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Evaluacion de inductores de resistencia para el manejo de nematodos fitoparasitos en plantulas de platano.

Introduccion

En Colombia hay alrededor de 368.392 ha en platano, con una produccion de 2.970.435 t [ano.sup.-1] (AGRONET, 2010). Este cultivo genera unos 286.000 empleos directos ano-1, lo que equivale a 57.000 familias que viven de el (Martinez et al., 2006).

Entre las plagas que atacan el platano, se encuentran los nematodos fitoparasitos, distribuidos en diferentes regiones del mundo ocasionando perdidas en el rendimiento entre 30 y 50% (Araya, 2003). Debido a que poseen un estilete, ingresan a las raices, liberando toxinas que causan deformidad y destruccion de los tejidos, lo que afecta la absorcion de agua y nutrimentos y su posterior translocacion hacia las partes aereas de las plantas; en infestaciones severas, la ruptura radical, ocasiona el volcamiento de las plantas antes del desarrollo completo del racimo.

Se han implementado metodos de manejo cultural, quimico y biologico, sin embargo el problema aun continua, por lo que se requiere de nuevas estrategias, que permitan aumentar el grupo de tacticas usadas para este fin. La induccion de resistencia puede representar un gran potencial porque consiste en estimular la planta a producir sustancias naturales de defensa contra patogenos como peroxidadas y proteinas PR (relacionadas con la patogenicidad). Este tipo de mecanismo no ocasiona contaminacion del medio ambiente (Ryals et al., 1994; Kessmann et al., 1994), hay menor probabilidad de un desarrollo rapido de resistencia, posee amplio espectro de accion y ofrece proteccion prolongada (Kessmann et al., 1994; Kuc, 2001; Riveros, 2001; Andreu et al., 2006). Existen diversos compuestos que estimulan esta respuesta en la planta, como el Fosfito de potasio, Fosetil-Al, Acibenzolar-s-metil, ASM, Benzothiadiazole, BTH, Acido aminobutirico, BABA, Acido 2,6-dicloroisonicotinico, INA, Acido salicilico, etc. (Kessmann et al., 1994; Schneider et al., 1996; Cohen, 2001; Kuc, 2001) y compuestos organicos como lixiviados de raquis de platano (Alvarez et al., 2001; Escobar-Velez & Castano-Zapata, 2005). Los beneficios de su aplicacion han sido reportados previamente.

El Fosfito de potasio causo efecto inhibitorio del desarrollo de Phytophthora cinnamomi en raices de eucaliptus (Eucalyptus marginata) y redujo la incidencia de este mismo hongo entre un 72 a 100% en plantas de castano comun (Castanea sativa) despues de dos aplicaciones; asi mismo ocasiono 99% de control de Phytophthora cactorum, en plantas de fresa (Fragaria spp.) con respecto a las no tratadas (Jackson et al., 2000; Rebollar et al., 2005; Gentile et al., 2009). Fosetil-Al indujo resistencia disminuyendo la severidad de la Pudricion de la corona (P cactorum) y Pudricion de las raices (Phytophthora. fragariae) en plantas de fresa (Eikemo et al., 2003); tambien hubo mayor acumulacion e incremento de proteinas [beta]-l,3-glucanasas, proteasas, fitoalexinas y compuestos fenolicos en tuberculos de papa (Solanum tuberosum), posterior a su aplicacion para el manejo de Phytophthora infestans (Andreu et al., 2006). Acibenzolar-s-metil, ASM, redujo significativamente la severidad de la Rona de la pera (Venturia nashicola), con una eficiencia en el control del 42% (Faize et al., 2004) y en platano Dominico-Harton (Musa AAB) tuvo una eficiencia del 80% en la reduccion de la severidad de las sigatokas negra (Mycosphaerella fijiensis) y amarilla (M. musicola) (Marquez & Castano-Zapata, 2007). El Acido DL-3-aminobutirico, BABA, aplicado sobre el follaje de plantas de la vid (Vitis vinifera), proporciono un control efectivo mayor al 90% de Plasmopara viticola (Reuveni et al., 2001) y lixiviados de raquis de platano al 0,5%, disminuyeron la severidad de las sigatokas negra y amarilla en platano Dominico-Harton en un 17% con respecto al testigo (Escobar-Velez & Castano-Zapata, 2005).

Teniendo en cuenta lo anterior, en el presente trabajo se evaluo el efecto de cinco inductores de resistencia: Fosfito de potasio, Fosetil-Al, Acibenzolar-s-metil, ASM, Acido DL-3-aminobutirico, BABA, y lixiviados de raquis de platano, para el manejo de nematodos itoparasitos en plantulas platano Dominico-Hartony el hibrido FHIA-21, bajo condiciones de almacigo.

