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Efecto atractivo de los volatiles de un terpenoide a insectos asociados a Coffea arabica L. (Rubiaceae).

ATTRACTIVE EFFECT OF VOLATILES OF A TERPENOIDE TO ASSOCIATED INSECTS TO COFFEA ARABICA L. (RUBIACEAE)

INTRODUCCION

En los agroecosistemas existen diferentes relaciones de comunicacion entre los enemigos naturales, los insectos fitofagos y las plantas, entre ellas las senales quimicas por la emision de volatiles de las plantas (BALDWIN et al., 2001). Estas senales pueden influir en las tasas de ovoposicion, herbivoria y depredacion de los insectos, lo que sugiere que estos volatiles pueden ser un mecanismo de defensa indirecta de la planta (BALDWIN et al., 2001).

Los volatiles organicos emitidos son senales que indican a los depredadores y parasitoides que una planta esta siendo atacada, por tanto, pueden funcionar como importantes atrayentes de estos controladores biologicos, ya que muchos de ellos detectan las sustancias del hospedante o de su presa y de esta forma se orientan hacia ellas (BERNAYS & CHAPMAN, 1994; VAN POECKE et al., 2001). Igualmente, las plantas pueden proporcionar alimento (nectar y polen) y refugio en estructuras especializadas a los enemigos de los herbivoros, conformandose de tal forma en un sistema tritrofico (KESSLER & BALDWIN, 2001).

Algunas moleculas volatiles, como el salicilato de metilo, jasmonato de metilo y etileno entre otras, han sido consideradas las responsables de la senalizacion dentro de una planta y entre plantas (VAN POECKE et al., 2001). El salicilato de metilo, es un compuesto que esta presente en muchas mezclas de sustancias volatiles de plantas inducidas por herbivoros, que atraen a depredadores como Chrysopa nigricornis (JAMES, 2003a). El entendimiento de cuales compuestos de la planta atraen a los depredadores ha conducido a pruebas de campo, usando analogos sinteticos como el salicilato de metilo para incrementar la densidad de estos insectos en los cultivos (JAMES, 2003a; JAMES & PRICE, 2004). El salicilato de metilo es una forma volatil del acido salicilico, un compuesto vegetal implicado en la induccion de la resistencia de la planta a los patogenos y algunas plagas (JAMES & PRICE, 2004). En el caso de Arabidopsis thaliana este compuesto volatil es liberado para su defensa contra insectos herbivoros, el cual atrae a hembras parasitoides de Cotesia rubecula hacia plantas infestadas por el herbivoro Pieris rapae (VAN POECKE et al., 2001).

Con la liberacion controlada de salicilato de metilo en lupulos y vinedos, fue posible aumentar de 4 a 6 veces mas las poblaciones de los enemigos naturales, generando un aumento en la diversidad de parasitoides y depredadores (p. ej., Coleoptera: Coccinellidae; Diptera: Empidiidae, Syrphidae; Hemiptera: Anthocoridae, Geocoridae, Miridae; Hymenoptera: Braconidae; Neuroptera: Chrysopidae, Hemerobiidae) (JAMES, 2003a, 2003b, 2005). Es decir este compuesto volatil multifuncional y bioactivo esta involucrado en diferentes sistemas de senales de comunicacion quimica y es un potencial atrayente de insectos beneficos (NORIN, 2001).

Teniendo en cuenta que los volatiles de plantas puede incrementar la atraccion de enemigos naturales, nuevas estrategias de biocontrol pueden ser generadas a partir de tales compuestos (REDDY & GUERRERO, 2004). El objetivo de este trabajo fue evaluar la capacidad de atraccion del salicilato de metilo a insectos beneficos presentes en un cafetal.

MATERIALES Y METODOS

Area de estudio

El estudio fue realizado en un cultivo de cafe (Coffea arabica) variedad Caturra de cuatro anos de edad, en un area aproximada de 3,2 hectareas, con una altura de las plantas entre 2 y 2,5 m, con un historial de no aplicacion de insecticidas mediante un manejo organico. El cafetal se localizo en el municipio de Taminango (Narino), en la vereda Charco Hondo, ubicado a una altura de 1.500 msnm, con una temperatura entre 18-23 [grados]C, y pendiente del 11%; el numero total de arboles por hectarea correspondio a 5100, a una distancia de siembra de 1,5 X 1,5 m, en sistema de siembra de tres bolillo.

