Printer Friendly

Efecto ecotoxicologico del metomilo en Corydoras Lacepede, 1803 (Siluriformes: Callichthyidae) y su caracterizacion leucocitaria.

ECOTOXICOLOGICAL EFFECT OF METHOMYL ON Corydoras LACEPEDE, 1803 (SILURIFORMES: CALLICHTHYIDAE) AND ITS LEUKOCYTE CHARACTERIZATION

Introduccion

El metomilo es un carbamato inhibidor de acetilcolinesterasa que actua por contacto-sistemico (Strickman, 1985; Farre et al., 2002; Michaud & Grant, 2003; Li et al., 2008) y es uno de los agroquimicos de mayor uso como insecticidaacaricida en el Peru para el control de un amplio rango de plagas agricolas (Morishita 2001; El-Aw et al., 2008). Es usado tambien como molusquicida, garrapaticida y contra aranas; asi como en cebos para el control de la mosca domestica. La mayoria de sus productos comerciales estan clasificados por la USEPA (Agencia de Proteccion Ambiental de la Estados Unidos) como clase I. El metomilo en el Peru es clasificado como extremadamente toxico Clase Ib. Existen evidencias que el metomilo es un plaguicida que tiene efecto como Disruptor endocrino (DE). La dosis de aplicacion de metomilo para el control de plagas en la agricultura es como promedio de 1.35 g IA [L.sub.-1] (Panger & Echevarria, 2007).

La ictiohematologia es una disciplina que estudia la sangre en los peces, que incluye a la celula sanguinea desde la perspectiva morfologica, bioquimica y funcional y a los organos hematopoyeticos, las enfermedades relacionadas y cualquier fenomeno o patologia que relacione las celulas y sus organos productores (Valenzuela et al., 2003, 2008). Las oscilaciones en las condiciones abioticas como los toxicos causan modificaciones fisiologicas en los niveles de algunos parametros sanguineos (Centeno et al., 2007; Valenzuela et al., 2002). En adicion, se ha determinado que estos parametros pueden estar tambien influenciados por factores tales como la especie, la edad, el fotoperiodo, el estado nutricional y la metodologia empleada (Hrubec et al., 2000; Iannacone et al., 2006a,b; Centeno et al., 2007). La variacion de los parametros hematologicos pueden ser utilizados como indicadores de contaminacion (Landman et al., 2005).

Corydoras Lacepede, 1803 (Siluriformes: Callichthyidae) conocido como "basurerito", "limpia fondos" o "shirui", es un pez amazonico caracteristico de aguas limpias (Britto & Lima, 2003). Es un genero bentonico de corrientes lentas y de fondos arenosos. Las especies mas importantes del genero tienen importancia en acuarofilia o como peces ornamentales (Kaatz & Lobel, 1999; Ortiz & Iannacone, 2008). Corydoras tiene 143 especies validas (Reis, 2003; Artoni et al., 2006), de las cuales 26 se han registrado para el Peru. Esta distribuido en Sudamerica en una diversidad de habitats. En Corydoras paleatus Jenyns, 1842, se ha evaluado la toxicidad del fenitrotion, metilparation y de las microcistinas (Fanta et al., 2003; Sarikaya et al., 2004; Cazenave et al., 2006).

Los objetivos del presente trabajo fueron: 1) evaluar el efecto toxicologico letal del metomilo sobre el pez amazonico ornamental Corydoras arcuatus Edwin, 1939 (Callichthyidae) a 2, 4, 6, 8, 24, 48 h de exposicion, y 2) determinar los valores de referencia cuantitativos de los leucocitos de C. arcuatus, Corydoras leucomelas Eigenmann & Allen, 1972 y Corydoras leopardus Myers,1933.

Materiales y metodos

Metomilo

CAS = 16752-77-5. La formulacion de polvo soluble (PS) del metomilo, S-metil N-(metilcarbamoyloxi) tioacetimidato ([C.sub.5][H.sub.10][N.sub.2][O.sub.2]S, PM = 162,21) empleada, fue representativa del mercado Nacional Peruano (Lannate[R] 90, Categoria Ib, extremadamente toxica). El metomilo presenta una toxicidad aguda oral en ratas de [DL.sub.50] = 17 mg [Kg.sub.-1] y una toxicidad aguda dermal de [DL.sub.50] > 5000 mg [Kg.sub.-1]. Su punto de ebullicion es 79[grados]C, su presion de vapor es 6.65 mPa a 25[grados] C, su constante de la Ley de Henry fue 1.8 x 10-10 atm [m.sub.3]/mol, su coeficiente de particion octanol-agua (Kow) = 1.29-1,33, su densidad a 20[grados]C es de 1.3, su solubilidad en agua es de 57.9 g [L.sub.-1] a 25[grados] C, no es reactiva, no es corrosiva y no es volatil. Su GUS (Grado de difusion a las aguas subterraneas) indica un valor intermedio de 1.57. No es considerado mutagenico, teratogenico o carcinogenico. Su dosis de aplicacion promedio en los ecosistemas agricolas es de 0.22- 1.8 lb x [acre.sup.-1].