Materiales y metodos

El experimento se realizo en la granja Montelindo de la Universidad de Caldas, ubicada en el municipio de Palestina (Caldas), con altitud de 1.010 msnm, temperatura media anual de 22,8[grados]C y precipitacion anual de 2.200 mm, y en el laboratorio de Fitopatologia de la Universidad de Caldas.

Se utilizaron cormos de platano Dominico-Harton (361-722 g) y del hibrido FHIA-21 (142-316 g), procedentes de plantaciones en la misma granja y a los cuales se les determino la poblacion inicial de nematodos itoparasitos. Los inductores de resistencia fueron formulaciones comerciales de Fosito de potasio, Fosetil-Al, Acibenzolar-s-metil, ASM, y Acido DL-3-aminobutirico, BABA. Tambien se utilizaron lixiviados de raquis de platano procedentes de la granja Montelindo.

Los tratamientos consistieron en la aplicacion de los inductores de resistencia sobre cormos de Dominico-Harton y el hibrido FHIA-21 previamente tratados en inmersion con 10 mL [L.sup.-1] de Carbofuran, durante 60 min.; tambien se tuvo un testigo relativo y absoluto para cada material de platano. Cada material de platano se considero un experimento independiente y su establecimiento en campo se realizo con una semana de diferencia iniciando con Dominico-Harton.

La unidad experimental, consistio en ocho cormos de platano ya fuese de Dominico- Harton o FHIA-21, sembrados en suelo previamente cernido y homogenizado para proporcionar mayor soltura, contenido en bolsas plasticas negras perforadas de 5 kg. En cada bolsa se aplicaron 500 mL de una solucion de agua mas los inductores de resistencia segun el tratamiento en una concentracion de 1 mL [L.sup.-1] (Fosfito de potasio), 10 g [L.sup.-1] (Fosetil-Al), 0,01 mL [L.sup.-1] (Aciben zolar-s-metil), 100 [micron]g [mL.sup.-1] (Acido DL-3-aminobutirico); y lixiviados de raquis de platano evaporados al 50%. En los testigos relativo y absoluto, se aplicaron 500 mL de agua sobre cormos tratados y sin tratar con Carbofuran, respectivamente. Las aplicaciones de los tratamientos se realizaron en la siembra, 40, 60 y 90 dias despues de la siembra, DDS, para obtener proteccion prolongada contra la infestacion de los nematodos fitoparasitos a traves del tiempo. El diseno experimental fue de bloques completos al azar con siete tratamientos por cada material de platano evaluado, cuatro unidades experimentales por cada tratamiento y ocho plantas por cada unidad experimental para un total de 32 plantas por cada tratamiento.

Transcurridos 15 dias del establecimiento del experimento, se puso una cubierta de polisombra, para proporcionar un ambiente mas favorable para el desarrollo de las plantulas. Tambien se separaron las bolsas del suelo con un plastico grueso (Agroclear No. 8), para evitar el contacto de las raices con este.

Variables de respuesta:

Altura de plantulas (cm): Se tomaron en cada evaluacion muestras destructivas correspondientes a dos plantulas de cada unidad experimental por tratamiento, para un total de ocho por plantulas por tratamiento en cada material de platano, y la medicion se realizo con un flexometro.

Longitud de raices (cm): Se realizo midiendo con un flexometro las raices de las ocho plantulas muestreadas por tratamiento, en cada momento de evaluacion.

Materia seca de raices (%): Se realizo seleccionando la mitad de las ocho plantulas muestreadas por tratamiento en cada momento de evaluacion. Las raices de dichas plantulas se cortaron y se registro su peso fresco. Luego se depositaron en bolsas de papel y se llevaron al laboratorio de Fitopatologia. Estas se pusieron en una estufa de control de temperatura (marca DIES) a 70[grados]C durante 48 h y despues se registro el peso seco de las raices.

El porcentaje de materia seca de raices se determino con la formula:

MS (%) = 1 - ((PF - PS) / PF) X 100

Donde: MS: Materia seca; PF: Peso fresco y PS: Peso seco.

Numero de nematodos fitoparasitos en 100 g de raices y suelo: Con la mitad restante de las plantulas muestreadas por tratamiento (cuatro), se realizo la evaluacion de la poblacion de nematodos en 100g de raices y suelo en cada momento de evaluacion. Las raices de las plantulas muestreadas se cortaron con porciones del cormo y el suelo se tomo del area radical de dichas plantulas; ambas muestras se depositaron independientemente en bolsas plasticas debidamente marcadas. Estas se llevaron al laboratorio de Fitopatologia de la Universidad de Caldas y se realizo el procedimiento de extraccion de nematodos por el metodo de licuado, centrifugacion y flotacion en azucar (Flegg & Hooper, 1970). El recuento de los nematodos se realizo en un microscopio estereoscopico (marca LEICA ZOOM 2000), utilizando una camara provista de cuadrantes de 1 [cm.sup.2] y posteriormente se identificaron los generos presentes, con ayuda del microcopio compuesto de luz (marca LW Scientific; modelo Revelation III), a traves del objetivo de 40X.

