Printer Friendly

Comparacion de los valores hematologicos y bioquimicos en pinguinos Spheniscus humboldti (Sphenisciformes: Spheniscidae) silvestres y en cautiverio.

Hematological and Blood Biochemical Values in Wild and Captive Penguin Humboldt Spheniscus humboldti (Sphenisciformes: Spheniscidae)

INTRODUCCION

El pinguino de Humboldt (Spheniscus humboldti, Meyen, 1834) se distribuye a lo largo de las costas de Peru y Chile [26], abarcando 4.500 km de costa, desde Isla Foca (5[grados]12' S) en Peru hasta las islas Penihuil en Chile (42[grados]73' S) [27]. Caracteristico de la corriente de Humboldt [18], el pinguino de Humboldt se encuentra clasificado como vulnerable [13], debido a que sus poblaciones se han reducido considerablemente [6], atribuyendose principalmente esta disminucion a la degradacion del habitat, disturbios humanos, sobrepesca de anchoveta (Engraulis spp.) y enmallamiento en redes de pesca [6, 22].

Los analisis hematologicos son considerados unas de las tecnicas mas sencil las y menos invasivas para evaluar el estado general de salud de aves en poblaciones silvestres y en cautiverio [1, 4]. Sin embargo, cuando se utilizan estos valores como metodo diagnostico se debe considerar que, las aves en cautiverio desarrollan una forma de vida distinta a las aves de vida silvestre [5], realizando una menor actividad fisica, ademas, de encontrarse frecuentemente sometidos a estres debido al mayor contacto con humanos. Por otro lado, los pinguinos silvestres presentan algunos factores que pueden incidir en los resultados hematologicos y bioquimicos, como la frecuente presencia de parasitos, tanto externos como internos [9, 10]. Por lo tanto, el objetivo del presente estudio fue comparar los valores hematologicos y bioquimicos de S. humboldti silvestres y en cautiverio, esperando encontrar diferencias entre ellos, lo que podria resultar relevante conocer al momento de real izar o evaluar tratamientos en poblaciones, tanto cautivas como silvestres.

MATERIALES Y METODOS

Se obtuvieron muestras de sangre de 21 ejemplares de pinguino de Humboldt en cautiverio, provenientes de cuatro zoologicos de Chile: Metropolitano de Santiago (n=12; Region Metropolitana; 33[grados]26'16"S 70[grados]39'01"W), Buin (n=5; Region Metropolitana; 33[grados]45'55"S 70[grados]44'32"W) y Quilpue (n=4; Region de Valparaiso; 33[grados]02' 49"S 71[grados]26'38"W), entre noviembre 2007 y abril 2008. De los ejemplares cautivos, siete presentaban ceguera, desconociendose la causa de esta. Las muestras de pinguinos de Humboldt silvestres fueron obtenidas de 21 individuos adultos, aparentemente sanos, capturados manualmente en la Reserva Nacional Pan de Azucar (Region de Atacama; 26[grados]08'59"S 70[grados]39'02"W) en julio 2008. Las capturas se real izaron con la asistencia de guardaparques de la Corporacion Nacional Forestal (CONAF) y la autorizacion del Servicio Nacional de Pesca (SERNAPESCA, resolucion N[grados] 2984). Las aves se clasificaron en juvenil es o adultos de acuerdo a la descripcion realizada por Jaramillo [14]. No fue posible diferenciar el sexo de los individuos, debido a que no poseen dimorfismo sexual evidente. El peso de las aves fue registrado con una balanza digital portatil ([+ o -] 1g) (sBoss, M50, Chile).

