Composicion taxonomica y de acidos grasos del zooplankton superficial de la bahia Malaga (Pacifico colombiano).
Zooplancton taxonomic composition and fatty acid content in bahia Malaga (colombian Pacific)1. Introduccion
Aunque Colombia es un pais considerado como megadiverso, el conocimiento general de la biodiversidad de los ecosistemas marinos aun requiere mayor investigacion, puesto que hace poco tiempo se ha comenzado su exploracion. De hecho, la informacion disponible sobre la biodiversidad del mar territorial colombiano es de apenas 1% (Gil-Agudelo, 2010). Por tal razon, se hace necesario el planteamiento de estudios encaminados a conocer no solo la composicion taxonomica de la fauna marina, sino a dilucidar posibles relaciones entre estas especies que permitan generar una linea base para estudios aplicados. En este sentido, el paso inicial para conocer una parte importante de la biodiversidad marina en las costas colombianas es el estudio de las comunidades planctonicas, especialmente del zooplancton, el cual se convierte en un enlace de las cadenas troficas pelagicas, ya que, al estar ubicado en un nivel secundario, se encarga de canalizar y transferir el carbono fijado por el fitoplancton hacia los niveles troficos superiores (Werlinger, 2004; Gonzalez, Zoppi de Roa & Montiel, 2006). Por otra parte, el zooplancton constituye una fuente de alimento importante en los ecosistemas acuaticos, lo que explica que estos organismos posean diferentes rutas que producen metabolitos secundarios empleados en la defensa ante depredadores; ademas generan una diversidad de compuestos altamente toxicos que despiertan gran interes por parte de los investigadores en productos naturales (Durmaz, 2007). Uno de los grupos mas importantes dentro de esta gama de productos naturales lo constituyen los acidos grasos. Todos los animales requieren lipidos en sus dietas que les provean energia para la funcion metabolica, que sirvan en la sintesis de membranas celulares y sean precursores de otros compuestos quimicos. El requerimiento de lipidos, particularmente en los estados larvales de especies marinas, aun es poco conocido, y aun mas el contenido de estos compuestos en la base alimenticia. En Colombia, el estudio de los productos naturales de origen marino se ha enfocado, sobre todo, en la deteccion de los compuestos bioactivos y acidos grasos de esponjas, estrellas, ofiuros y corales blandos (Duque, 1998; Duque et al., 1993; Duque et al., 1997; Rodriguez et al., 2010); pero no se conoce exactamente la composicion de metabolitos secundarios de las comunidades zooplanctonicas en las costas colombianas. Basados en lo anterior, se planteo el presente estudio, el cual fue enfocado a conocer la composicion de acidos grasos de la comunidad zooplanctonica en bahia Malaga con relacion a la composicion taxonomica encontrada. Asimismo, este estudio abre las puertas para realizar proyectos de investigacion que exploren nuevos horizontes en este campo, como la posible utilizacion de estos metabolitos como marcadores taxonomicos, bioprospeccion y biomarcadores de relaciones troficas en ecosistemas acuaticos (Dijkman y Kromkamp, 2006).
2. Metodologia
2.1 Area de estudio
Bahia Malaga esta ubicada sobre la costa Pacifica colombiana (ver figura 1), y es una zona que reviste de gran importancia biologica y con un menor grado de intervencion antropica en comparacion con otras bahias del litoral del Valle del Cauca, y fue declarada parque nacional natural colombiano numero 56 (Luna-Sanchez, 2010). Bahia Malaga se ubica en el Pacifico oriental tropical, entre los 3[grados] 56'-4[grados] 05' N y los 77 19'-77 21'W, y comprende la zona central de la costa Pacifica colombiana, donde la plataforma continental se extiende un poco mas de lo normal en esta region (Castellanos Galindo et al., 2006). La profundidad promedio es de 12 a 15 m y tiene un area aproximada de 126 [km.sup.2]. Las caracteristicas oceanograficas y climatologicas de bahia Malaga permiten reconocerla como una zona tipicamente estuarina del Pacifico colombiano. Las mareas son semidiurnas, con un rango promedio de 4.1 m (Cantera et al., 1999). La salinidad es relativamente alta para un estuario de esta zona, variando entre 19 y 28 en la zona mas externa y entre 1.3 y 10 en los rios, durante la marea alta. La temperatura del mar varia entre 25.2 y 29.7[grados]c. La combinacion de la actividad geologica reciente, con el amplio rango mareal, la alta precipitacion y el elevado aporte de sedimentos de la escorrentia de la costa, ha dotado a bahia Malaga con una alta variedad de habitats, tales como playas arenosas, planos de lodos, playas rocosas intermareales, manglares y las zonas permanentemente sumergidas y pelagicas, y presenta alta biodiversidad marina y costera (Cantera et al., 1999).
[FIGURA 1 OMITIR]
2.2 Materiales y metodos
Entre el 4 y 8 de mayo de 2009, se seleccionaron y realizaron muestreos de zooplancton superficial en 4 estaciones ubicadas en bahia Malaga (2 externas y 2 internas), con el fin de determinar la existencia de variacion en la composicion de zooplancton y sus acidos grasos entre los dos tipos de localidades (ver tabla 1). Es necesario aclarar que, debido a limitaciones logisticas, el tiempo de muestreo para el estudio podria no representar con fidelidad las caracteristicas de la poblacion. Por ello, es recomendable que se amplie el tiempo y esfuerzo de recoleccion de muestras para futuros trabajos de este tipo.