Analisis estadistico.

Se uso el programa estadistico SAS[R] (Statistical Analysis System, SAS Institute) para realizar el analisis de varianza y la prueba de comparacion Tukey al 5%, para las variables de respuesta.

Brotacion (%): Se observo semanalmente durante 40 dias, la emergencia de las plantulas por tratamiento.

Resultados y discusion

Brotacion (%): Para el analisis estadistico, se tuvo en cuenta la brotacion acumulada a traves del tiempo, expresada en porcentaje. El analisis de varianza indico diferencias significativas en la primera, segunda y tercera semana despues de la siembra, tanto en Dominico-Harton (P = 0,0089, P = 0,0010 y P = 0,0005, respectivamente), como en FHIA-21 (P = 0,0025, P = 0,0025 y P < 0,0001, respectivamente).

En ambos materiales de platano, el total de cormos sembrados emergio y esto ocurrio entre la primera y la cuarta semana despues del establecimiento. El comportamiento de la brotacion con la aplicacion de los inductores de resistencia revelo que las plantas tratadas con Fosfito de potasio, Fosetil-Al, ASM y BABA, emergieron en su totalidad en la tercera semana, mientras que con la aplicacion de lixiviados de raquis de platano ocurrio solo hasta la cuarta semana despues de la siembra (Figura 1).

El tiempo de brotacion en general indico un comportamiento normal para esta variable, dado que estuvo dentro de los rangos normales para la ocurrencia de este fenomeno, no obstante, es importante resaltar que el tratamiento que mas rapido alcanzo el 100% de brotacion en la segunda semana despues de la siembra, fue el testigo relativo. En este testigo los cormos fueron expuestos a un tratamiento presiembra con Carbofuran, sugiriendo que este estimulo una brotacion rapida de las plantulas. Este comportamiento tambien fue reportado por Marquez & Castano-Zapata (2008), quienes observaron que cormos de Dominico-Harton expuestos a 2 mL [L.sup.-1] de Carbofuran durante 60 min, emergieron 7 dias mas rapido que los del testigo. Al parecer, la estimulacion del crecimiento generada por Carbofuran podria estar relacionada ademas de su actividad nematicida o insecticida, a que produce una serie de metabolitos que inhiben la oxidacion del acido indolacetico (Lee, 1976), considerada la auxina natural mas importante que influye en el crecimiento, division celular y formacion de raices en las plantas (Castillo et al., 2005). Es de anotar que aunque los cormos de los tratamientos con inductores tambien llevaron tratamiento presiembra con Carbofuran, no hubo una superioridad en dicho efecto combinado sobre la brotacion.

[FIGURA 1 OMITIR]

Altura de plantulas: En Dominico-Harton las principales diferencias entre tratamientos con inductores de resistencia y los testigos se registraron en la ultima evaluacion (120 DDS, P < 0,0001), mientras que para FHIA-21 estas fueron en la tercera evaluacion (90 DDS, P < 0,0001).

Durante las tres primeras evaluaciones, la altura de las plantulas de Dominico-Harton no fue afectada significativamente por la aplicacion de Fosito de potasio, Fosetil-Al, ASM y BABA. Asi mismo, aunque estos mismos cuatro inductores, presentaron mayor altura que la de ambos testigos en la ultima evaluacion 120 DDS, el efecto solo fue estadisticamente significativo para aquellas tratadas con Fosfito de potasio (41,37 cm). En FHIA-21, la altura tampoco se vio afectada significativamente por la aplicacion de Fosito de potasio, Fosetil-Al, ASM y BABA, con respecto a ambos testigos y este comportamiento fue consistente a traves del tiempo (Tabla 1).

Tanto en Dominico-Harton como en FHIA-21, las mayores diferencias entre los tratamientos con inductores y los testigos, se apreciaron con la aplicacion de lixiviados de raquis de platano el cual registro el menor valor de altura de plantulas a traves del tiempo (Tabla 1). Se observo ademas, que las plantulas tratadas con este inductor de resistencia, presentaron sintomas de fitotoxicidad manifestada en las hojas con apariencia de rigidez y deformidad y aunque para tratar de contrarrestar este efecto se disminuyo la concentracion de lixiviados a la mitad en la tercera evaluacion (60 DDS), la recuperacion de las plantulas no fue sustancial, siendo este el inductor que mas adversamente afecto el crecimiento.