Las muestras de sangre se obtuvieron con jeringa (23G, 22 mm, Nitro[R], Japon) de la vena metatarsal medial (3 mL) y fueron cuidadosamente transferidas a tubos Vacutainer[R] con heparina de litio (1 mL; Becton, Dickinson & Co. EUA), previa obtencion de una gota de sangre para frotis que se real izo en un portaobjeto secado al aire libre, que posteriormente fue fijado con alcohol metilico absoluto por 3 minutos (min) y tincion Giemsa (1/10 v/v) por 30 min. La sangre fue transportada, siguiendo la correspondiente cadena de frio, en una caja refrigerada (4[grados]C), luego de 20 horas las muestras fueron analizadas en el laboratorio de Patologia Clinica del Departamento de Ciencias Clinicas de la Facultad de Ciencias Veterinarias de la Universidad de Concepcion, Chile. Una vez en el laboratorio se procedio a real izar los analisis hematologicos y la sangre restante fue centrifugada a 2500 g por 10 min (Centrifuge DSC 200A-2, Already Interprise Inc., Taiwan, China), para la obtencion de plasma. Todos los analisis se real izaron inmediatamente despues de obtenido el plasma.

Se determino el hematocrito (Ht) por centrifugacion (Digital micro centrifuge, HS CODE: 993199, Already Enterprise INC, Taiwan, China) en tubos de microhematocrito por 5 min. a 12800 g [3]. Los solidos total es (ST; g/L) se determinaron por refractometria (Golberg TS Meter Clinical Refractometer, Reichert Analytical Instrument, New York, EUA). El conteo total de leucocitos (x109/L) se determino manualmente en un hemocitometro utilizando como diluyente la solucion descrita por Rees & Ecker modificado [16]. La formula leucocitaria diferencial se determino mediante la observacion de 200 leucocitos en un frotis tenido con Giemsa y se observo al microscopio (Zeiss Primo Star, Carl Zeiss Inc, Oberkochen 73447, Alemania) con el objetivo de inmersion (1000x). La identificacion de parasitos sanguineos se real izo mediante la observacion de frotis sanguineos tenidos con Giemsa [20].

Para determinar la actividad plasmatica de aspartato amino transferasa (AST; U/L), creatina cinasa (CK; U/L), Fosfatasa alcalina (FA, U/L), alanina aminotransferasa (ALT; U/L), gamma glutamiltranferasa (GGT; U/L) y lactato deshidrogenasa (LDH; U/L) se utilizaron reactivos comercial es (Human Diagnostic Worldwide, Alemania) siguiendo las recomendaciones del fabricante. La concentracion plasmatica de acido urico (mmol/L) se determino utilizando un kit comercial (Urea Acid liquicol or test, Human Diagnostic Worldwide, Alemania). Los analisis se real izaron en un espectrofotometro (Micro Lab 200 Vital Scientific, Paises Bajos). Para todos los analisis se realizaron dos repeticiones por ave.

Con los valores obtenidos se calculo la media aritmetica y desviacion estandar para los grupos que se estudiaron. La normalidad y homocedasticidad de los datos fue revisado utilizando la prueba de Shapiro-Wilks y de Levene, respectivamente [23]. Se utilizo la prueba de t student para la determinacion de diferencias en los valores estudiados y condicion de vida del ave [23]. Los analisis estadisticos se real izaron con el programa JMP9 (SAS Institute, Cary, North Carolina 27513, EUA).

RESULTADOS Y DISCUSION

En la TABLA I se muestran los valores hematologicos y bioquimicos sanguineos obtenidos de pinguinos de Humboldt cautivos (zoologicos) y procedentes de ambiente silvestre (Parque Nacional Pan de Azucar). Se observo que los pinguinos cautivos tienen valores mas altos en el conteo total de leucocitos (ts, P<0,05), numero de linfocitos (ts, P<0,05) y en las enzimas FA, GGT, LDH (ts, P<0,05). Por otro lado, el numero de eosinofil os fue mas elevado en pinguinos silvestres (ts, P<0,05) que en cautiverio. De los 21 pinguinos de Humboldt cautivos, 11 correspondieron a adultos y diez a juveniles, entre los cual es no se encontro diferencia estadistica significativa (ts, P>0,05) al comparar los valores hematologicos y bioquimicos seleccionados. Siete de estos pinguinos presentaron ceguera, sin embargo los valores hematologico y bioquimicos fueron similares a los ejemplares que no presentaban esta condicion en cautiverio (ts, P>0,05). Con respecto al peso, los pinguinos silvestres presentaron mayor peso (4600 g) que los pinguinos en cautiverio (3500 g) (ts, P<0,05). No se encontraron hemoparasitos en el total de los frotis sanguineos examinados.