En cada estacion de muestreo se realizaron 15 arrastres horizontales superficiales (entre los 0 y 1 m de profundidad), usando simultaneamente dos redes conicas de 250 [micron]m de apertura de ojo de malla, para un total de 30 arrastres por estacion. Cada set de arrastres tuvo un lance efectivo de 5 min a velocidad de 1.85 km/h en embarcacion tipo lancha con 2 motores de potencia 75/40 caballos de fuerza. In situ se midieron variables ambientales, como nubosidad, estado del mar, temperatura superficial del agua y transparencia del agua, de acuerdo con la metodologia aplicada por Garzon-Ferreira et al. (2002).
Las muestras fueron concentradas en frascos plasticos rotulados con capacidad de 500 ml. Del total de 120 muestras, 60 fueron fijadas en formalina a 5% buferizada con borax para su analisis en el laboratorio, y las 60 restantes fueron refrigeradas en hielo seco para el posterior procesamiento de extraccion de acidos grasos en un periodo de tiempo menor a 24 horas.
2.2.1 Composicion taxonomica
El material biologico colectado y preservado con formalina a 5% buferizada se destino a evaluar la composicion taxonomica y abundancia del zooplancton usando una camara de conteo Bogorov de 6 ml, microscopio invertido Nikon TMS-F 0.2, con ocular de 10X y objetivo de 20X para un aumento total de 200X, y microscopio optico Olympus CX31. Para la determinacion taxonomica se usaron claves taxonomicas (Baez, 1997; Bieri, 1957; Boltovskoy, 1981; Boxshall y Halsey, 2003; Conway et al., 2003; Cook, 1965; Kott, 2005; Mayer, 1977; Moser et al., 1987; Pierrot-Bults y Chidgey, 1988; Schlitzer, 2011; Segura et al., 2003; Smith, 1977; Todd et al., 1996; Tregouboff y Rose, 1957; Vidal, 1968) e informacion proveniente de trabajos en ecologia de zooplancton realizados en el area (Baldrich-Chaparro, 2007; Fonseca-Camelo, 2000; Garcia-Diaz, 2003; Giraldo y Gutierrez, 2007; Medina-Contreras, 2009). El numero de alicuotas para observacion de grupos taxonomicos se determino teniendo en cuenta la curva de diversidad acumulada de Shannon-Wiener (Lopez-Ceron, 2009; Ramirez, 2005).
2.2.2 Extraccion y analisis de acidos grasos
La muestra colectada con la red conica de 250 [micron]m en el frasco de 500 ml y posteriormente refrigerada fue concentrada (para facilitar su manipulacion hasta la extraccion de acidos grasos), usando un filtro de malla de 50 [micron]m. El filtrado de esta muestra concentrada fue ubicado en sobres de papel aluminio debidamente rotulados, los cuales fueron mantenidos a -4[grados]c por menos de 48 h hasta su procesamiento. Para el proceso de extraccion de acidos grasos, las 60 muestras fueron lavadas con agua destilada sobre papel filtro de 4.7 cm GF/C Whatman (precombustionado a 450 por mas de 4 h), utilizando el sistema de bomba de vacio para eliminar el exceso de agua (Espinosa et al., 2009).
Con el fin de tener un punto de referencia o "control" del proceso de extraccion de acidos grasos, se tomo una alicuota de 7 ml del agua producto de la filtracion de cada muestra colectada (denominada CTRL, y la existencia de una para cada estacion evaluada), la cual fue sometida simultaneamente a extraccion de acidos grasos, con el proposito de observar los acidos grasos asociados a organismos planctonicos en descomposicion o acidos grasos libres en la columna de agua (mas no relacionados a organismos vivos). Los filtros con el material zooplanctonico fueron pesados en balanza analitica Mettler AJ 150 con precision de 0.1 m, y luego sometidos a extraccion de lipidos en tubos de vidrio con tapon de corcho forrado en teflon, usando el metodo modificado de Bligh & Dyer (Labarta et al., 1999): extraccion con mezcla de cloroformo:metanol (1:2) y reextraccion con cloroformo:metanol:agua (8:4:3) de acuerdo con Fernandez-Reiriz & Labarta (1996). Los solventes contenian 0.05% BHT para evitar la oxidacion de la muestra y los tubos permanecieron en la oscuridad y fueron analizados inmediatamente. Una muestra de 500 [micron]l fueron destinados al calculo de lipidos totales (mediante el metodo de gravimetria) de acuerdo con Nelson et al. (2000). Al resto de muestra se le agrego el estandar interno (triundecanoina), y se separaron las clases de lipidos usando elusiones sucesivas con cloroformo (para separar los lipidos neutrales) y metanol (para separar los fosfolipidos) (Fernandez-Reiriz y Labarta, 1995). Posteriormente, se realizo un proceso de derivatizacion a cada una de las clases lipidicas obtenidas, mediante calentamiento por 4 h a 80[grados]c, en metanol el cual contenia acido sulfurico a 3% bajo corriente de nitrogeno (Hamm y Rousseau, 2003). Los acidos grasos fueron identificados y cuantificados mediante cromatografia de gases (GLC-FID), previa derivatizacion a esteres volatiles. Se utilizo un cromatografo 7890A GC System Agilent Technologies, Columna capilar Supelco SP 2330 (25 m x 250 [micron]m x 0.2 [micron]m), usando temperatura maxima 250[grados]c, injector modo Split a 250[grados]c, detector FID a 300[grados]c. Gases: [H.sub.2] 35ml/min, aire 35 ml/min y make up (N2) 25 ml/min. El metodo usado incluyo una temperatura inicial de 150[grados]c durante 1 min, rampa de 8[grados]c/min desde 150[grados]c a 200[grados]c, rampa de 3[grados]c/min desde 200[grados]c a 250[grados]c durante 10 min. El tiempo total fue de 33.917 min/muestra, y todos los analisis cromatograficos fueron realizados en equipos propiedad de la Universidad de Lerida (Espana).
