empleandose la media como medida de tendencia central, para estadistica de dispersion se utilizo la desviacion estandar, como estadistica de posicion los percentiles y estadisticos ordenados el minimo y maximo, empleandose el programa Excel 97-2003, para Windows [21].

RESULTADOS Y DISCUSION

Los resultados de las medidas morfometricas se presentan en la TABLA I. Las 22 tortugas empleadas en el estudio eran adultas y en etapa reproductiva, de acuerdo con los parametros dados por Marquez [16], para hembras adultas.

Los resultados del hemograma se muestran en la TABLA II, ademas en la sangre de tortugas Golfinas se detectaron eritrocitos nucleados, cinco tipos diferentes de leucocitos (heterofilos, basofilos, eosinofilos, linfocitos y monocitos) y trombocitos nucleados.

Eritrocitos

Los eritrocitos son celulas ovales con nucleo central de forma oval, su cromatina es densa de color purpura (violeta, morado intenso) con bordes irregulares, el citoplasma presenta un color ortocromatico uniforme, con ligera tonalidad azul debida al efecto de la heparina (FIG. 1). Las medidas de la celula y el nucleo se presentan en la TABLA III, el indice morfologico para la celula 1,36 [micron]m y el nucleo 1,50 [micron]m.

Los eritrocitos inmaduros son celulas con formas de redonda a oval, su nucleo es heterocromatico grande y redondo, el citoplasma es ortocromatico, estos pueden ser mas pequenos que los eritrocitos maduros (FIG. 2).

Leucocitos

Los heterofilos (FIG. 3) son de forma redonda a oval y en algunos casos amorfos, el citoplasma contiene granulos eosinofilicos (color naranja brillante) fusiformes. El citoplasma es incoloro, su nucleo es de redondo a oval y su posicion frecuentemente es excentrica en las celulas con cromatina moderada mente densa. Las medidas celulares y nucleares estan indicadas en la TABLA III, los indices morfologicos fueron 1,19 [micron]m y 2 [micron]m, indicando una celula redonda y un nucleo ovalado. La forma celular encontrada en este estudio es la misma reportada por Work y col. [26], para Chelonia mydas [20], para Caretta caretta y por Fei-Yan y col. [7], para Lepidochelys olivacea juvenil.

[FIGURA 1 OMITIR]

Los eosinofilos (FIG. 4) son celulas redondas a ovales, contienen pequenos granulos citoplasmaticos eosinofilicos de forma esferica. El nucleo es de forma de redonda a oval, este se localiza en posicion central o excentrico y con bordes irregulares. Los indices morfologicos fueron 1,40 [micron]m y 1,50 [micron]m, para la celula y el nucleo, respectivamente, las medidas se observan en la TABLA III. Comparado con otras especies de tortuga marina, este es el unico tipo celular que tiene notables diferencias, en el tamano de los granulos intracitoplasmaticos [11].

[FIGURA 2 OMITIR]

[FIGURA 3 OMITIR]

[FIGURA 4 OMITIR]

[FIGURA 5 OMITIR]

Los basofilos (FIG. 5) son celulas pequenas que, en su citoplasma contienen abundantes granulos de color intensamente basofilo, la membrana citoplasmatica presenta muy baja afinidad a la tincion. El nucleo puede o no estar lobulado. Las medidas celulares se encuentran en la TABLA III y el indices morfologico fue 1,17 [micron]m, no pudiendose determinar el nuclear debido a que en la mayoria de estas celulas, los granulos citoplasmaticos no permiten la observacion del mismo.

Los Linfocitos (FIG. 6) presentan caracteristicas morfologicas similares a las descritas en otras especies de reptiles; en las aves y mamiferos, varian en tamano de (pequenos a grandes), son celulas redondas con nucleo en posicion central. Los linfocitos tipicos tienen nucleo grande en proporcion al citoplasma. El linfocito pequeno tiene escaso citoplasma ligeramente basofilico (azul palido). Los linfocitos grandes tienen mas volumen citoplasmatico en comparacion con los pequenos y el nucleo es mas palido. El citoplasma parece ser homogeneo, no tiene vacuolas ni granulos. El indice morfologico fue de 1,5 [micron]m y 1,33 [micron]m, las medidas se encuentran en la TA BLAIII.