Bioensayos ecotoxicologicos

Los especimenes adultos de C. arcuatus "shirui" procedentes de Iquitos, Loreto, Peru fueron obtenidos de un acuario del distrito de Brena, Lima, Peru. Cuatrocientos peces fueron trasladados al laboratorio de Ecofisiologia Animal de la Facultad de Ciencias Naturales y Matematica de la Universidad Nacional Federico Villarreal en baldes de plastico de 4 L de capacidad. Antes de la aclimatacion en el laboratorio se descartaron los individuos que hubieran sufrido danos mecanicos durante el transporte. Los peces adultos fueron colocados una semana previa a las pruebas ecotoxicologicas en acuarios de vidrio de 90 cm de largo x 40 cm ancho x 30 cm de alto, en agua de grifo declorinada de Lima, Peru reposada y oxigenada (Oxigeno disuelto > 8 mg [L.sub.-1]) (Castillo, 2004). Se implanto un calentador en el acuario para alcanzar la temperatura de 25-26[grados]C. Los parametros fisicos como la temperatura y el pH (7.6-7.9) del cultivo parcial se midieron tres veces por semana. El fotoperiodo fue aproximadamente de 12:12. Los peces seleccionados presentaron una apariencia externa saludable para su uso en los ensayos toxicologicos y presentaron los siguientes parametros biometricos: Longitud total (cm) = 4.81 [+ o -] 0.29; longitud estandar (cm) = 3.88 [+ o -] 0.25, y peso (g) = 3.08 [+ o -] 0.36. Los peces no fueron alimentados al menos 24 h antes del experimento, ni tampoco durante el experimento con el objetivo de mantener una adecuada calidad del agua. Las pruebas de toxicidad se realizaron con cuatro repeticiones, y cinco concentraciones mas el control. Se emplearon cinco concentraciones de metomilo (IA): 3,2 mg IA [L.sub.-1], 16 mg IA [L.sub.-1], 80 mg IA [L.sub.-1], 400 mg IA [L.sub.-1] y 2000 mg IA [L.sub.-1]. Se empleo un factor de dilucion de 0.2. Los bioensayos se realizaron en envases plasticos de 1000 mL a los que se transfirieron 5 individuos y se realizaron lecturas a 2, 4, 6, 8, 24, 48 h de exposicion. Se uso como criterio de mortalidad la carencia de movilidad. Los peces muertos fueron removidos inmediatamente. La eficacia de los tratamientos y las repeticiones se evaluo a traves de un analisis de varianza (ANDEVA) de dos vias, previa transformacion de los datos a raiz cuadrada del arcoseno. En el caso de existir diferencias significativas entre los tratamientos y entre las repeticiones se realizo la prueba de Tukey.

Los calculos de la mortalidad corregida se realizaron mediante la formula de Abbott en caso de muerte natural en el testigo cuando la mortalidad fue menor al 20% (Iannacone & Alvarino, 2007) Los valores de [CL.sub.50] (Concentracion letal media) en mg [L.sub.-1] y [TL.sub.50] (Tiempo letal medio) en h fueron calculados usando el programa computarizado Probit version 1.5 (Weber, 1993). El modelo de regresion fue verificado usando el Chi-cuadrado. Se emplearon los modelos GENEEC (Parker et al., 1995), PRZM-2 (Carousel et al., 2005) y EXAMII (Burns, 2004) para determinar la CAE (concentracion ambiental esperada) del metomilo en el agua, y se calculo el cociente de riesgo (CR) en el ambiente acuatico (Iannacone et al., 2007; Panger & Echevarria, 2007).