El comportamiento destacado de Fosito de potasio en Dominico-Harton, registrado a los 120 DDS en este estudio para altura de las plantulas, tambien fue reportado por Mogollon-Ortiz (2011), quien al evaluar el efecto de diferentes inductores de resistencia, para el manejo de las sigatokas amarilla y negra, indico superioridad en la altura de plantulas de Dominico-Harton, al cabo de tres aplicaciones de Fosito de potasio, con un valor promedio de 36,6 cm registrado a los 112 DDS, con respecto a 29 cm registrado en las plantulas del testigo, sin dicha aplicacion. Al respecto, se ha reportado que el efecto que tiene el Fosito de potasio en el crecimiento de las plantas se debe principalmente a los cambios bioquimicos y estructurales que restringen el desarrollo del patogeno (Lobato et al., 2011; Olivieri et al., 2012), mas que a su accion como fertilizante (Thao & Yamakawa, 2009).

Por su parte otros estudios en platano reportaron que la aplicacion de Fosito de potasio y ASM, no afecto la altura de las plantas cuando se aplicaron cada 6 semanas durante el ciclo del cultivo para el manejo de las sigatokas negra y amarilla dado que no difirieron con las plantas del testigo (Ramirez-Loaiza, 2010), comportamiento que tambien fue observado en este estudio para las plantulas de FHIA-21.

[FIGURA 2 OMITIR]

En lo referente al proceso de induccion de resistencia, ha sido ampliamente documentado que existe una serie de costos energeticos para la planta, como consecuencia de la redistribucion masiva de su energia, hacia la produccion de compuestos para la defensa contra el patogeno (Herms & Mattson, 1992; Cipollini et al, 2003; Iriti & Faoro, 2006; Berger et al., 2007; Bolton, 2009). En este estudio estos costos no tuvieron un efecto adverso en el crecimiento de las plantas de Dominico-Harton y FHIA-21, con la aplicacion de Fosito de potasio, Fosetil-Al, ASM o BABA. Al respecto, Siemens et al. (2003) y Dietrich et al. (2005), afirman que la naturaleza de estos costos aun se encuentra en discusion y dependen del ambiente en que la planta se encuentre y en muchos casos se relaciona con condiciones de estres.

Longitud de raices: Las diferencias estadisticas en Dominico-Harton para esta variable se presentaron en todos los tiempos de evaluacion (P < 0,0001, P < 0,0001, P < 0,0001 y P = 0,0004), mientras que en FHIA-21 estas ocurrieron solo en las tres primeras evaluaciones (P = 0,0006, P = 0,0174 y P = 0,0006).

La longitud de raices en plantulas de Dominico Harton, y FHIA-21, no fue afectada significativamente por la aplicacion de Fosfito de potasio, Fosetil-Al, ASM y BABA, mas si lo fue con la aplicacion de lixiviados de raquis de platano (Tabla 1).

Aunque no hubo un efecto estadisticamente superior en la longitud de raices con la aplicacion de los inductores de resistencia con respecto a los testigos, cabe resaltar que al cabo de 120 DDS, las raices de las plantulas de los dos materiales de platano evaluados tratadas con Fosito de potasio, Fosetil-Al, ASM y BABA, fueron mas largas que aquellas que no recibieron aplicacion de dichos productos, siendo el mayor valor de 63,25 cm en Dominico-Harton y de 51,25 cm en FHIA-21, registrado con Fosito de potasio (Tabla 1).

Las plantulas de Dominico-Harton y FHIA-21 tratadas con lixiviados de raquis de platano, presentaron desarrollo radical deficiente, y menor longitud de raices, comparada con los demas tratamientos, probablemente como resultado de la fitotoxicidad causada por la concentracion a la cual se usaron (Figura 2). Esto coincide con lo reportado por Alvarez et al. (2001) quienes observaron que las aplicaciones de lixiviados de raquis de platano al 50%, aunque redujeron la incidencia del Mildeo polvoso de la rosa (Rosa spp.) causado por Sphaerotheca pannosa, causaron fitotoxicidad en plantas.

Materia seca de raices: Tanto en Dominico-Harton y FHIA-21, las plantulas tratadas con los inductores de resistencia presentaron mayores valores de materia seca de raices con respecto a ambos testigos. Sin embargo, estas diferencias solo fueron significativas a los 90 y 120 DDS, tanto en Dominico-Harton (P < 0,0001 y P = 0,0003), como en FHIA-21 (P = 0,0008 y P < 0,0001).