Todos los resultados obtenidos en el presente estudio se encuentran dentro de los intervalos de referencia publicados para S. humboldti, tanto silvestres como en cautiverio [21, 25, 26]. Sin embargo, las diferencias encontradas entre aves cautivas y silvestres, podrian estar influenciadas por diversos factores [19]. A pesar de observarse esta diferencia, los valores registrados se encuentran dentro de los intervalos de referencia descritos para esta especie por Villouta y col. [25] en aves en cautiverio y Smith y col. [21] para pinguinos silvestres. Sin embargo, Wallace y col. [27] estudiando pinguinos de Humboldt silvestres (n=51) presentaron intervalos de leucocitos mucho mas amplios (intervalo = 13,45-47,26 [10.sup.9]/L) que lo hallado en este estudio para ambos grupos de aves, aunque el mencionado autor, no entrega datos del estado de salud de los pinguinos analizados.

En el conteo diferencial de leucocitos, los linfocitos tuvieron valores mayores en aves en cautiverio que en silvestres, sin embargo, estos se encuentran dentro de los valores registrados en la literatura [26] (3,39 20,32 [10.sup.9]/L). En un estudio realizado en pinguinos papua (Pygoscelis papua) y pinguinos saltarrocas (Eudyptes chrysocome) de las Islas Malvinas, se obtuvo un mayor numero de linfocitos en pinguinos silvestres que en los cautivos [11]. Por esto, existe la posibilidad que las aves cautivas hayan estado expuestas recientemente a diferentes antigenos, lo que origino la diferencia.

Los valores reportados para eosinofilos en aves en cautiverio fueron menores que en aves silvestres, sin embargo se encuentran dentro de los limites normal es registrados para esta especie [25, 26]. La eosinofilia en aves puede estar asociada a parasitosis, automutilacion, traumas severos, lesiones en piel y sindromes de hipersensibilidad, no obstante es un hallazgo inconsistente [7]. Wallace y col. [26] al comparar pinguinos de Humboldt de vida silvestre con aves cautivas precedentes del zoologico de la ciudad de Milwaukee, EUA, solo encontraron diferencias estadisticas en el numero de eosinofilos entre ambos grupos, presentandose los mayores valores en los pinguinos de vida silvestre, semejante a lo observado en el presente estudio. Esta diferencia se puede explicar debido a que, los pinguinos cautivos son desparasitados periodicamente como parte del protocolo de manejos de estas aves.