2.2.3 Analisis de datos
El contenido total de lipidos en el zooplancton colectado (expresado en gramos) y porcentaje de abundancia se analizaron espacialmente (en las 4 estaciones evaluadas) y en las fracciones de fosfolipidos y lipidos neutros. Para el analisis de los datos biologicos, se calculo el porcentaje de abundancia relativa para los taxones presentes en el area de estudio. Aunque fue posible realizar la determinacion taxonomica hasta el nivel de especies para algunos grupos, la composicion por taxones de la comunidad zooplanctonica fue sometida a analisis ecologicos utilizando la informacion hasta una categoria taxonomica alta y unificada planteada, como familia, por lo que no se considero adecuado el calculo de indices de diversidad durante el estudio.
3. Resultados y Discusion
3.1 Composicion taxonomica de la comunidad de zooplancton
La comunidad zooplanctonica estuvo representada por 5 filos, de los cuales Arthropoda (81.02%) y Chaetognatha (18.59%) reunieron 91% de abundancia total zooplanctonica, por lo cual se muestran los datos taxonomicos correspondientes a estos taxones relevantes (ver tabla 2).
La composicion de la comunidad zooplanctonica para este estudio exhibio una menor riqueza de taxones en comparacion con estudios previos en la zona (Baldrich-Chaparro, 2007; Castellanos Galindo et al., 2006; Escarria et al., 2006; Fonseca-Camelo, 2000; Garcia-Diaz, 2003; Giraldo y Gutierrez, 2007; Medina-Contreras, 2009). Sin embargo, en los grupos taxonomicos generales se pudo observar consistencia con estudios previos en la jerarquia de abundancia. De esta forma, fue concordante observar la prevalencia de copepodos, seguidos en abundancia por quetognatos, lo cual se presenta usualmente a lo largo del litoral pacifico colombiano (Giraldo y Gutierrez, 2007). Enlos ordenes, se observo una gran abundancia de Calanoida (26.87%), Aphragmophora (18.32%), Isopoda (18.11%), Decapoda (formas larvales) (11.04%) y Poecilostomatoida (10.63%) (ver figura 2).
3.2 Composicion y abundancia de acidos grasos del zooplancton
Para el zooplancton colectado en las cuatro estaciones evaluadas se determinaron 37 acidos grasos diferentes, de tres tipos: 15 saturados (AGS o SAFA), 10 monoinsaturados (AGMI o MUFA) y 12 poliinsaturados (AGPI o PUFA) (ver tabla 3). Dentro de los acidos poliinsaturados (PUFA, por sus siglas en ingles), se identificaron dos conjugados con otros acidos. Estos fueron el acido ETA (C20:3-[omega]3) junto con el acido araquidonico (C20:4-[omega]6) y el acido cis-docosa-13,6-dienoico (C22:2-[omega]6), junto con el acido EPA (ac. Timnodonico: C20:5-[omega]3). Este ultimo acido, sin embargo, es considerado un acido altamente insaturado (HUFA, por sus siglas en ingles). Durante el estudio de los acidos grasos del zooplancton superficial de bahia Malaga, los acidos SAFA (saturados) obtuvieron 88.06% del total de acidos grasos identificados, seguidos por los acidos tipo MUFA (6.26%), mientras que el menor porcentaje de abundancia lo presentaron los acidos de tipo PUFA (5.68%). Los acidos de tipo SAFA y MUFA cumplen la importante funcion en los organismos de convertirse en reservas y almacenamiento de lipidos (Roessler, 1990). Por otra parte, los acidos tipo PUFA son esenciales para el mantenimiento de la fluidez de la membrana celular, desempenan un papel importante como precursores de hormonas y factores de maduracion de oocitos en invertebrados (Brepohl, 2005; Broglio et al., 2003). Los acidos grasos mas abundantes fueron el acido palmitico (C16:0) con 21.65% y el acido oleico (C18:1 (c9)-[omega]9) con 12.3%. A pesar de que en la tabla 3 se muestra al acido undecanoico (C11:0) como el mas abundante, es importante aclarar que este acido es un producto derivado de la Triundecanoina, la cual fue agregada como estandar interno para el analisis de abundancia de los acidos grasos en el zooplancton colectado (Eras et al., 2008). Por lo tanto, para el analisis de abundancia de los acidos detectados no fue tenido en cuenta este acido, ya que no era un componente natural de las muestras. Con esta exclusion, la composicion porcentual de acidos grasos se modifica, mostrando que el acido palmitico (C16:0) exhibe la mayor abundancia (19.08%), seguido por los acidos caprico (C10:0), estearico (C18:0) y oleico (C18:1 (c9)-([omega]9) con 12.42, 9.55 y 9.23% de abundancia, respectivamente (ver figura 3).
[FIGURA 3 OMITIR]
El acido palmitico (C16:0) se asocia comunmente con la presencia de organismos de la subclase Copepoda (Brepohl, 2005), y es un marcador importante de organismos zooplanctonicos en las muestras de agua (Jeffries, 1970). Otros acidos importantes en abundancia fueron el acido estearico (C18:0) con 8.6%, acido caprilico (C8:0) con 8.18%, DHA (ac. Cervonico: C22:6-[omega]3) con 5.74%, acido palmitoleico (C16:1) con 5.53%, ac.cis-docosa-13,6-dienoico + EPA (ac. Timnodonico: C22:2-[omega]6)+C20:5 ([omega]3) con 4.72% y acido miristico (C14:0) con 4.07% (ver figura 3). La presencia de acidos grasos saturados, como el acido estearico o el caprilico, son indicativos de la presencia de una comunidad planctonica mixta (Espinosa et al., 2009). Como se esperaba, la abundancia de acidos grasos en las muestras denominadas CTRL-fue menor a la de las estaciones, lo que indica que la mayor parte de los acidos grasos extraidos y analizados provenian de organismos vivos en las muestras evaluadas.