Caracterizacion leucocitaria

34 individuos de Corydoras exportados como ornamentales fueron obtenidos de un acuario de Jesus Maria, Lima, Peru: C. leucomelas (n = 26), C. arcuatus (n = 1) y C. leopardus (n = 7). Los peces fueron aclimatados en acuarios de 60 cm x 20 cm x 30 cm por 48 h en el laboratorio, en agua de grifo declorinada de Lima, Peru con las caracteristicas fisico-quimicas senaladas por Iannacone et al. (2006b). A cada ejemplar se le determino el sexo (machos, hembras o indiferenciados), se registro su longitud total (cm), longitud estandar (cm), peso corporal (P en g). Posteriormente se les anestesio con Lidocaina al 2% (Xilocaina[R]), y se realizo la extraccion de la sangre mediante el metodo de puncion cardiaca, realizandose luego extensiones tenidas con Giemsa y con Wright, y el recuento leucocitario a un microscopio optico con aumento de 1000x en un total de 100 celulas (Orun & Erdemil, 2002). Para todos los parametros analizados se determino su media y su desviacion estandar. Los analisis estadisticos se realizaron para los 34 individuos de Corydoras, para C. leucomelas y para C. leopardus. No se efectuaron para C. arcuatus por solo evaluarse un solo individuo. Se empleo el coeficiente de correlacion de Pearson (r) entre los parametros biometricos de Corydoras y el conteo leucocitario. Se comparo si el numero de los diferentes leucocitos eran diferentes entre los machos, hembras e indiferenciados empleando la prueba de ANDEVA y la prueba de Tukey. En adicion, se uso la prueba de t de student para datos pareados para comparar si existen diferencias entre el recuento leucocitario entre la coloracion Giemsa y Wright (Iannacone et al., 2006b). La prueba t de student y la prueba de Levene fueron empleadas para determinar si existian diferencias entre los parametros biometricos y el conteo leucocitario de C. leucomelas y C. leopardus. No se determinaron las diferencias significativas en la caracterizacion leucocitaria entre hembras, machos e indeferenciados para cada especie de Corydoras por separado debido al bajo numero de especimenes en alguna de las tres categorias.

Se uso el paquete estadistico SPPS, version 15.00 para el calculo de los todos los estadisticos descriptivos e inferenciales.

Resultados y Discusion

Bioensayos ecotoxicologicos con metomilo

Los porcentajes de mortalidad de C. arcuatus a las cinco concentraciones de metomilo y a los seis periodos de exposicion es indicado en la Tabla 1. Se encontraron los siguientes valores de [CL.sub.50] (mg de metomilo [L.sub.-1]) de 10.84; 3.18; 0.28; 0.01; 0.002 y < 0.002 a 2, 4, 6, 8, 24 y 48 h, respectivamente sobre C. arcuatus. La [TL.sub.50] a la concentracion mas baja de 3,2 mg [L.sub.-1] fue 4,83 h. La Tabla 2 que incluye a C. arcuatus, muestra que esta especie resulto ser altamente sensible al metomilo en comparacion a otras 28 especies dulceacuicolas (10 peces; 9 crustaceos; 4 insectos y 5 moluscos) (Munn et al., 2006; Li et al., 2008). Se observo que los insectos presentaron mayor sensibilidad que los crustaceos, y estos a su vez que los peces, y estos ultimos que los moluscos (F= 4.90; P = 0.01) (Tabla 2).

De acuerdo a la clasificacion de la toxicidad de los pesticidas en los organismos acuaticos, el metomilo es clasificado como un plaguicida altamente toxico (Li et al., 2008). La toxicidad del metomilo en peces varia entre 320 mgx[L.sub.-1] para Ictalurus punctatus y 5425 mgx[L.sub.-1] para Oncorhynchus clarki (Tabla 2). C. arcuatus es 160 y 2713 veces mas sensible al metomilo que I. punctutus y O. clarki.

La mayor toxicidad y sensibilidad al metomilo encontrada en C. arcuatus en terminos de [CL.sub.50] en comparacion a las otras 28 especies dulceacuicolas podria deberse a que esta especie de pez amazonico del Neotropico carece de un adecuado sistema de detoxificacion del metomilo, el cual inhibe la actividad de la acetilcolina (AchE) y de la glutation Stransferasa (GTSs) produciendo una alta sensibilidad a este carbamato, como ha sido observado en otras especies de peces (Li et al., 2008).