Las plantulas tratadas con Fosito de potasio, Fosetil-Al y ASM presentaron un comportamiento similar en Dominico-Harton y FHIA-21 debido a que difirieron significativamente de ambos testigos tanto en la evaluacion realizada a los 90 como en la realizada a los 120 DDS. Los valores de materia seca al final del periodo evaluativo con la aplicacion de estos tres inductores fueron en Dominico-Harton de 44, 39 y 45%, respectivamente, mientras que en FHIA-21 estuvieron alrededor de 30% (Tabla 2).

En ambos genotipos la materia seca de raices aumento a traves del tiempo en los tratamientos con inductores de resistencia, y disminuyo en los testigos, comportamiento que tambien fue reportado por Becerra-Encinales (2010); esto probablemente se relaciona con mayor numero de nematodos fitoparasitos en ambos testigos, cuyos danos, afectaron negativamente la biomasa radical.

Nematodos fitoparasitos en 100 g de raices y suelo: Las plantulas de Dominico- Harton y FHIA-21 tratadas con los inductores de resistencia redujeron significativamente el numero de nematodos en raices y suelo en todos los tiempos de evaluacion, con respecto a ambos testigos (P < 0,0001).

Las diferencias estadisticas no permitieron distinguir claramente la superioridad en la accion de alguno de los inductores de resistencia, sin embargo en terminos de reduccion del numero de nematodos fitoparasitos, hubo un orden de efectividad que fue consistente tanto para Dominico-Harton y FHIA-21. En raices la mayor reduccion de nematodos fitoparasitos se presento con la aplicacion de ASM, seguido por Fosito de potasio, Fosetil-Al, BABA y lixiviados de raquis de platano. Los valores en Dominico-Harton para dichos tratamientos al final del periodo evaluativo (120 DDS) fueron de 521, 848, 929, 1.391 y 2.172 individuos 100 g de [raices.sup.-1], respectivamente; en FHIA-21 fueron de 970, 1.192, 1.434, 1.714 y 3.109 individuos 100 g de [raices.sup.-1], respectivamente (Figura 3). En suelo la mayor reduccion de nematodos fitoparasitos se observo con la aplicacion de Fosito de potasio, seguido de ASM, Fosetil-Al, BABA y lixiviados de raquis de platano, con valores al cabo de 120 DDS para Dominico-Harton de 105, 128, 131, 181, y 284 individuos 100 g de [suelo.sup.-1], respectivamente y en FHIA-21 de 213, 229, 277, 285 y 476 individuos 100 g de [suelo.sup.-1], respectivamente (Figura 4).

[FIGURA 3 OMITIR]

[FIGURA 4 OMITIR]

En ambos materiales de platano, el tratamiento de los cormos con Carbofuran tuvo una gran influencia en la reduccion de las poblaciones de nematodos fitoparasitos. Este comportamiento se aprecio en el testigo relativo, el cual registro valores inferiores a los registrados en el testigo absoluto a traves del tiempo (Figuras 3, 4). El numero de nematodos fitoparasitos en raices registrado para los testigos relativo y absoluto al final del periodo evaluativo (120 DDS), fue en Dominico-Harton de 5.522 y 7.940 individuos, respectivamente; mientras que en FHIA-21 fue de 6.310 y 9.400 individuos respectivamente. En suelo los valores para Dominico Harton con estos dos testigos fueron de 487 y 606 individuos, respectivamente y en FHIA-21 de 764 y 945 individuos, respectivamente. Teniendo esto en cuenta se realizo un analisis de reduccion porcentual de nematodos fitoparasitos tomando como referencia el testigo relativo, dado que los cormos usados en los tratamientos con inductores de resistencia tambien fueron tratados con Carbofuran (Tabla 3).

Desde el establecimiento del experimento, hasta el final de la evaluacion se realizaron cuatro aplicaciones de los inductores de resistencia y esto dio como resultado al cabo de 120 DDS, una reduccion de los nematodos fitoparasitos en raices en Dominico-Harton entre 61 y 91%, mientras que en FHIA-21, entre 51 y 85% en comparacion con el testigo relativo. En suelo esta reduccion en Dominico-Harton fue entre 42 y 78%, mientras que en FHIA-21 fue entre 38 y 72% (Tabla 3). Estos resultados confirman la efectividad de los inductores de resistencia y coincide con reportes anteriores donde se evidencian los beneficios de su aplicacion en la estimulacion de los mecanismos de defensa de las plantas y la supresion de las poblaciones de nematodos fitoparasitos. Ramirez-Loaiza (2010), observo que la aplicacion de ASM y Fosfito de potasio en plantas de platano Dominico-Harton en campo, redujeron las poblaciones de nematodos fitoparasitos en raices en 74 y 44% y en suelo en 26 y 17%, respectivamente. Mogollon-Ortiz (2011), reporto una reduccion en poblaciones de nematodos fitoparasitos en plantulas de platano tratadas con Fosito de potasio, ASM y BABA, que fueron del orden de 22,01, 21,10 y 6,42%, respectivamente. Arias (1999), registro una disminucion significativa del numero de nematodos en raices de plantas de banano con la aplicacion de Fosetil-Al y un aumento del 15% de las raices funcionales con respecto a las no tratadas y Llive-Condor (2009), reporto que la aplicacion de lixiviados de raquis frescos o maduros, en diferentes concentraciones sobre vitro plantas de banano (Musa paradisiaca) cv. "Gran Enano" en invernadero, redujeron la penetracion de Radopholus similis en rangos que oscilaron entre 64 y 91%.