En el analisis de los acidos grasos identificados en las fracciones lipidicas (fosfolipidos y lipidos neutros), se observo que los saturados (SAFA) siempre fueron mas abundantes en la fraccion de lipidos neutros (ver figura 4), por lo que puede asumirse que no se relacionan directamente con la composicion taxonomica de la comunidad del zooplancton, sino que pueden asociarse a la dieta de estos organismos en el momento de captura de los zooplancteres. Igualmente, los acidos tipo MUFA y PUFA fueron mas abundantes en la fraccion fosfolipidica, por lo que poseen un mayor potencial para convertirse en marcadores quimiotaxonomicos, ya que se asocian a la constitucion de la membrana celular de los organismos colectados. Como puede observarse, en algunos casos los contenidos de ciertos SAFA, la mayoria de MUFA y varios PUFA son mayores en las muestras CTRL- en comparacion con las muestras zooplanctonicas. Debe tenerse en cuenta que, al analizar los contenidos correspondientes a los acidos grasos en la muestra CTRL-, cabe la posibilidad de que exista la presencia de otros organismos, diferentes del zooplancton en el agua producto de la filtracion (Espinosa et al., 2009; Harvey et al., 2006; Volkman et al., 1998; Wakeham, 1995; Wakeham et al., 1997; Wakeham y Lee, 1989; Wakeham et al., 2003; Wakeham et al., 2002).
Sin embargo, estos resultados no invalidan el patron de comportamiento observado segun el cual los acidos grasos saturados (SAFA) no se asocian con la composicion taxonomica de los organismos evaluados. Asimismo, los acidos grasos poliinsaturados (PUFA) presentaron una mayor abundancia en las muestras zooplanctonicas que en las muestras CTRL-, lo cual corrobora su valor como indicativos de organismos viables para la extraccion de compuestos potenciales como marcadores quimiotaxonomicos (Balkwill et al., 1988; Fang et al., 2000; Virtue et al., 1996; Zink et al., 2003).
3.3 Importancia de los acidos grasos encontrados
Los acidos grasos constituyen la mayor parte de los lipidos en los organismos acuaticos, y muchos de estos, universalmente importantes como los PUFA, solo son sintetizados de novo por el fitoplancton (Brepohl, 2005; Sargent et al., 1977). Desde la perspectiva de la nutricion animal, los acidos grasos pueden ser agrupados en dos clases: el primer grupo contiene aquellos que no pueden ser sitentizados de novo, pero son esenciales para el crecimiento y desarrollo animal y deben ser suplidos en la dieta, mientras que el segundo grupo contiene aquellos que pueden ser sintetizados (no esenciales) (Brepohl, 2005; Sargent et al., 1995; Vance y Vance, 1985).
[FIGURA 4 OMITIR]
Como esenciales pueden ser considerados dos acidos grasos: el linoleico y el alfa-linolenico, ya que los animales no pueden sintetizarlos. Lo unico que puede hacer el organismo animal es elongar la cadena e introducir nuevos dobles enlaces a continuacion de los originales y en direccion del grupo carboxilico de la molecula. De aqui se deduce la importancia de las familias de acidos grasos insaturados de 18 carbonos, ya que, por una parte, la estructura terminal permanece inalterable y, por otra, no es posible el paso de un acido graso de una familia a otra. Teniendo esta estructura basica terminal, el organismo animal sintetiza los acidos grasos de cadena larga de 20 a 22 atomos de carbono con 3, 4, 5 o 6 dobles enlaces, pertenecientes a las familias [omega]-3 y [omega]-6 que les son indispensables para la formacion de estructuras celulares, funciones normales de todos los tejidos, sintesis de prostaglandinas, etc. Se pueden considerar como los mas importantes el acido araquidonico, el eicosapentaenoico y el acido docosahexaenoico (Eras et al., 2008), los cuales se obtuvieron en este estudio con abundancias entre 0.08 y 0.9% (ver tabla 4). Los acidos 20:5[omega]3 (EPA) y 22:6[omega]3 (DHA) estan asociados, en la estructura y funcion de membranas, con una gran influencia en la fecundidad y crecimiento zooplanctonicos (Brepohl, 2005; Fraser et al., 1989; Pond et al., 1996).
A nivel espacial y respecto de las fracciones lipidicas, se observaron particularidades de los acidos grasos detectados. Acidos tales como miristico, behenico, miristoleico, erusico, nervonico, alfa-linolenico, cis-docosa-13.6-dienoico y EPA (ac. Timnodonico) podrian ser marcadores quimiotaxonomicos, porque fueron detectados unicamente en la fraccion fosfolipidica (ver tabla 4). Esto sugiere que estos acidos se asocian a la presencia de organismos viables en las muestras evaluadas. Asimismo, acidos como el pentadecanoico y el DHA (ac. Cervonico) se asocian a la existencia de zooplancteres en las estaciones E1 y E3, ya que no fueron detectados en ninguna de las muestras CTRL-; por lo tanto, se hace claro que el nivel de SAFA se incrementa en ambas fracciones lipidicas una vez ha comenzado el proceso de descomposicion de los organismos.