Al realizar una evaluacion de riesgo del metomilo empleado a C. arcuatus, se muestran segun el modelo GENEEC para determinar la CAE (concentracion ambiental esperada) valores de 409. 386 y 350 ugx[L.sub.-1] a un nivel pico, 21 dias y 56 dias, respectivamente (Panger & Echevarria, 2007). Por ende, el cociente de riesgo (CR) fue de 204.5; 193 y 175 a un nivel pico, 21 dias y 56 dias, respectivamente. De igual manera al usar el procedimiento PRZM-2/EXAMII para determinar la CAE, se obtuvieron valores de 99, 95, 85 y 79 ug x [L.sub.-1] a un nivel pico, 21 dias, 56 dias y 90 dias, respectivamente (Panger & Echevarria, 2007). Asi, al aplicar el CR, se obtuvieron valores de 49.5; 47.5; 42.5 y 39.5 a un nivel pico, 21 dias, 56 dias y 90 dias, respectivamente. De esta manera, ambos modelos GENEEC y PRZMZ/EXAMII que simulan el destino y transporte del metomilo en el ambiente acuatico evidencian segun los CR que presentaria un alto riesgo acuatico para las comunidades icticas neotropicales. Sin embargo, los valores de Kow del metomilo nos senalan una baja tendencia a la bioacumulacion en peces.

Caracterizacion leucocitaria

La Tabla 3 indica tres parametros biometricos (longitud total, longitud estandar y peso), de sexo (macho, hembra e indiferenciado) y de recuento leucocitario (linfocitos, monocitos, neutrofilos, eosinofilos y basofilos) por Giemsa y Wright para Corydoras spp., C. leucomelas, C. arcuatus y C. leopardus.

Se observaron diferencias en la longitud total, longitud estandar y el peso de los peces machos, hembras e indiferenciados de Corydoras spp. (Tabla 4). Observandose que las hembras presentaron mayor longitud total, longitud estandar y peso que los machos e indiferenciados (Tabla 4). No se encontraron diferencias significativas en el recuento leucocitario de linfocitos, monocitos, eosinofilos y basofilos entre los peces machos, hembras e indiferenciados de Corydoras spp. Solo se vio diferencias entre el numero de neutrofilos por Giemsa y Wright con relacion al sexo de los peces (Tabla 4).

Al comparar la longitud total, el peso y el recuento leucocitario (linfocitos, monocitos, neutrofilos, eosinofilos y basofilos) no se encontraron diferencias significativas entre C. leucomelas y C. leopardus (t = 0.09-1.83; P = 0.07-0.92; Prueba de Levene W = 0.114.20; P = 0.06-0.74). Solo se observo diferencias significativas entre la longitud estandar de C. leucomelas (3.56[+ o -] 0.4 cm) y C. leopardus (4.17 [+ o -] 0.52 cm) (t= 3.30; P= 0.002).

Segun la prueba de t de Student no se encontraron diferencias significativas entre el numero de linfocitos, monocitos, neutrofilos, eosinofilos y basofilos evaluados mediante la tecnica de coloracion de Giemsa y Wright (Tabla 5). La longitud total solo se vio correlacionada positivamente con el numero de linfocitos (r= 0.46; P = 0.009) y negativamente con el numero de neutrofilos (r = -36; P = 0.04).

Los leucocitos, en general, presentaron caracteristicas similares a las descritas para otros peces amazonicos. Las celulas sanguineas de los frotis que se analizaron en las lecturas fueron similares morfologicamente a las descritas para Shroedenchthys chilensis (Guichenot 1848) (Filho et al., 1992; Valenzuela et al., 2003), Salminus maxillosus Valenciennes 1840 (Veiga et al., 2000; Ranzani-Paiva et al., 2003), Chaetodipterus faber (Broussonet 1782) (Bastardo & Barberan, 2004) y Astronotus ocellatus (Agassiz 1831) (Iannacone et al., 2006a). En el recuento se observo un predominio de los linfocitos, lo cual es concordante con lo encontrado en otros peces teleosteos como Pimelodus maculatus Lacepede 1803, Synbranchus marmoratus (Bloch 1795), Mugil platanus Gunther 1880, Oncorhynchus mykiss (Walbaum 1792), A. ocellatus, Pterophyllum scalare (Lichtenstein 1823) y Salminus affinis (Steindachner 1880) (Orun & Erdemil, 2002; Ranzani-Paiva et al., 2003; Valenzuela et al., 2003; Iannacone et al., 2006a,b; Atencio-Garcia et al., 2007). Se encontraron ligeras diferencias en los recuentos leucocitarios observados en ambos procedimientos de tincion y entre sexos. No se encontraron diferencias significativas entre las tres especies de Corydoras examinadas. Cuantitativamente, se encontro la siguiente secuencia: linfocitos (64.6%)> monocitos (18.4%)> neutrofilos (8.2%)> eosinofilos (5.2%)> basofilos (3.2%). Los parametros hematologicos obtenidos en Corydoras spp. son un aporte al conocimiento de este genero ictico y pudieran potencialmente ser empleados como biomarcadores de respuesta subletal en bioensayos ecotoxicologicos.