[FIGURA 6 OMITIR]

Los monocitos (FIG. 7) varian en forma, esta va de redonda a ameboidea, el nucleo tambien tiene forma variable y puede ser redondo, oval o lobulado; su cromatina es menos condensada y es mas palida, si se le compara con la de los linfocitos. El citoplasma es abundante y se tine caracteristicamente de azul-gris, puede presentar algunas vacuolas, que corresponden a restos eosinofilicos o granulos azurofilos. El indice morfologico fue de 1,11 [micron]m, el indice nuclear no se determino debido a que los nucleos son de forma irregular.

Trombocitos

Los trombocitos (FIG. 8) son celulas de forma eliptica. El nucleo tiene posicion central con una cromatina densa que se tine de color purpura. El citoplasma es minimo en relacion al nucleo, con escasa afinidad a la tincion y puede contener algunas vacuolas citoplasmaticas poco evidentes. El indice morfologico fue de 1,43 [micron]m y el nuclear de 1,29 [micron]m, en la TABLA III, se encuentra las medidas.

Existe dificultad para establecer intervalos de referencia para los valores sanguineos de las tortugas marinas, debido a un numero de factores intrinsecos y extrinsecos. Los factores intrinsecos incluyen la especie, genero, edad y estado fisiologico; y entre los factores extrinsecos estan la estacionalidad, temperatura, habitad, dieta, enfermedades, estres asociada al cautiverio y el sitio de venipuncion [4].

[FIGURA 7 OMITIR]

[FIGURA 8 OMITIR]

Comparando los datos obtenidos en esta investigacion con los reportados en la literatura, para poder inferir si estas diferencias esperadas (en virtud de que el trabajo se desarrolla con un reptil), efectivamente existen.

En el caso de los valores eritrociticos: hematocrito, numero de eritrocitos y volumen globular medio (VGM) se observo que el valor del hematocrito de tortuga Golfina Lepidochelys olivacea (891,790 [+ o -] 291,93) fue semejante a los reportados para tortuga verde Chelonia mydas (730,17 [+ o -] 186,5) [26] a los valores para tortuga Caguama Caretta caretta (564,102 [+ o -] 150,093) [23] en cautiverio. Los valores de VGM son similares, considerando las desviaciones estandar.

El Volumen Globular Medio (VGM) varia segun el orden al que pertenezca cada organismo dentro de la clase Reptilia, los eritrocitos con VGM mayor son los del orden quelonios seguidos del orden crocodylia y los mas pequenos se han encontrado en el suborden lacertilia [25]. Las tortugas marinas tienen un numero de eritrocitos menor que en el resto de los reptiles.

La forma del eritrocito varia poco comparado con las demas especies de reptiles, la variante fue el indice morfologico (largo/ ancho) de los eritrocitos al ser medidos de manera individual, dato que demuestra que tan ovales son las celulas. Los indices morfologicos eritrociticos de las tortugas Golfinas (celular y nuclear) fueron 1,36 [micron]m y 1,50 [micron]m, respectivamente, mientras que para Emys orbiculares, fue de 1,73 [micron]m y 1,32 [micron]m [25] y 19,5 [+ o -] 1,2 [micron]m x 9,2 [+ o -] 1,0 [micron]m, para Agrionemys horsfieldi [13], confirmando la forma clasica de un eritrocito reptiliano.

En algunos casos, los eritrocitos presentaron inclusiones citoplasmaticas, que segun Thrall, [24] son frecuentes en reptiles, estas inclusiones en su mayoria representan artefactos de preparacion o como menciona Alleman y col. [2], que en imagenes de microscopia electronica sugieren que son a causa de la degeneracion de organelos [26].

En el presente estudio, los valores de leucocitos totales en tortuga Golfina Lepidochelys olivacea (4,510 [+ o -] 3,03 x [10.sup.9] /L), fueron menores a los reportados por Work y col. [26], (13,8 x [10.sup.9]/L) en tortuga verde Chelonia mydas, juveniles, pero similares a las reportadas por Montilla y col. [18] (6,16 [+ o -] 2,6 x [10.sup.9]/L) en adultos.