4. Conclusiones
A traves del protocolo de extraccion de acidos grasos aplicado, se pudo inferir que existe una mayor disponibilidad de biomasa zooplanctonica viva en las estaciones ubicadas en la parte externa de la bahia, lo que se convierte en un indicativo de mayor densidad de zooplancteres en las zonas mas distantes de la costa. Asimismo, el analisis del rendimiento de las fracciones lipidicas (fosfolipidos y lipidos neutros) en las estaciones evaluadas indico prevalencia de organismos viables para los analisis de acidos grasos, ya que en la mayor parte de la estaciones se obtuvo un mayor rendimiento en la fraccion fosfolipidica. Los acidos grasos mas abundantes del zooplancton superficial de bahia Malaga fueron acido palmitico (C16:0), acido oleico (C18:1 (c9)-[omega]9) y CLA (acido linoleico conjugado) (C18:2 (c9, t12)), de los cuales el acido palmitico (C16:0) se asocia comunmente con la presencia de organismos de la subclase Copepoda, el cual fue el taxon mas abundante para este estudio, confirmando asi su valor como marcador de este taxon. A nivel biologico, la composicion de la comunidad zooplanctonica para este estudio exhibio una menor riqueza de taxones en comparacion con estudios previos realizados en la zona; sin embargo, debido a que en esta investigacion no se realizo un analisis temporal, no es adecuado tomar este resultado como signo de cambios en las comunidades zooplanctonicas de la zona a lo largo del tiempo. Calanoida fue el taxon mas abundante en todas las estaciones de muestreo con la familia Acartiidae, resultado tipico de escosistemas estuarinos. Se evidencio una asociacion de Sagittoidea con los acidos C20:2 (c11,14)-([omega]6) y C20:3([omega]3)+C20:4([omega]6), indicando que para este taxon los derivados del acido araquidico se convierten en una herramienta quimiotaxonomica util. Fue evidente durante el estudio que los grupos mas representativos de los crustaceos se asociaron a la familia del acido oleico C18:1 (c9)-([omega]9), senalando a estos acidos grasos como marcadores quimiotaxonomicos que indican la presencia de crustaceos en las muestras colectadas. Mediante esta investigacion, se pudo observar que los acidos grasos son una herramienta util no solo para determinar grupos taxonomicos en el zooplancton superficial bajo las condiciones de este estudio, sino que se convierte en un tema de investigacion importante para dilucidar relaciones troficas en los ecosistemas acuaticos.
Agradecimientos
Los autores expresan sus mas sinceros agradecimientos a la Universidad del Tolima, a la Universidad de Lerida (Espana), al Grupo de Investigacion en Zoologia (GIZ) y al Grupo de Investigacion en Quimica de Productos Naturales de la Universidad del Tolima (Gipronut), al Comite Central de Investigaciones de la Universidad del Tolima y a la Red Universidades Publicas del Eje Cafetero Alma Mater por el apoyo economico y logistico para la realizacion de este estudio. A Edinson Yara Varon y Diego Alejandro Lopez Ceron por su invaluable apoyo en el area quimica y taxonomica, respectivamente, a Francisco Antonio Villa Navarro y al Programa de Maestria en Ciencias Biologicas de la Universidad del Tolima.
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Fecha de recepcion
Dia/mes/ano 06/11/2012
Fecha de aprobacion
Dia/mes/ano 12/02/2013
Carolina Gutierrez (I) * Gladys Reinoso-Florez (II), Jordi Eras (III)
(I) Department of Biology, Colorado State University, Fort Collins, co-80523, USA. cgcol@rams.colostate.edu
(II) Grupo de Investigacion en Zoologia, Facultad de Ciencias, Universidad del Tolima. greinoso@ut.edu.co
(III) Departamento de Quimica, Universidad de Lleida, Espana. eras@quimica.udl.cat
Tabla 1. Geo-referenciacion de las estaciones seleccionadas
para la colecta de zooplancton en el area de estudio
Estacion Tipo Zona
E1 Externa Los Negritos
E2 Externa Bellavista
E3 Interna La Sierpe
E4 Interna Juan de Dios
Estacion Coordenadas geograficas
E1 3[grados]53' 49.1" N 77[grados]34' 24.2" W
E2 3[grados]53' 23.5" N 77[grados]33' 49.7" W