Presentado: 31/07/2008

Aceptado: 09/10/2008

Literatura citada

Artoni R.F., Terencio M.L., Vicari M.R., Matiello M.C.A., Cestari M.M. & Bertollo L.A. C. 2006. Cytogenetics of two sympatric Corydoras species (Pisces, Siluriformes, Callichthyidae) of southern Brazil. Brazilian Journal of Biology. 66: 191-198.

Atencio-Garcia V., Genes L.F., Madariaga M.D. & Pardo C.S. 2007. Hematologia y quimica sanguinea de juveniles de rubio (Salminus affinis Pises: Characidae) del rio Sinu. Acta Biologica Colombiana. 12: 27-40.

Bastardo A. & Barberan R. 2004. Parametros hematologicos de la paragua, Chaetodipterus faber (Broussonet) (Pisces. Ephippidae), em condiciones de cultivo. Zootecnia Tropical. 22: 361-370.

Britto M.R. & Lima F.C.T. 2003. Corydoras tukano, a new specie of corydoradine catfish from the rio Tiquie, upper rio Negro basin, Brazil (Ostariophysi: Siluriformes: Callichthyidae). Neotropical Ichthyology. 1: 83-91.

Burns L.A. 2004. Exposure Analysis Modeling System (EXAMS): User Manual and System Documentation. EPA600R00081.

Carousel R.F., Imhoff J.C., Hummel P.R., Cheplick J.M. & Donigian A.S. 2005. PRZM-3, A Model for Predicting Pesticide and Nitrogen Fate in the Crop Root and Unsaturated Soil Zones: Users Manual for release 3.0. National Exposure Research Laboratory Office of Research and development U.S. Environmental Protection. U.S.A.

Castillo G. 2004. Ensayos ecotoxicologicos y metodos de evaluacion de calidad de aguas. Estandarizacion, intercalibracion, resultados y aplicaciones. IMTA. Mexico.

Cazenave J., Bistoni M. de L., Pesce S.F. & Wunderlin D.A. 2006. Differential detoxification and antioxidant response in diverse organs of Corydoras paleatus experimentally exposed to microcystin-RR. Journal of Parasitology. 92: 459-463.

Centeno L., Silva-Acuna R., Barrios R., Salazar L.R., Matute C. & Perez J.L. 2007. Caracteristicas hematologicas de la cachama (Colossoma macropomum) em tres etapas de crecimiento cultivadas em el estado Delta Amacuro, Venezuela. Zootecnia Tropical. 25: 237-243.

El-Aw M.A.M., Draz K.A.A., Hashem A.G. & El-Gendy I.R. 2008. Mortality comparison among spinosad-, actara-, malathin-, and methomyl- containing baits against peach fruit fly, Bactrocera zonata Saunders (Diptera: Tephritidae) under laboratory condictions. Journal of Applied Science Research. 4: 216-223.

Fanta E., Rios F.S., Romao S., Vianna A.C. & Freiberger S. 2003. Histopathology of the fish Corydoras paleatus contaminated with sublethal levels of organophosphorus in water and food. Ecotoxicology and Environmental Safety. 54:119-130.

Farre M., Fernandez J., Paez M., Granada L., Barba L., Gutierrez H.M., Pulgarin C. & Barcelo D. 2002. Analysis and toxicity of methomyl and ametryn after biodegradation. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 373: 704-709.

Filho W., Eble G.J., Kassner G., Caprario F.X., Dafre A.L. & Ohira M. 1992. Comparative hematology in marine fish. Comparative biochemical Physiology and comparative physiology. 102: 311-321.

Hrubec T.C., Cardinale J.L. & Smith S.A. 2000. Hematology and plasma chemistry reference intervals for culture Tilapia (Oreochromis hybrid). Veterinary Clinical Pathology. 29: 7-12.

Iannacone J. & Alvarino L. 2007. Ecotoxicidad acuatica de dos colorantes y de tres antiparasitarios de importancia en acuicultura en Daphnia magna. Ecologia Aplicada. 6: 101-110.

Iannacone J., Bello C., Hernandez N. & Diaz M. 2006a. Caracterizacion leucocitaria del pez amazonico Pterohyllum scalare (Lichtenstein, 1823) (Perciformes: Cichlidae) de Peru. Biotempo. 6: 32-37.