En lo referente a la accion de los inductores de resistencia sobre nematodos fitoparasitos, se ha reportado que estos compuestos activan genes relacionados con la patogenicidad como inhibidores de proteasas (PR-6), que impiden el desdoblamiento de las proteinas consumidas por los nematodos; tambien se reporta que afectan su reproduccion y desarrollo al alterar los sitios de alimentacion ya sea por el suministro inadecuado de nutrientes para los nematodos o por el desplazamiento de sustancias toxicas para su desarrollo (Chinnasri et al., 2003; Chinansri & Sipes, 2005; Oka et al., 2007).

En esta investigacion hubo mayor poblacion de nematodos fitoparasitos en raices y suelo en FHIA-21 que en Dominico-Harton, que tambien fue registrado en trabajos previos en la granja Montelindo (Guzman & Castano-Zapata, 2004). Este comportamiento es concordante con mayor poblacion inicial de nematodos fitoparasitos en las raices de los cormos de FHIA-21 (16.101 individuos 100 g de [raices.sup.-1]) que de Dominico-Harton (12.364 individuos 100 g de [raices.sup.-1]). En suelo, podria ser el resultado de la reinfestacion a partir de poblaciones de nematodos en las raices.

Tanto en Dominico-Harton y FHIA-21 se registro la presencia en raices y suelo de nematodos importantes como Radopholus similis, Meloidogyne spp., y Helicotylenchus spp., siendo R similis mas predominante en Dominico-Harton y Meloidogyne spp. en FHIA-21 (Tabla 4).

Conclusiones

Con Fosfito de potasio, Fosetil-Al, Acibenzolar-s-metil (ASM) y Acido DL-3-aminobutirico (BABA), el 100% de brotacion ocurrio tres semanas despues de la siembra y con lixiviados de raquis de platano ocurrio cuatro semanas despues de la siembra en plantulas de Dominico-Harton y FHIA-21.

Aplicaciones continuas de los inductores de resistencia evaluados, redujeron las poblaciones de nematodos fitoparasitos en raices y suelo de plantulas de Dominico-Harton y FHIA-21.

Lixiviados de raquis de platano evaporados al 50% causaron fitotoxicidad en plantulas de Dominico-Harton y FHIA-21, ocasionado desarrollo y crecimiento deficiente; sin embargo, redujeron poblaciones de nematodos fitoparasitos en raices y suelo de dichas plantulas, por lo que se recomienda realizar estudios con otras concentraciones.

La presencia de Radopholus similis, Meloidogyne spp. y Helicotylenchus spp. conirma la importancia de estos nematodos en platano.

Agradecimientos

A la Vicerrectoria de Investigaciones y Posgrados de la Universidad de Caldas, por la financiacion de esta investigacion, a M.Sc. Manuel Aristizabal Loaiza, por su asesoria estadistica, y a Wilson Puerta y Bernardo Gutierrez, por su colaboracion en labores de campo y laboratorio, respectivamente.

Recibido: 3 de febrero de 2012

Aceptado para publicacion: 5 de diciembre de 2012

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Catalina Quintero-Vargas *, Jairo Castano-Zapata **

(1.) Magister en Fitopatologia. Programa de Maestria en Fitopatologia, Departamento de Fitotecnia, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Caldas. Carrera 35 No. 62-160. Manizales, Colombia, e-mail: catalinaquinterovargas@hotmail.com

(2.) Ph.D. Profesor titular, Departamento de Fitotecnia, Universidad de Caldas. Carrera 35 No. 62-160. Manizales, Colombia, e-mail: jairo.castano_z@ucaldas.edu.co
Tabla 1. Altura y longitud promedio de plantulas y raices
de Dominico-Harton y FHIA-21, registrada en las evaluaciones
realizadas a los 40, 60, 90 y 120 DDS y establecimiento
de los tratamientos.