E3 3[grados]58' 31.8" N 77[grados]18' 32.8" W
E4 3[grados]57' 41.6" N 77[grados]19' 20.3" W
Tabla 2. Clasificacion taxonomica del zooplancton
superficial colectado (pertenecientes a los filos Arthropoda
y Chaetognatha) en cuatro estaciones de muestreo ubicadas
en bahia Malaga (Pacifico colombiano) entre el 4 y 8
de mayo de 2009
Filo Clase Orden
Arthropoda Branchiopoda Cladocera
Malacostraca Cumacea
Decapoda
Isopoda
Tanaidacea
Maxillopoda Calanoida
Cyclopoida
Monstrilloida
P o e c i l-
ostomatoida
Ostracoda Myodocopida
Chaetognatha Sagittoidea Aphragmophora
Filo Familia Abundancia
relativa
Arthropoda Polyphemidae 1.41%
Sididae 0.70%
Ceratocumatidae 0.54%
Diogenidae 5.30%
Grapsidae 1.53%
Menippidae 1.08%
Upogebiidae 0.78%
Xanthidae 0.66%
Cirolanidae 2.58%
Corallanidae 5.18%
Cymothoidae 3.13%
Idoteidae 1.79%
Sphaeromatidae 3.40%
Apseudidae 0.50%
Neotanaidae 0.94%
Acartiidae 1.58%
Calanidae 1.70%
Calocalanidae 0.50%
Candaciidae 1.37%
Centropagidae 0.89%
Clausocalanidae 0.57%
Eucalanidae 0.77%
Euchaetidae 5.14%
Heterorhabdidae 0.70%
Metridinidae 1.49%
Paracalanidae 1.91%
Pontellidae 6.82%
Pseudodiaptomidae 1.05%
Scolecithricidae 0.87%
Oithonidae 0.81%
Monstrillidae 4.83%
Corycaeidae 6.92%
Oncaeidae 1.69%
Sapphirinidae 2.02%
Cypridinidae 2.01%
Chaetognatha Kronittidae 1.99%
Sagittidae 16.34%
Tabla 3. Composicion y abundancia de los acidos grasos
del zooplancton superficial en bahia Malaga entre el
4 y 8 de mayo de 2009, expresado como porcentaje (%)
del total de acidos grasos [+ o -] SD
Acido Nombre IUPAC Nombre comun
Acidos grasos saturados (AGS)--Saturated fatty acids (SAFA)
C8:0 Acido octanoico Acido caprilico
C10:0 Acido decanoico Acido caprico
C11:0 Acido undecanoico
C12:0 Acido dodecanoico Acido laurico
C13:0 Acido tridecanoico
C14:0 Acido tetradecanoico Acido miristico
C15:0 Acido Pentadecanoico
C16:0 Acido hexadecenoico Acido palmitico
C17:0 Acido heptadecanoico
C18:0 Acido octadecanoico Acido estearico
C20:0 Acido eicosenoico Acido araquidico
C21:0 Acido heneicosanoico
C22:0 Acido docosenoico Acido behenico
C23:0 Acido tricosanoico
C24:0 Acido tetracosenoico Acido lignocerico
Acidos grasos monoinsaturados (AGMI)--Monounsaturated
fatty acids (MUFA)
C14:1 Acido cis-9- Acido miristoleico
tetradecanoico
C15:1 Acido cis-10-
Pentadecanoico
C16:1 Acido cis-9- Acido palmitoleico
hexadecenoico
C17:1 Acido cis-10-
heptadecanoico
C18:1 (c9)-([omega]9) Acido cis-9- Acido oleico
octadecanoico
C18:1 (t9)-([omega]9) Acido trans-9- Acido elaidico
octadecanoico
C18:1 (t11) Acido trans-11- Acido vaccenico
octadecanoico
C20:1 Acido cis-11-
eicosenoico
C22:1 Acido cis-13- Acido erusico
docosenoico
C24:1 Acido cis-15- Acido nervonico
tetracosenoico
Acidos grasos poliinsaturados (AGPI)--Polyunsaturated
fatty acids (PUFA)
C18:2 (c9, c11) Acido cis-octadeca- CLA (acido
9,11-dienoico l i n o l e i c o
conjugado)
C18:2 (c9, t11) Acido cis,trans- Acido rumenico
octadeca-9,11-
dienoico
C18:2 (c9, t12) Acido cis,trans- CLA (acido
octadeca-9,12- l i n o l e i c o
dienoico conjugado)
C18:2 (t9, c12)- Acido trans,cis- Acido linoleico
([omega]6) octadeca-9,12-
dienoico
C 1 8 : 3 (c6,9,12)- Acido cis-octadeca- Acido gama-
([omega]6) 6,9,12-trienoico linolenico
C18:3 (c9, 12,15)- Acido cis-octadeca- Acido alfa-
([omega]3) 9,12,15-trienoico linolenico
C20:2 (c11,14)- Acido cis-eicoseno-
([omega]6) 11,14-dienoico
C20:3([omega]3)+ Acido cis-eicosa- ETA + acido
C20:4([omega]6) 11,14,17-trienoic + araquidonico
Acido cis-eicosa-5,
8, 11,
14-tetraenoico
C22:2([omega]6)+ Acido cis-docosa- N. A. + EPA
C20:5 ([omega]3) 13,6-dienoico + (Ac. Timnodonico)
Acido
eicosapentaenoico
C22:6 ([omega]3) Acido DHA (Ac. Cervonico)
Docosahexaenoico
Acido % AB SD
Acidos grasos saturados (AGS)--Saturated fatty acids (SAFA)
C8:0 1.318% [+ o -] 0.00068
C10:0 3.433% [+ o -] 0.00124
C11:0 72.357% [+ o -] 0.0079
C12:0 0.781% [+ o -] 0.00018
C13:0 0.123% [+ o -] 0.00003
C14:0 0.761% [+ o -] 0.00019
C15:0 0.076% [+ o -] 0.00003
C16:0 5.275% [+ o -] 0.0006
C17:0 0.110% [+ o -] 0.00003
C18:0 2.641% [+ o -] 0.00057
C20:0 0.483% [+ o -] 0.00057