Este cafetal se encontraba en asociacion con arboles de sombrio, tales como guamo (Inga edulis Mart.), aguacate (Persea americana Miller), mango (Mangifera indica L.), banano (Musa sp.) y naranjo (Citrus sinensis L.), dispuestos en la finca al azar.

Los tratamientos consistieron en un lote A con salicilato y lote B testigo sin salicilato con las mismas caracteristicas agronomicas y area (1,6 ha) (Figura 1). Los lotes estaban divididos por una quebrada ademas de arboles nativos existentes a lo largo de la cuenca hidrica.

[FIGURA 1 OMITIR]

En el lote cada lote se colocaron 20 trampas construidas utilizando un marco de alambre calibre 12 de 20 x 25 centimetros forrados con plastico de color amarillo. Las dos caras de la trampa se cubrieron con una capa fina de grasa Terpel[R] N-3 de copas. Las trampas se colocaron en el segundo tercio de cada planta de cafe, siendo esta la parte productiva del arbol. La distancia entre trampas fue de 10 metros y se localizaron a 10 metros del borde de cada lote (Figura 1).

En las trampas del lote A, se coloco un liberador del salicilato de metilo que consistio en un frasco de 10 ml, de 5 cm de altura y 1 cm de diametro. En el lote B unicamente se colocaron las trampas. Durante todo el experimento el frasco se mantuvo abierto con un volumen constante de 2cc de salicilato de metilo que tuvo una tasa de liberacion diaria de entre 4 y 5 [micron]l. El muestreo de los insectos capturados en las trampas de los lotes A y B se realizaron cada 8 dias durante 4 meses, correspondientes a junio, julio, agosto, septiembre del ano 2009, para un total de 16 muestreos (esfuerzo de muestreo) correspondiendo a un periodo entre 90 y 210 dias, despues de la floracion del cafe lo que aseguro la presencia de frutos en el arbol. Los insectos capturados en las trampas se colectaron en frascos plasticos con alcohol al 70%, estos insectos se llevaron al laboratorio de Entomologia de la Universidad de Narino (Pasto-Colombia). Para identificar las familias de los insectos se utilizaron las claves taxonomicas de TRIPLEHORN & JOHNSON (2004).

Los diferentes especimenes de cada familia fueron categorizados a morfoespecie basados en la morfologia de los insectos adultos, asignando un codigo numerico a cada una de las morfoespecies encontradas dentro de cada familia, siguiendo la metodologia propuesta por OLIVER & BEATTIE (1995).

Indices De Diversidad

La diversidad de las especies capturadas en cada uno de los lotes del estudio, se estimo aplicando el parametro de diversidad alfa, mediante la utilizacion de los indices de riqueza especifica (S) y Margalef (DMg) (VILLARREAL et al., 2006). Para el calculo de la abundancia proporcional, se utilizo el indice de Simpson ([lambda]) para dominancia y el Indice de Shannon-Wiener (H') para estimar la equidad (VILLARREAL et al., 2006). Para evaluar la diversidad Beta se utilizo el coeficiente de similitud de Jaccard (IJ) y el coeficiente de similitud de Sorensen (Is).

Para comparar el numero de insectos capturados en los dos tratamientos fue utilizada una prueba de t (p [menor que o igual a] 0,05), en donde se uso el procedimiento descrito por ZAR, (1996), donde se calculo el indice de diversidad ponderado (Hp) en funcion de la frecuencia de cada morfoespecie.

RESULTADOS Y DISCUSION

En total se capturaron 451 ejemplares (297 en el lote A y 154 en el lote B) pertenecientes a 18 familias y 6 ordenes de insectos: Coleoptera, Diptera, Hemiptera, Hymenoptera, Neuroptera y Lepidoptera (Tabla 1, 2 y 3). En donde 23 morfoespecies correspondieron a trampas con salicilato de metilo y 10 a las trampas sin salicilato (Tabla 1). Segun la prueba de t (p [menor que o igual a] 0,05), la captura fue significativamente mayor en lote con trampas con salicilato de metilo (14,85 insectos promedio por trampa) en comparacion con las capturas obtenidas en el lote testigo (7,7 insectos promedio por trampa). Ademas, los indices evaluados indican que la diversidad de insectos fue significativamente mayor (p [menor que o igual a] 0,05) en las trampas con salicilato de metilo (Lote A) (Tabla 1), corroborando con lo propuesto por JAMES (2003a, 2003b, 2005, 2011) y JAMES & PRICE (2004).