Los heterofilos, fueron el leucocito que se encontro en mayor cantidad en la sangre de Lepidochelys olivacea (2,870 [+ o -]1,88 x [10.sup.9]/L), estos comparados con valores de tortuga verde Chelonia mydas (1,4 [+ o -] 0,8 x [10.sup.9]/L) [26] y para Cheloniamydas adultas (5,102 [+ o -] 2,227 x [10.sup.9]/L) [18], este ultimo dato puede estar elevado por el metodo de captura.

Los heterofilos en este estudio midieron 9 a 26 [micron]m x 5 a 19 [micron]m, y en el estudio de Fei-Yang y col. [7], fueron de 10 a 19 [micron]m x 11,40 a 19,50 [micron]m, se debe considerar que para este tipo celular el tamano no es indicativo de actividad alguna.

Los eosinofilos de las tortugas marinas muestran variabilidad en el tamano de los granulos citoplasmaticos, siendo mas pequenos en tortugas golfinas, [22] que en Chelonia agassizii y Dermochelys coriacea [11].

CONCLUSION

Los eritrocitos de las tortugas marinas son los mas grandes, en relacion con la mayoria de las familias de reptiles, teniendo un VGM mayor, con un numero menor de eritrocitos. La morfologia de las celulas de la sangre de las tortugas marinas es similar, presentando variaciones en el tamano de los granulos de los eosinofilos. El indice morfologico permite definir la forma de la celula, con una expresion numerica, evitando hacerlo de manera subjetiva. El hemograma y las caracteristicas celulares de este trabajo, podran ser tomados como referencia para las tortugas golfinas que desovan de esta zona.

AGRADECIMIENTO

A la Universidad Autonoma Metropolitana Unidad Iztapalapa, por el prestamo del equipo y programa para medir las celulas. Este proyecto recibio financiamiento del Programa de Desarrollo Regional Sustentable, del Gobierno Federal y de la Rectoria de la Universidad Autonoma Benito Juarez de Oaxaca.

Recibido: 15/05/2011. Aceptado: 04/05/2012.

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Luz Maria Ramirez Acevedo, Selene Soledad Martinez Blas y Gisela Fuentes-Mascorro *

Laboratorio de Investigacion en Reproduccion Animal (LIRA), Escuela de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Autonoma "Benito Juarez" de Oaxaca. * lirauabjo@gmail.com
TABLA I

MEDIDAS MORFOMETRICAS DE LASTORTUGAS GOLFINA Lepidochelysolivacea
INCLUIDAS EN EL ESTUDIO

Variables                                    Hembras (n=22)

                                  Media [+ or -] DE    Minimo   Maximo

Largo curvo del caparazon (cm)   66,14 [+ o -] 1,66     64       69
Ancho curvo del caparazon (cm)   71,77 [+ o -] 1,54     70       74
Largo recto del caparazon (cm)   60,16 [+ o -] 3,22    55,5      65
Ancho recto del caparazon (cm)   54,01 [+ o -] 2,30     50      57,4
Peso del animal (kg)                33 [+ o -] 6,54     28       46

TABLA II

VARIABLES HEMATOLOGICAS DE TORTUGA Lepidochelysolivacea QUE ANIDARON
EN LA PLAYA BARRA DE LA CRUZ EN OAXACA, MEXICO

Variables                                Hembras (n=22)

                                  Media [+ o -] DE      Minimo

Hematocrito                      0,305 [+ o -] 0,04      0,24
Proteinas totales               47,136 [+ o -] 5,85       38
Eritrocitos x [10.sup.12]/L      0,375 [+ o -] 0,12      0,14
Leucocitos x [10.sup.9]/L        4,510 [+ o -] 3,03      0,66
Heterofilos x [10.sup.9]/L       2,870 [+ o -] 1,88      0,49
Eosinofilos x [10.sup.9]/L       0,886 [+ o -] 0,68      0,09
Basofilos x [10.sup.9]/L         0,076 [+ o -] 0,15       0
Linfocitos x [10.sup.9]/L        0,638 [+ o -] 0,59      0,07
Monocitos x [10.sup.9]/L         0,067 [+ o -] 0,11      0,00
Trombocitos (por cada 100
  leucocitos)                  127,273 [+ o -] 47,39      63
VGM x [10.sup.6] /[mm.sup.3]   891,790 [+ o -] 291,93   364,86