C21:0 0.200% [+ o -] 0.00024
C22:0 0.444% [+ o -] 0.00091
C23:0 0.031%
C24:0 0.029% [+ o -] 0.00007
Acidos grasos monoinsaturados (AGMI)--Monounsaturated
fatty acids (MUFA)
C14:1 0.013% [+ o -] 0.00001
C15:1 0.271%
C16:1 1.663% [+ o -] 0.00036
C17:1 1.316% [+ o -] 0.00045
C18:1 (c9)-([omega]9) 2.552% [+ o -] 0.00037
C18:1 (t9)-([omega]9) 0.007% [+ o -] 0.00009
C18:1 (t11) 0.084%
C20:1 0.014%
C22:1 0.236% [+ o -] 0.00006
C24:1 0.100% [+ o -] 0.00003
Acidos grasos poliinsaturados (AGPI)--Polyunsaturated
fatty acids (PUFA)
C18:2 (c9, c11) 0.250% [+ o -] 0.00132
C18:2 (c9, t11) 0.293% [+ o -] 0.00006
C18:2 (c9, t12) 1.817% [+ o -] 0.00054
C18:2 (t9, c12)- 0.051% [+ o -] 0.00025
([omega]6)
C 1 8 : 3 (c6,9,12)- 0.002%
([omega]6)
C18:3 (c9, 12,15)- 1.088% [+ o -] 0.00111
([omega]3)
C20:2 (c11,14)- 0.220% [+ o -] 0.00061
([omega]6)
C20:3([omega]3)+ 0.080% [+ o -] 0.00004
C20:4([omega]6)
C22:2([omega]6)+ 0.962% [+ o -] 0.00045
C20:5 ([omega]3)
C22:6 ([omega]3) 0.921% [+ o -] 0.00041
Tabla 4. Abundancia de acidos grasos detectados en las
fracciones lipidicas (fosfolipifos: FL; lipidos neutros: LN)
del zooplancton superficial (E1 a E4) y del agua producto de
la filtracion (CTRL-) en 4 estaciones en bahia Malaga entre
el 4 y 8 de mayo de 2009, expresada como porcentaje (%)
del total de acidos grasos
E1 CTRL E1
Acido LN FL LN FL
Acidos grasos saturados (AGS)/Saturated fatty acids (SAFA)
Acido - 1.83 0.18 -
Caprilico
Acido caprico 2.73 1.05 0.12
Acido 70.31 5.07 96.39 4.77
undecanoico
Acido laurico 0.69 0.29 0.62
Acido - 0.30 0.02 -
tridecanoico
Acido miristico 5.48
Acido - 1.12 - -
penta-decanoico
Acido 1.75 29.00 1.14 22.74
palmitico
Acido - 1.19 0.01 1.59
heptadecanoico
Acido estearico 0.80 7.56 0.43 30.93
Acido - 0.45 - -
araquidico
Acido 0.41 - - -
heneicosanoico
Acido behenico - 0.31 - -
Acido - - - -
lignocerico
Total SAFA 76.68 53.65 98.91 60.02
Acidos grasos monoinsaturados (AGMI)/Monounsaturated
fatty acids (MUFA)
Acido - 0.09
miristoleico
Acido - 6.87 0.23 -
palmitoleico
Acido cis-10- - - 0.37 -
heptadecanoico
Acido oleico 1.48 9.38 0.29 28.24
Acido elaidico - - - -
Acido erusico - 0.48
Acido - 0.11 - -
nervonico
Total MUFA 1.48 16.93 0.89 28.24
Acidos grasos poliinsaturados (AGPI)/Polyunsaturated
fatty acids (PUFA)
CLA--acido 12.45 - - -
linoleico
conjugado
Acido - 0.72 0.09 -
rumenico
CLA--acido 1.85 5.87 0.11 11.74
linoleico
conjugado
Acido linoleico - - - -
Acido gama- - - - -
linolenico
Acido alfa- - 1.51 - -
linolenico
Acido cis- 7.53 1.92 - -
eicoseno-
11,14-dienoico
ETA
+ acido - 0.62
araquidonico
Ac.cis-docosa- - 8.08
13,6-dienoico +
EPA (ac.
Timnodonico)
DHA (ac. - 10.71 - -
Cervonico)
Total PUFA 21.83 29.42 0.20 11.74
Posible marcador quimiotaxonomico
Asociados unicamente con la presencia de organismos
E2 CTRL E2
Acido LN FL LN FL
Acidos grasos saturados (AGS)/Saturated fatty acids (SAFA)
Acido 6.68 17.46 - -
Caprilico
Acido caprico 0.56 0.67 6.70
Acido 85.36 14.48 71.48 1.15
undecanoico
Acido laurico 0.85 0.10
Acido 0.04 - - -
tridecanoico
Acido miristico - 11.92
Acido - 0.31 - -
penta-decanoico
Acido 2.42 10.68 15.14 9.24
palmitico
Acido - 0.34 - -
heptadecanoico
Acido estearico 0.77 2.91 - 10.75
Acido - - - -
araquidico
Acido 0.43 - - -
heneicosanoico
Acido behenico - 1.12 - -
Acido - 0.50 - -
lignocerico
Total SAFA 97.12 60.50 86.62 27.8
Acidos grasos monoinsaturados (AGMI)/Monounsaturated
fatty acids (MUFA)
Acido
miristoleico
Acido 0.99 8.70 - -
palmitoleico
Acido cis-10- 0.59 - - -
heptadecanoico
Acido oleico 0.52 7.24 7.39 26.93
Acido elaidico - - - -
Acido erusico 2.12 23.01
Acido - 1.10 - 13.22
nervonico
Total MUFA 2.10 19.17 7.39 63.16
Acidos grasos poliinsaturados (AGPI)/Polyunsaturated
fatty acids (PUFA)
CLA--acido - 0.18 - -
linoleico
conjugado
Acido - 3.06 5.99 -
rumenico
CLA--acido 0.23 3.98 - 9.00
linoleico
conjugado
Acido linoleico - 2.83 - -
Acido gama- - - - -
linolenico
Acido alfa- - 0.99 - -
linolenico
Acido cis- - - - -
eicoseno-
11,14-dienoico
ETA
+ acido 0.04 -
araquidonico
Ac.cis-docosa- 5.46 -
13,6-dienoico +
EPA (ac.