Al comparar la composicion de ambos lotes, se evidencio un bajo grado de similitud en cuanto a las morfoespecies encontradas (Tabla 1), ya que, apenas 6 de estas resultaron comunes en ambos lotes, ellas son: Scolytidae, Bruchidae, Cisidae, Drosophilidae, Aphididae y Membracidae (Tablas 2 y 3).

Exclusivamente para el lote A (con salicilato) (Tabla 2), se capturaron 11 morfoespecies de insectos beneficos pertenecientes a las familias Perilampidae, Formicidae, Coccinellidae, Chrysopidae, Ichneumonidae, Chalcidae, Chrysididae y Braconidae, de las cuales se identificaron las especies: Perilampus sp., Crematogaster sp. e Hippodamia convergens.

Entre los insectos capturados del lote A (con salicilato), se destaca un alto numero de insectos pertenecientes al orden Hymenoptera, en especial a individuos de la familia Formicidae, para la cual se capturo un total de 52 insectos (Tabla 2). Existen evidencias que las hojas de diferentes plantas con abundante presencia de salicilato de metilo atraen a las hormigas, que lo emplean como antiseptico en sus nidos (BROUAT et al., 2000). Ademas, las hormigas Pheidole radoszkowskii, Solenopsis geminata y Crematogaster torosa son conocidas como depredadoras de Hypothenemus hampei bajo condiciones de laboratorio en Costa Rica (VARON et al., 2004), especie plaga del cafe encontrada en la zona de estudio.

Para este mismo orden se capturaron otras familias tales como Braconidae, lchneumonidae y Perilampidae, las cuales son conocidas por el efecto parasitico sobre poblaciones de lepidopteros plaga de cultivos y bosques naturales (CARMICHAEL et al., 2005; ROWELL et al., 2005; ARODOKOUN et al., 2006; SARVARY et al., 2007). En particular los braconidos atacan exclusivamente lepidopteros, coleopteros y dipteros en diferentes estados de desarrollo, la gran mayoria de especies tienen hospederos especificos (MATTHEWS, 1974; LA SALLE & GAULD, 1991), caracteristica que los convierte en uno de los grupos mas utilizados en control biologico de plagas, que les da la cualidad adicional de tener un gran potencial como indicadores de riqueza y estabilidad de un ecosistema (SHAW & HUDDLESTON, 1991). En la familia Perilampidae, el genero Perilampus sp. (morfoespecie 1-Perilampidae), puede ser parasitoide primario o secundario de Belvosia bifasciata Fabr. y otros Tachinidae en Canada, EEUU, Mexico, Puerto Rico, Peru (PACKARD, 1914).

Con respecto a las capturas de H. hampei, en el lote A (Tabla 2), es posible que estas hayan sido influenciadas por el salicilato de metilo. Al respecto se han reportado efectos significativos en el aumento de capturas de brocas cuando se utiliza las mezcla de metanol-etanol mas benzaldehido y salicilato de metilo (GOMEZ DE LIMA et al., 2004). En este estudio se descarta la posibilidad que H. hampei haya sido atraida por el color amarillo de las trampas utilizadas en el estudio, debido a que en el lote B, se registro una baja captura (3 insectos) (Tabla 3), ademas segun BORBON et al. (2000) y BARRERA et al. (2004) los colores de trampa que mas atraen a H. hampei son blanco y rojo.

La exclusividad de la familia Chrysopidae capturada en el lote A (con salicilato) (Tabla 2), evidencia el potencial atractivo de este compuesto, corroborando los resultados obtenidos por JAMES (2003a), quien utilizo el salicilato de metilo sintetico para atraer insectos beneficos en pruebas de campo, concluyendo que tal sustancia, tiene potencial para atraer poblaciones de algunos depredadores, como Chrysopa nigricornis.

En cuanto al lote B, la mayor captura fue obtenida para los individuos de la familia Drosophilidae, sin embargo, considerando que en ambos lotes fue registrado un numero elevado del grupo (Tabla 2 y 3), no se puede atribuir dichos valores a la influencia del salicilato de metilo y al color de las trampas. Es mas probable que la captura de estos dipteros este asociada a las altas densidades de poblaciones en la zona de estudio, ya que, estas se presentaban en cultivos frutales (banano y naranjo) aledanos, que son recurso alimenticio para tales moscas.