Iannacone J., Falcon W. & Vargas R. 2006b. Parametros hematologicos del acarahuazu Astronotus ocellatus (Agassiz, 1831) (Cichlidae: Perciformes). The Biologist (Lima). 4: 16-18.

Iannacone J., Onofre R., Huanqui O., Giraldo J., Mamani N., Miglio M. & Alvarino L. 2007. Evaluacion del riesgo ambiental del insecticida metamidofos en bioensayos con cuatro organismos acuaticos no destinatarios. Agricultura Tecnica (Chile). 67:126-138.

Kaatz I.M. & Lobel P.S. 1999. Acoustic behavior and reproduction of five species of Corydoras catfishes (Callichthyidae). The Biological Bulletin. 197: 241-242.

Landman M. J., Van Dern Heuvel M.R., Finley M., Banon H.J. & Ling N. 2005. Combined effects of pulp and paper effluent, dehydroabietic acid, and hypoxia on swimming performance, metabolism, and hematology of rainbow trout. Ecotoxicology and Environmental Safety. 65: 314-322.

Li H., Jiang H., Gao X., Wang X., Qu W., Lin R. & Chen J. 2008. Acute toxicity of the pesticide methomyl on the topmouth gudgeon (Pseudoraspora parva): mortality and effects on four biomarkers. Fish Physiology and Biochemical. 34: (in press).

Michaud J.P. & Grant A.K. 2003. IPM-compatibility of foliar insecticide for citrus: Indices derived from toxicity to beneficial insects from four orders. Journal of Insect Science. 3: 18, 10 pp. Disponible en linea: insectscience.org/3.18

Morishita M. 2001. Toxicity of some insecticides to larvae of Frankliniella occidentalis (Pergande) (Thysanoptera: Thripidae) evaluated by the petri dish-spraying tower method. Applied Entomology and Zoology. 36: 137-141.

Munn M.D., Gilliom R.J., Moran P.W. & Novell L.H. 2006. Pesticide toxicity index for freshwater aquatic organisms, 2nd Ed. Scientific Investigations Report 2006-5148. U.S. Department of the Interior Dirk Kempthorne, Secretary U.S. Geological Survey P. Patrick Leahy, Acting Director.

Ortiz N. & Iannacone J. 2008. Estado actual de los peces ornamentales amazonicos del Peru que presentan mayor demanda de exportacion. The Biologist (Lima). 6: 48 63.

Orum I. & Erdemil A.U. 2002. A study of blood parameters of Capoella trutta (Heckel, 1843). On line Journal of Biological Science. 2: 508-511.

Panger M.A. & Echevarria M. 2007. Risk of methomyl use to the Federally listed California red-legged frog (Rana aurora draytonii). Environmental Fate and Effects Division Office of Pesticide Programs. Washington, D.C. 20460.

Parker R.D., Jones R.D. & Nelson H.P. 1995. GENEEC: A Screening Model for Pesticide Environmental Exposure Assessment. Proceedings of the International Exposure Symposium on Water Quality Modeling.

Ranzani-Paiva M.J.T., Rodriguez E.L., Veiga M.L., Eiras A.C. & Campos B.E.S. 2003. Differencial leukocyte counts in "dorado" Salminus maxillosus Valenciennes, 1840, from the mogi-guacu river, Pirassununga, S.P. Brazilian Journal of biology. 63: 517-525.

Reis R.E. 2003. Family Callichthyidae (armored catfishes). Pp. 291-309. In: Reis, R. E., S. O. Kullander & C. J. Ferraris (Eds.). Check List of the Freshwater Fishes of South and Central America. Porto Alegre, EDIPUCRS,

Sarikaya R., Selvi M. & Erkoc F. 2004. Investigation of acute toxicity of fenitrothion on peppered corydoras (Corydoras paleatus) (Jenyns, 1842). Chemosphere. 56: 697-700.

Strickman D. 1985. Aquatic bioassay of 11 pesticides using larvae of the mosquito, Wyeomyia smithii (Diptera: Culicidae). Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 35: 133-142.

Valenzuela A., Alveal K. & Tarifeno E. 2002. Respuesta hematologica de truchas (Onchorhynchus mykiss Walbaum 1792) a estres hipoxico agudo: serie roja. Gayana. 66: 255-261.

Valenzuela A., Oyarzun C. & Silva V. 2003. Celulas sanguineas de Schroederichthys chilensis (Guichenot 1848) (Elasmobranchii, Scyliorhinidae): la serie blanca. Gayana. 67: 130-136.