Timnodonico)
DHA (ac. 0.51 3.84 - -
Cervonico)
Total PUFA 0.78 20.34 5.99 9.00
Posible marcador quimiotaxonomico
Asociados unicamente con la presencia de organismos
E3 CTRL E3
Acido LN FL LN FL
Acidos grasos saturados (AGS)/Saturated fatty acids (SAFA)
Acido 0.41 1.48 - -
Caprilico
Acido caprico 0.08 0.45 1.29
Acido 95.08 7.27 87.13 23.03
undecanoico
Acido laurico 0.32 0.67 0.31 0.95
Acido - - 0.42 0.18
tridecanoico
Acido miristico 0.11 3.21 1.68
Acido - 0.33 - -
penta-decanoico
Acido 1.59 15.90 - 31.05
palmitico
Acido - 0.32 - 0.58
heptadecanoico
Acido estearico 0.77 5.54 0.28 17.10
Acido - 0.36 - -
araquidico
Acido - 0.59 0.43 -
heneicosanoico
Acido behenico - 0.06 - -
Acido - - - -
lignocerico
Total SAFA 98.35 36.18 89.85 74.56
Acidos grasos monoinsaturados (AGMI)/Monounsaturated
fatty acids (MUFA)
Acido
miristoleico
Acido 0.03 3.36 - -
palmitoleico
Acido cis-10- 0.76 - 9.50 -
heptadecanoico
Acido oleico 0.78 18.50 - -
Acido elaidico - - - -
Acido erusico 1.59
Acido - 0.90 - -
nervonico
Total MUFA 1.57 24.35 9.50
Acidos grasos poliinsaturados (AGPI)/Polyunsaturated
fatty acids (PUFA)
CLA--acido - - - -
linoleico
conjugado
Acido - 1.45 - -
rumenico
CLA--acido - 17.65 - 19.35
linoleico
conjugado
Acido linoleico - - - -
Acido gama- - 0.06 - -
linolenico
Acido alfa- - 2.37 - 5.82
linolenico
Acido cis- - - - -
eicoseno-
11,14-dienoico
ETA
+ acido 0.08 0.48 0.65 0.27
araquidonico
Ac.cis-docosa- 6.67 -
13,6-dienoico +
EPA (ac.
Timnodonico)
DHA (ac. - 10.79 - -
Cervonico)
Total PUFA 0.08 39.46 0.65 25.44
Posible marcador quimiotaxonomico
Asociados unicamente con la presencia de organismos
E4 CTRL E4
Acido LN FL LN FL
Acidos grasos saturados (AGS)/Saturated fatty acids (SAFA)
Acido 0.14 1.56 - -
Caprilico
Acido caprico 0.27 0.94 0.48 -
Acido 95.34 2.42 92.46 1.81
undecanoico
Acido laurico 0.88 0.11 0.15
Acido 0.21 - 0.27 -
tridecanoico
Acido miristico 5.31 0.87
Acido - 0.82 - -
penta-decanoico
Acido 0.54 26.24 - 22.56
palmitico
Acido - 1.05 - -
heptadecanoico
Acido estearico 0.40 9.55 0.28 32.74
Acido 0.09 0.89 - -
araquidico
Acido - 0.26 - -
heneicosanoico
Acido behenico - 2.36 - 0.99
Acido - - - -
lignocerico
Total SAFA 97.87 51.38 93.59 59.12
Acidos grasos monoinsaturados (AGMI)/Monounsaturated
fatty acids (MUFA)
Acido
miristoleico
Acido 0.25 5.90 2.11 -
palmitoleico
Acido cis-10- 0.37 - 3.02 -
heptadecanoico
Acido oleico 0.94 16.46 0.50 20.91
Acido elaidico 0.03 - - -
Acido erusico 0.02 3.30 -
Acido - 1.19 - -
nervonico
Total MUFA 1.61 26.85 5.63 20.91
Acidos grasos poliinsaturados (AGPI)/Polyunsaturated
fatty acids (PUFA)
CLA--acido - - - -
linoleico
conjugado
Acido 0.16 1.74 - -
rumenico
CLA--acido 0.36 7.88 0.78 19.97
linoleico
conjugado
Acido linoleico - - - -
Acido gama- - - - -
linolenico
Acido alfa- - 2.17 - -
linolenico
Acido cis- - 0.19 - -
eicoseno-
11,14-dienoico
ETA
+ acido 0.06 -
araquidonico
Ac.cis-docosa- 7.71 -
13,6-dienoico +
EPA (ac.
Timnodonico)
DHA (ac. - 2.02 - -
Cervonico)
Total PUFA 0.52 21.77 0.78 19.97
Posible marcador quimiotaxonomico
Asociados unicamente con la presencia de organismos
Figura 2. Porcentaje de abundancia relativa de los ordenes
del zooplancton Superficial colectados en bahia Malaga
entre el 4 y 8 de mayo de 2009
Calanoida 26.89%
Myodocopida 2.01%
Phtagmophora 0.27%
Aphragmophora 18.34%
Tanaidacea 1.15%
Harpacticoida 0.21%
Isopoda 18.12%
Podocopida 1.44%
Anthomedusae 0.13%
Decapada 11.05%
Cumacea 1.00%
Ophirida 0.09%
Poecilastomatoida 10.64%
Cyclopoida 0.81%
Echinoida 0.06%
Monstrilloida 4.84%
Mysida 0.45%
Narcomedusae 0.02%
Cladocera 2.01%
Stomatopoda 0.36%
Leptomedusae 0.01%
Nota: Tabla derivada de grafico segmentado.
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| Title Annotation: | Ciencias Biologica |
|---|---|
| Author: | Gutierrez, Carolina; Reinoso-Florez, Gladys; Eras, Jordi |
| Publication: | Revista Tumbaga |
| Date: | Dec 1, 2013 |
| Words: | 8301 |
| Previous Article: | Caracterizacion y calibracion de un electroiman para su uso como sistema generador de campos magneticos. |
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