La mayor captura de insectos de la familia Aphididae en el lote B en relacion a la obtenida en el lote A, asi como la exclusividad de cicadelidos en el lote B, puede estar relacionado a lo expuesto por NORIN (2001) y METCAL (1992), quienes expresan que los afidos y otros insectos son repelidos por compuestos volatiles terpenoides (como el salicilato de metilo) inhibiendo su atraccion hacia la planta hospedante (Tabla 2 y 3). El solo hecho de que una misma sustancia pueda actuar como fagoestimulante para una especie y repeler a otras, abre nuevas e interesantes posibilidades para el manejo integrado de plagas.

Los resultados del presente trabajo indican la necesidad de realizar un estudio detallado de la capacidad entomofaga de las familias de insectos beneficos atraidas por el salicilato de metilo, ello con el fin de poder evaluarlas como alternativa de control biologico. De igual forma, se deben adelantar estudios para comprobar si los enemigos naturales atraidos por este volatil permanecen en el agroecosistema. Ademas, se sugiere la siembra o preservacion de arvenses (nobles de baja interferencia) y arbustos como refugio y fuente de alimento alterno en los bordes y calles, para aumentar la abundancia de enemigos naturales, como herramienta para complementar el control biologico por conservacion (GURR et al., 2004).

Conclusiones

Los datos obtenidos en los ensayos de campo sugieren que el salicilato de metilo propicia una mayor diversidad de insectos beneficos, especialmente del orden Hymenoptera. Por lo tanto, este semioquimico, puede ser tenido en cuenta dentro de un programa de manejo integrado de plagas, donde se podria aumentar el numero de parasitoides y depredadores que en algun momento ayudarian a regular las poblaciones de insectos fitofagos presentes en el cultivo del cafe.

BIBLIOGRAFIA

ARODOKOUN, D.; TAMO, M.; CLOUTIER, C. & BRODEUR, J. 2006.--Larval parasitoids occurring on Maruca vitrata Fabricius (Lepidoptera: Pyralidae) in Benin, West Africa. Agric. Forest. Entomol., 113: 320-325.

BARRERA, J.; HERRERA, J. & CRUZ, L. 2004.--Factores que influyen sobre la captura de la broca del cafe Hypothenemus hampei con trampas. (en) Resumenes del I Congreso Internacional sobre Desarrollo de Zonas Cafetaleras. 6-8 de Octubre de 2004, Tapachula. Chiapas, Mexico.

BALDWIN, I.; KESSLER, A. & HALITSCHKE, R., 2001.--Volatile signaling in plant--plant--herbivore interactions: what is real?. Curr. Opin. Plant Biol., 5:1-4.

BERNAYS, E. & CHAPMAN, R. 1994.--Behavior: the process of host-plant selection. In: Host Plant Selection by Phytophagous Insects. New York USA Chapman and Hall.

BORBON, M.; MORA, A.; OEHLSCHLAGER, O. & GONZALEZ, L. 2000.--Proyecto trampas, atrayentes y repelentes para el control de la broca del fruto de cafeto, Hypothenemus hampei F. (Coleoptera: Scolytidae). (en) XIX Simposio Latinoamericano de Caficultura 2 al 6 de octubre de 2000, San Jose, Costa Rica.

BROUAT, C.; MCKEY, D.; BESSIERE, J.M.; PASCAL, L. & HOSSAERT-McKEY, M. 2000.--Leaf volatile compounds and the distribution of ant patrolling in an ant--plant protection mutualism: Preliminary results on Leonardoxa (Fabaceae: Caesalpinioideae) and Petalomyrmex (Formicidae: Formicinae). Acta Oecol., 21: 349-357

CARMICHAEL, A.; WHARTON, R. & CLARKE, A. 2005.--Opiine parasitoids (Hymenoptera: Braconidae) of tropical fruit flies (Diptera: Tephritidae) of the Australia and South Pacific region. Bull. Entomol. Res., 95: 545-569.

GOMEZ DE LIMA, J.O.; CAMPOS-PEREIRA, R.; MUNIZ DE LACERDA M. P. C.; VIANA-BAILEZ, M.A.M. &

VILLACORTA-MOSQUEIRA, A. 2004.--Identificado e atratividade de novos volateis do cafe cereja e desenvolvimento de armadilha para a coleta massal da broca-do-cafe, Hypothenemus hampei (Ferr.) (en) Workshop Internacional sobre o Manejo da Broca-do-Cafe. Londrina, Parana, Brasil.