                                      Altura promedio de
                                      plantulas (cm) DDS

Material    Tratamientos                40           60

Dominico-   Fosfito de potasio     21,18 a (x)      30,5 a
Harton      Fosetil-Al                 20,63 a        29 a
            ASM                        20,02 a     28,37 a
            BABA                       19,72 a     27,25 a
            Lixiviados de raquis       10,15 b     13,02 b
            Testigo relativo            24,07a     26,01 a
            Testigo absoluto           23,18 a     24,96 a

FHIA-21     Fosfito de potasio        16,33 ab      19,5 a
            Fosetil-Al                 15,5 ab    17,37 ab
            ASM                       15,81 ab     19,06 a
            BABA                      14,31 ab     18,62 a
            Lixiviados de raquis       11,63 b     12,25 b
            Testigo relativo           19,12 a     21,01 a
            Testigo absoluto          18,03 ab     19,71 a

                                     Altura promedio de
                                     plantulas (cm) DDS

Material    Tratamientos              90          120

Dominico-   Fosfito de potasio      35,68 a      41,37 a
Harton      Fosetil-Al              32,12 a    37,87 abc
            ASM                     33,62 a     38,75 ab
            BABA                     31,5 a    36,43 abc
            Lixiviados de raquis    15,86 b       17,9 d
            Testigo relativo        30,08 a     33,77 bc
            Testigo absoluto        28,25 a         32 c

FHIA-21     Fosfito de potasio      26,74 a      30,18 a
            Fosetil-Al             23,23 ab       26,5 a
            ASM                    25,75 ab      28,52 a
            BABA                   24,31 ab      27,62 a
            Lixiviados de raquis    14,37 c      16,87 b
            Testigo relativo       22,08 ab         25 a
            Testigo absoluto        21,12 b      23,75 a

                                    Longitud promedio
                                    de raices (cm) DDS

Material    Tratamientos              40         60

Dominico-   Fosfito de potasio     43,43 a     47,12 a
Harton      Fosetil-Al             41,84 a     42,75 a
            ASM                    38,58 a        43 a
            BABA                   39,21 a      41,5 a
            Lixiviados de raquis   16,21 b     18,37 b
            Testigo relativo       39,12 a     40,10 a
            Testigo absoluto       30,15 a    31,62 ab

FHIA-21     Fosfito de potasio     32,91 a     37,12 a
            Fosetil-Al                35 a      37,5 a
            ASM                    31,31 a        38 a
            BABA                   30,56 a     39,12 a
            Lixiviados de raquis   18,37 b     19,39 b
            Testigo relativo          31 a    33,62 ab
            Testigo absoluto       29,75 a    31,12 ab

                                      Longitud promedio
                                      de raices (cm) DDS

Material    Tratamientos              90            120

Dominico-   Fosfito de potasio      54,37 a          63,25 a
Harton      Fosetil-Al              45,5 ab         53,12 ab
            ASM                      50,5 a          59,37 a
            BABA                    53,12 a         55,12 ab
            Lixiviados de raquis    23,33 c          30,97 c
            Testigo relativo       43,25 ab        44,12 abc
            Testigo absoluto       33,12 bc         37,87 bc

FHIA-21     Fosfito de potasio       42,5 a    51,25 n.s (y)
            Fosetil-Al                 47 a        50,75 n.s
            ASM                     44,87 a        48,25 n.s
            BABA                       43 a        44,75 n.s
            Lixiviados de raquis    25,33 b        32,25 n.s
            Testigo relativo        38,5 ab        40,37 n.s
            Testigo absoluto       33,50 ab        35,28 n.s

(x) Letras diferentes, indican diferencias significativas entre
tratamientos, segun prueba de Tukey al 5%. (y) n.s: diferencias
no significativas. DDS: Dias despues de la siembra.

Tabla 2. Materia seca de raices (%) de plantulas de
Dominico-Harton y FHIA-21, registrada en las evaluaciones
realizadas a los 40, 60, 90 y 120 DDS y establecimiento
de los tratamientos.