Valenzuela A., Silva V.M. & Klempau A.E. 2008. Effects of different artificial photoperiods and temperatures on haematological parameters of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemical. 34: 159-167.

Veiga M.L., Egami M.I., Ranzani-Paiva M.J.T. & Rodriguez E.L. 2000. Aspectos morfologicos y citoquimicos de las celulas sanguineas de Salminus maxillosus Valenciennes, 1840 (Characiformes, Characidae). Revista Chilena de Anatomia. 18: 245-250.

Weber C. 1993. Methods for measuring the acute toxicity of effluents and receiving waters to freshwater and marine organisms. EPA/600/4-90/027F.

Jose Iannacone (1,2) y Lorena Alvarino (2)

(1) Laboratorio de invertebrados. Facultad de Ciencias Biologicas. Universidad Ricardo Palma. joseiannacone@yahoo.es

(2) Laboratorio de Ecofisiologia Animal. Facultad de Ciencias Naturales y Matematicas. Universidad Nacional Federico Villarreal. lalvarino@sedapal.com.pe
Tabla 1. Porcentaje de mortalidad de C.
arcuatus expuesta al metomilo.

   mg*
[L.sup.-1]    2 h     4 h     6 h       8 h      24 h      48 h

     0        0a      0a       0a       0a        0a        0a
    3.2      13.3a   33.3b    66b      80b       81.5b     86.6b
     16      80b     86.6c    86.6c    86.6bc    86.6bc    95b
     80      81.5b   87.5c    87.5c    87.5bc    90bc     100b
    400      85b     90c      90c      90bc      90bc     100b
   2000      87.5b   93.7c   100c     100c      100c      100b

Letras minusculas iguales en una misma columna
indican que los promedios son estadisticamente
iguales (p [mayor que o igual a] 0.05) segun la prueba de Tukey.

Tabla 2. Valores comparativos de [CL.sub.50] con 28
especies acuaticas expuestas al metomilo.

  Grupo                     Especie                     Duracion

Pez         Cyprinodon variegatus (Lacepede, 1803)         96
Pez         Ictalurus punctatus (Rafinesque, 1818)         96
Pez         Lepomis macrochirus Rafinesque, 1819           96
Pez         Micropterus salmoides (Lacepede, 1802)         96

Pez         Oncorhynchus clarki (Richardson, 1836)         96
Pez         Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792              96
Pez         Pimephales promelas Rafinesque, 1820           96
Pez         Salmo salar (Linnaeus 1758)                    96
Pez         Salvelinus fontinalis (Mitchill, 1814)         96
Pez         Pseudorasbora parva                            96
            (Temminck et Schlegel, 1846)
Pez         Corydoras arcuatus                             48
            Elwin, 1939 (Este trabajo, 2008)
Insecta     Chironomus plumosus Linnaeus, 1758             96
Insecta     Isogenus Newman, 1833 sp.                      96
Insecta     Pteronarcella badia (Hagen, 1874).             96
Insecta     Skwala sp. Ricker                              96
Crustacea   Daphnia magna (Straus, 1820)                   48
Crustacea   Acartia tonsa Dana 1849                        96
Crustacea   Cyclops strenuus (Fischer 1851).               96
Crustacea   Eurytemora affinis (Poppe, 1880)               96
Crustacea   Gammarus italicus                              96
            Goedmakers & Pinkster, 1977
Crustacea   Gammarus pseudolimnaeus Bousfield, 1958        96
Crustacea   Gammarus pulex (Linnaeus, 1758)                96
Crustacea   Palaemonetes vulgaris (Say, 1818)              96
Crustacea   Procambarus acutus (Girard 1852)               96
Mollusca    Bulinus truncatus (Audouin, 1827)              96
Mollusca    Cipangopaludina malleata (Reeve, 1863)         96
Mollusca    Indoplanorbis exustus Deshayes 1834            96
Mollusca    Physella acuta (Draparnaud,1805)               96
Mollusca    Semisulcospira libertina (Gould, 1859)         96

                           N[grados]                   [CL.sub.50]
  Grupo                     ensayos                   ug [L.sup.-1]

Pez                            2                          1060
Pez                            9                           320
Pez                           18                           850
Pez                            4                          1005
Pez                            2                          5425
Pez                           19                          1600
Pez                           10                          1800
Pez                            6                          1200
Pez                            5                          1500
Pez                            1                           425

Pez                            1                           <2

Insecta                        1                           32
Insecta                        2                           186
Insecta                        6                           60
Insecta                        3                           29
Crustacea                      8                           8,8
Crustacea                      1                           410
Crustacea                      1                           190
Crustacea                      1                           290
Crustacea                      1                           47

Crustacea                      6                           920
Crustacea                      1                           760
Crustacea                      1                           49
Crustacea                      1                          1000
Mollusca                       1                           870
Mollusca                       1                          25000
Mollusca                       1                          6600
Mollusca                       1                          18000
Mollusca                       1                          12000

Tabla 3. Parametros biometricos y de recuento
leucocitario de varias especies de Corydoras.