GURR, G.M.; WRATTEN, S.D.; ALTIERI, M.A. 2004.--Ecological Engineering for Pest Management: Advances in Habitat Manipulation for Arthropods. CABI Publishing, Wallingford, UK.

JAMES, D. 2003a.--Field evaluation of herbivore-induced plant volatiles as attractans for benefical insects: Methyl Salicylate and the green lacewing, Chrysopa nigricornis .J. Chem. Ecol., 29 (7): 1601-1609.

JAMES, D., 2003b.--A Synthetic herbivore-induced plant volatiles as field attractants for beneficial insects. (en) The British Crop Protection Council International Congress Crop Science and Technology. Glasgow,Scotland. UK.

JAMES, D. & PRICE, T. 2004.--Field-testing of methyl salicylate for recruitment and retention of beneficial insects in grapes and hops. J. Chem. Ecol. 30: 1613-1628.

JAMES, D.2005.--Further evaluation of synthetic herbivore-induced plant volatiles as attractants for beneficial insects. J. Chem. Ecol., 31, 481-495.

KESSLER, A. & BALDWIN, T. 2001.--Defensive function of herbivore-induced plant volatile emissions in nature. Science, 291: 2141-2144.

LA SALLE, J. & GAULD, I. 1991.--Hymenoptera: Their Biodiversity, and their impact on the diversity of other organisms. (en) LA SALLE J. & GAULD I. (eds.) Hymenoptera and Biodiversity. C.A.B. International, Wallingfod UK.

MATTHEWS, R.W. 1974.--Biology of Braconidae. Annu. Rev. Entomol., 19: 15-32

METCALF, R.L. & LUCKMANN, W.H., 1992.--Introduccion al manejo de plagas de insectos. Mexico, Noriega.

NORIN, T. 2001.--Pheromones and kairomones for control of pest insects. Some current results from a Swedish research program. Pure Appl. Chem., 7(3): 607-612.

OLIVER, I. & BEATTE, R. 1995.--Invertebrade morphospecies as surrogates for species: A Case Study. Conserve. Biol., 10:99-109.

PACKARD, A. 1914.--Monograph of the Bombycine moths of North America. Mem. Nat. Acad. Sci., 12: 1-516.

REDDY, G. & GUERRERO, A. 2004.--Interactions of insect pheromones and plant semiochemicals. Trends Plant Sci. 9:253-261.

ROWELL, B.; NITTAYAPORN, B.; SATTHAPORN, K.; PHITHAMMA, S. Y. & DOUNGSA-ARD, C. 2005. Hymenopteran parasitoids of Diamondback moth (Lepidoptera: Ypeunomutidae) in northern Thailand. Hortic. Entomol. 98: 449-456.

SARVARY, M A.; NYROP, J.; REISSIG, H. & GIFFORD, K. 2007.--Potential for conservation biological control of the oblique banded leafroller (OBLR) Choristoneura rosaceana (Harris) in orchard systems managed with reduced-risk insecticides. Biol Control., 40: 37-47.

SHAW M.R & HUDDLESTON T. 1991.--Classification and biology of braconid wasps (Hymenoptera: Braconidae). Handbooks for the Identification of British Insects 7(11):1-126.

TRIPLEHORN, C. A. & JOHNSON, N. F., 2004.--Borror and DeLong's Introduction to the study of insects. Belmont CA, Thomson Brooks/Cole.

VAN POECKE, R.; POSTHUMUS, M. & DICKE, M. 2001.--Herbivore-induced volatile production by Arabidopsis thaliana leads to attraction of the parasitoid Cotesia rubecula chemical, behavioral, and gene-expression analysis. J. Chem. Ecol, 27(10): 1911-1928.

VARON, E.; HANSON, P.; BORBON, O.; CARBALLO, M. & HILJE, L. 2004.--Potencial de hormigas como depredadoras de la broca del cafe Hypothenemus hampei en Costa Rica. Manejo Integrado de Plagas y Agroecologia. 73: 42-50.

VILLARREAL, H.; ALVAREZ, M.; CORDOBA, S.; ESCOBAR, F.; FAGUA, G.; GAST, F.; MENDOZA, H.; OSPINA, M. & UMANA, A.M. 2006.--Manual de metodos para el desarrollo de inventarios de biodiversidad. Programa de Inventarios de Biodiversidad. Instituto de Investigaciones de Recursos Biologicos Alexander von Humboldt. Bogota.