                                        Materia seca
                                     de raices (%) DDS

Material    Tratamientos               40          60

            Fosfito de potasio     32 n.s (x)    35 n.s
            Fosetil-Al                 31 n.s     32n.s
Dominico-   ASM                        33 n.s    35 n.s
Harton      BABA                       31 n.s    32 n.s
            Lixiviados de raquis       26 n.s    27 n.s
            Testigo relativo           23 n.s    23 n.s
            Testigo absoluto           21 n.s    20 n.s

            Fosfito de potasio         29 n.s    30 n.s
            Fosetil-Al                 29 n.s    31 n.s
            ASM                        27 n.s    28 n.s
FHIA-21     BABA                       26 n.s    28 n.s
            Lixiviados de raquis       22 n.s    23 n.s
            Testigo relativo           21 n.s    20 n.s
            Testigo absoluto           20 n.s    19 n.s

                                       Materia seca
                                    de raices (%) DDS

Material    Tratamientos               90        120

            Fosfito de potasio     38 ab (y)     44 a
            Fosetil-Al                 37 ab     39 a
Dominico-   ASM                         39 a     45 a
Harton      BABA                       34 ab    37 ab
            Lixiviados de raquis       29 bc    30 ab
            Testigo relativo           21 cd     20 b
            Testigo absoluto            20 d     19 b

            Fosfito de potasio          31 a     31 a
            Fosetil-Al                  32 a     32 a
            ASM                         31 a     32 a
FHIA-21     BABA                       30 ab     30 a
            Lixiviados de raquis      23 abc     24 b
            Testigo relativo           20 bc     19bc
            Testigo absoluto            19 c     18 c

(x) Diferencias no significativas * (y) letras diferentes indican
diferencias significativas entre tratamientos, segun prueba
de Tukey al 5%. DDS: Dias despues de la siembra.

Tabla 3. Reduccion porcentual del numero de nematodos
fitoparasitos al inal del periodo evaluativo 120 DDS,
con la aplicacion de los inductores de resistencia.

                            Reduccion de nematodos
                               fitoparasitos (%)

                       Dominico-Harton        FHIA-21

Tratamientos           Raices   Suelo   Raices    Suelo

Fosfito de potasio     85 (x)    78       81       72
Fosetil-Al               83      73       77       64
ASM                      91      74       85       70
BABA                     75      63       73       63
Lixiviados de raquis     61      42       51       38
Testigo relativo         0        0        0        0

(x) Reduccion porcentual del numero de nematodos fitoparasitos
en raices y suelo, con respecto al testigo relativo.

Tabla 4. Identificacion de nematodos fitoparasitos
presentes en 100 g de raices y suelo en plantulas
de Dominico-Harton y FHIA-21, 120 DDS y establecimiento
de los tratamientos.

                                      R. similis

Material    Tratamiento            Raices    Suelo

            Fosfito depotasio         546       18
            Fosetil-Al                601       29
            ASM                       349       23
Dominico-   BABA                      784       30
Harton      Lixiviados de raquis    1.272       57
            Testigo relativo        2.750      135
            Testigo absoluto        3.852      162

            Fosfito de potasio        106       45
            Fosetil-Al                163       47
            ASM                        79       43
FHIA-21     BABA                      172       46
            Lixiviados de raquis      320       64
            Testigo relativo          728       74
            Testigo absoluto        1.383       99

                                   Meloidogyne spp.

Material    Tratamiento            Raices    Suelo

            Fosfito depotasio         182       39
            Fosetil-Al                210       43
            ASM                       112       35
Dominico-   BABA                      373       66
Harton      Lixiviados de raquis      488       94
            Testigo relativo        1.670      157
            Testigo absoluto        2.590      196

            Fosfito de potasio        696       90
            Fosetil-Al                774      124
            ASM                       645      101
FHIA-21     BABA                      957      135
            Lixiviados de raquis    1.623      232
            Testigo relativo        3.640      408
            Testigo absoluto        5.529      521

                                   Helicotylenchus
                                         spp.

Material    Tratamiento            Raices    Suelo

            Fosfito depotasio         120       48
            Fosetil-Al                118       59
            ASM                        60       61
Dominico-   BABA                      234       85
Harton      Lixiviados de raquis      339      119
            Testigo relativo        1.102      195
            Testigo absoluto        1.406      228

            Fosfito de potasio        390       78
            Fosetil-Al                497      106
            ASM                       246       85
FHIA-21     BABA                      585      104
            Lixiviados de raquis    1.166      180
            Testigo relativo        1.942      282
            Testigo absoluto        2.488      325

                                    Tylenchus spp.

Material    Tratamiento            Raices    Suelo

            Fosfito depotasio           0        0
            Fosetil-Al                  0        0
            ASM                         0        9
Dominico-   BABA                        0        0
Harton      Lixiviados de raquis       73       14
            Testigo relativo            0        0
            Testigo absoluto           92       20

            Fosfito de potasio          0        0
            Fosetil-Al                  0        0
            ASM                         0        0
FHIA-21     BABA                        0        0
            Lixiviados de raquis        0        0
            Testigo relativo            0        0
            Testigo absoluto            0        0
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Author:Quintero-Vargas, Catalina; Castano-Zapata, Jairo
Publication:Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Fisicas y Naturales
Date:Dec 1, 2012
Words:6981
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