Variables                              Hembras (n=22)

                                         Percentil   Percentil
                               Maximo      2,5%        97,5%

Hematocrito                     0,45       0,25        0,40
Proteinas totales                64        39,05       58,75
Eritrocitos x [10.sup.12]/L     0,74       0,18        0,64
Leucocitos x [10.sup.9]/L       13,86      1,01        11,67
Heterofilos x [10.sup.9]/L       7,9       0,69        7,41
Eosinofilos x [10.sup.9]/L      2,63       0,12        2,24
Basofilos x [10.sup.9]/L        0,63       0,00        0,49
Linfocitos x [10.sup.9]/L       2,91       0,09        1,95
Monocitos x [10.sup.9]/L        0,45       0,00        0,36
Trombocitos (por cada 100
  leucocitos)                    228       63,53      208,05
VGM x [10.sup.6] /[mm.sup.3]   1714,29    505,45      1514,29

TABLA III

MEDIDAS OBTENIDAS DE LAS CELULAS SANGUINEAS DE LAS TORTUGAS GOLFINAS
Lepidochelys olivacea EN LA PLAYA BARRA DE LA CRUZ

                        Eritrocitos          Heterofilo
                          n= 944               n= 631

Celula

Largo ([micron]m)
Media [+ o -] DE   19,43 [+ o -] 1,57   17 [+ o -] 2,34
Min-Max.                   12-25                9-26

Ancho ([micron]m)
Media [+ o -] DE   18,85 [+ o -] 1,24   14 [+ o -] 2,09
Min.-Max.                  6-18                 5-19

Nucleo

Largo ([micron]m)
Media [+ o -] DE    5,79 [+ o -] 0,85    8 [+ o -] 1,80
Min.-Max.                   4-9                 4-18

Ancho ([micron]m)
Media [+ o -] DE    4,32 [+ o -] 0,72    5 [+ o -] 1,29
Min.-Max.                   2-7                 3-18

                       Eosinofilo          Basofilo
                         n=196               n=18

Celula

Largo ([micron]m)
Media [+ o -] DE   18 [+ o -] 3,40   13 [+ o -] 3,43
Min-Max.                 8 -27               8-20

Ancho ([micron]m)
Media [+ o -] DE   14 [+ o -] 2,54   11 [+ o -] 2,59
Min.-Max.                 6-19               7-18

Nucleo

Largo ([micron]m)
Media [+ o -] DE    8 [+ o -] 1,64           --
Min.-Max.                 5-16               --

Ancho ([micron]m)
Media [+ o -] DE    5 [+ o -] 1,18           --
Min.-Max.                 3-10               --

                        Monocito          Linfocito
                          n=15              n=141

Celula

Largo ([micron]m)
Media [+ o -] DE   15 [+ o -] 5,53   10 [+ o -] 2,51
Min-Max.                  7-26               7-19

Ancho ([micron]m)
Media [+ o -] DE   12 [+ o -] 3,14   7 [+ o -] 1,95
Min.-Max.                 8-18               5-14

Nucleo

Largo ([micron]m)
Media [+ o -] DE          --          8 [+ o -] 1,69
Min.-Max.                 --                6-15

Ancho ([micron]m)
Media [+ o -] DE          --          6 [+ o -] 1,52
Min.-Max.                 --                4-11

                      Trombocitos
                          N=45

Celula

Largo ([micron]m)
Media [+ o -] DE   11 [+ o -] 3,14
Min-Max.                  6-19

Ancho ([micron]m)
Media [+ o -] DE    9 [+ o -] 2,04
Min.-Max.                 5-14

Nucleo

Largo ([micron]m)
Media [+ o -] DE    8 [+ o -] 1,44
Min.-Max.                 5-11

Ancho ([micron]m)
Media [+ o -] DE    6 [+ o -] 1,32
Min.-Max.                 3-10
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Author:Ramirez Acevedo, Luz Maria; Martinez Blas, Selene Soledad; Fuentes-Mascorro, Gisela
Publication:Revista Cientifica de la Facultad de Ciencias Veterinarias
Date:Sep 1, 2012
Words:5318
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