ZAR, J.H., 1996.--Biostatistical Analysis. New Jersey, USA Prentice Hall.

Fernando Coral G (1), Tito Bacca (2) y Lucimar G. Dias (3)

* FR: 4-VII-2011. FA: 22-VIII-2012.

(1) Ingeniero Agronomo. Facultad de Ciencias Agricolas, Universidad de Narino, Torobajo, Pasto. E-mail; rfernandocoral@gmail.com

(2) Facultad de Ciencias Agricolas, universidad de narino, torobajo, Pasto, Colombia. e-mail; titobacca@gmail. com

(3) Facultad de Ciencias exactas y naturales, Grupo de investigacion GEBIoME, universidad de Caldas, Manizales, Colombia. e-mail; lucimar.dias@ucaldas.edu.co
Tabla 1. Indices de diversidades de insectos capturados con trampas
con salicilato de metilo (lote A) y sin salicilato de metilo (lote B)
en un cafetal.

            Calculo de diversidade                Lote A    Lote B

Numero total de individuos (N)                      297      154
Riqueza de especies                                 23        10
Indice de Margalef                                 3,86      1,78
Indice de Simpson                                  0,09      0,19
Indice de Shannon-Wiener                           2,65      1,81
Indice de diversidad ponderado (Hp)                1,153    0,787
Varianzas de Hp (Var)                             0,0004    0,0007
Diferencia de las varianzas de Hp                 0,0344
Valor de t                                        10,619
Grados de libertad asociados con el valor de t:   332,374
t tablas (p [menor que o igual a] 0,05)            1,962
Coeficiente de similitud de Jaccard                0,22
Coeficiente de similitud de Sorensen               0,36

Tabla 2. Familias y morfoespecies de insectos capturados en las
trampas con salicilato de metilo del lote A en un cafetal.

   Orden          Familia        Morfoespecie     No. insectos
                                                   capturados

               Coccinellidae    Morfoespecie 1         4
                                Morfoespecie 2         8
                Scolytidae     Morfoespecie 1 *        37
 Coleoptera    Curculionidae    Morfoespecie 1         4
                Nitidulidae     Morfoespecie 1         2
                 Bruchidae     Morfoespecie 1 *        2
                 Cisididae     Morfoespecie 1 *        1
               Chrysomelidae    Morfoespecie 1         4
  Diptera       Tephritidae     Morfoespecie 1         2
               Drosophilidae   Morfoespecie 1 *        39
                 Aphididae     Morfoespecie 1 *        28
 Hemiptera      Membracidae    Morfoespecie 1 *        13
 Neuroptera     Chrysopidae     Morfoespecie 1         13
Hymenoptera     Braconidae      Morfoespecie 1         15
                                Morfoespecie 2         11
                                Morfoespecie 3         12
               Ichneumonidae    Morfoespecie 1         17
                                Morfoespecie 2         18
                                Morfoespecie 3         2
               Perilampidae     Morfoespecie 1         10
                 Chalcidae      Morfoespecie 1         1
                Formicidae      Morfoespecie 1         52
                Chrysididae     Morfoespecie 1         2

   TOTAL            18                23              297

* Familias en comun presente para el Lote A y para el Lote B.

Tabla 3. Familias y morfoespecies de insectos capturados en trampas
testigo (B) en un cafetal.

                              Lote Testigo
   Orden         Familia        Morfoespecie     No insectos
                                                 capturados

               Scolytidae     Morfoespecie 1 *        3
Coleoptera      Bruchidae     Morfoespecie 1 *        3
                 Cisidae      Morfoespecie 1 *        2
              Platypezidae     Morfoespecie 1        11
Diptera        Bibionidae      Morfoespecie 1         2
              Drosophilidae   Morfoespecie 1 *       47
Lepidoptera     Pyralidae      Morfoespecie 1         1
              Cicadellidae     Morfoespecie 1        29
Hemiptera       Aphididae     Morfoespecie 1 *       37
               Membracidae    Morfoespecie 1 *       19

TOTAL              10                10              154

* Familias en comun presente para el Lote A y para el Lote B.
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Author:Coral G., Fernando; Bacca, Tito; Dias, Lucimar G.
Publication:Boletin Cientifico Centro De Museos De Historia Natural
Date:Jul 1, 2012
Words:3610
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