                        Las 3          C.          C.         C.
Parametros           especies de   leucomelas   arcuatus   leopardos
                      Corydoras

Longitud total           4.9          4.8          6          5.1
(cm)
Longitud estandar        3.7          3.5         4.6         4.1
(cm)
Peso (g)                 2.9          2.9         4.1         3.01
% Linfocitos            64.8          63.5        ND         69
(Giemsa)
% Linfocitos            64.4          62.3        61         76
(Wright)
% Monocitos             18.6          17.9        ND         22.7
(Giemsa)
% Monocitos             18.1          18.9        11         15.8
(Wright)
% Neutrofilos            8.2          9.7         ND          2.2
(Giemsa)
% Neutrofilos            8.1          9.2          6          2.8
(Wright)
% Eosinofilos            4.9          5.6         ND          3.0
(Giemsa)
% Eosinofilos            5.5          6.5          0          1.4
(Wright)
% Basofilos              3.3          3.2          6          3.0
(Giemsa)
% Basofilos              3.1          2.2         22          4.0
(Wright)
Macho (Nro.)            13            10           1          2
Hembra (Nro.)            7             2           0          5
Indiferenciado          14            14           0          0
(Nro.)
Especimenes (Nro.)      34            26           1          7

Tabla 4. Comparacion entre tres parametros biometricos,
numero de neutrofilos y el sexo de Corydoras spp. F =
Estadistico de Fisher. P = Probabilidad.

 Parametros                Sexo                        F       P
                 Macho    Hembras   Indiferenciados
                (n=13)     (n=7)        (n=14)

Longitud         5.15b    5.50b     [4.62.sup.a]      8.62   0.001
total (cm)
Longitud         3.78ab   4.22b     [3.46.sup.a]      6.63   0.004
estandar (cm)
Peso (g)         3.35b    3.56b     [2.35.sup.a]      8.80   0.001
Neutrofilos     14.5c     1.80a     5b                6.57   0.006
(Giemsa)  (%)
Neutrofilos     13.5c     0.00a     6.28b             4.22   0.025
(Wright)  (%)

Letras minusculas iguales en una misma fila indican que
los promedios son estadisticamente iguales (p[mayor que
o igual a] 0.05) segun la prueba de Tukey.

Tabla 5. Comparacion del % leucocitario de
Corydoras spp. segun tecnica de tincion empleada.
Solo se incluyeron 24 datos pareados, debido a que
en el resto de los recuentos leucocitarios solo se
obtuvo una sola lamina de Giemsa o de Wright. t = t
de Student para datos pareados. P. = Probabilidad.

     %         Tincion   Tincion    t      P
Leucocitario   Giemsa    Wright

Linfocito       64.2      67.3     0.89   0.37
Monocito        18.9      16.9     0.88   0.38
Neutrofilo       8.3       7.7     0.46   0.64
Eosinofilo       5.0       4.4     0.37   0.70
Basofilo         3.3       2.6     0.69   0.49
COPYRIGHT 2008 Universidad Nacional Agraria La Molina
No portion of this article can be reproduced without the express written permission from the copyright holder.
Copyright 2008 Gale, Cengage Learning. All rights reserved.

Article Details
Printer friendly Cite/link Email Feedback
Author:Iannacone, Jose; Alvarino, Lorena
Publication:Ecologia Aplicada
Date:Jan 1, 2008
Words:4922
Previous Article:Enriquecimiento ambiental de nutria marina Lontra felina (Molina 1782) en el Parque Zoologico Huachipa entre Febrero y Marzo del 2007.
Next Article:Crecimiento y produccion de Donax obesulus Reeve, 1854 (Bivalvia: Donacidae) en Playa Sarapampa, Asia, Lima.
Topics:

Terms of use | Privacy policy | Copyright © 2019 Farlex, Inc. | Feedback | For webmasters