La actividad plasmatica de las enzimas, fue mas alta en las aves silvestres (P<0,05). En el estudio de Wallace y col. [26], en pinguinos de Humboldt silvestres sanos, al igual que en International Species Information Systems [24], en pinguinos de Humboldt en cautiverio, la media de FA fue superior a la obtenida en los pinguinos silvestres del presente estudio. Segun Lumeij [15] en aves, el aumento en la actividad de la enzima FA esta predominantemente asociado con un incremento de la actividad osteoblastica, hiperparatiroidismo nutricional secundario, raquitismo, osteomielitis por reparacion de fractura, y en periodo pre ovulatorio. En E. chrysocome se encontro que, en periodo de muda la actividad de FA era superior a la obtenida en aves en periodo de reposo [8]. Los mayores valores de FA corresponden a siete aves provenientes de zoologico con valores mayores a 100 U/L, de las cual es cuatro corresponden a aves juvenil es, con lo cual se podria suponer que esta diferencia se deba a la presencia de aves en desarrol lo, a diferencia de las aves silvestres que eran todas adultas. Sin embargo, 15 de las aves en cautiverio mostraron valores de FA mayores al valor maximo determinado en las aves silvestres, lo que podria asociarse a algun tipo de traumatismo oseo de las aves cautivas por las instalaciones distintas al medio silvestre en el que viven las aves de Pan de Azucar. Tambien se puede asociar a la administracion de complejos vitaminicos en las aves cautivas, ya que un exceso de vitamina A produce en los huesos una actividad osteoblastica reducida y mayor actividad de la FA sanguinea y osea [2]. Sin embargo, Penguin Taxon Advisory group [5] menciona que, los pinguinos posiblemente por ser aves piscivoras, presentan una alta tolerancia a la vitamina A, debido a las elevadas concentraciones que presentan en su dieta natural.

La actividad de la enzima GGT, tambien presento valores mayores en los pinguinos de zoologico. Los valores presentados por International Species Information Systems [24] en pinguinos de Humboldt en cautiverio, fueron menores a los obtenidos por el presente estudio en aves cautivas, pero mayores a los obtenidos por las aves de vida libre. Segun Hochleithneir [12], valores elevados en GGT se encuentran asociados a enfermedad hepatica, aunque tambien se han reportado incrementos cuando existe alteracion a nivel renal. De las aves estudiadas con mayores valores de GGT, una presentaba otras enzimas hepaticas con valores elevados, esta ave juvenil ciega, con peso corporal sobre el promedio, cuyo conteo de leucocitos total es estaba elevado, sin presentar otros antecedentes clinicos. De acuerdo a los resultados obtenidos se puede suponer que esta ave podria estar comenzando un cuadro de alteracion hepatica.

La actividad de la enzima LDH se determino que, al igual que las enzimas anteriores, se observo mas elevada en los pinguinos cautivos. Los valores de LDH en International Species Information Systems [24] son menores a los obtenidos para las aves cautivas del presente estudio. Segun Lumeij [15], la enzima LDH en aves es indicadora de dano hepatico, debido a que en condiciones normal es esta enzima presenta baja actividad y una vida media plasmatica muy corta, sugiriendo dano hepatico cuando al ser evaluada junto con la CK se observan elevaciones persistentes de la LDH sin elevaciones de la CK. El aumento en la actividad de la LDH no se puede asociar a dano muscular en otros tejidos, ya que no se realizo electroforesis.

Al comparar la actividad de la enzima AST de pinguinos de Humboldt silvestres y cautivos no se observa diferencias significativas. El valor medio de International Species Information Systems [24] en pinguinos de Humboldt en cautiverio (n=107) es menor que el registrado en el presente estudio. En el estudio de Wallace y col. [26] en pinguinos de Humboldt silvestres, la media para la enzima AST fue mayor que en ambos grupos del presente estudio, sin embargo se encuentra dentro de los intervalos registrados. Por el contrario, en el estudio de Villouta y col. [25] en pinguinos de Humboldt sanos con tres dias post captura, la media para la AST fue mas baja que en ambos grupos de este estudio, sin embargo, este valor aumento hacia las 15 semanas de cautiverio, superando los valores del presente estudio en la misma especie de pinguino. Este autor menciona al respecto, que considerando los diferentes origenes de esta enzima y el estatus sanitario de las aves que estudio, los valores observados podrian afectarse por un incremento en la actividad muscular mas que por una alteracion hepatica. Esto ultimo parece contradictorio, ya que estas aves al estar en cautiverio real izan menor actividad muscular de lo real izado en vida silvestre.

Entre pinguinos de Humboldt silvestres y mantenidos en cautiverio hubo una gran diferencia en cuanto al peso corporal, siendo la media para aves silvestres mucho mayor que en la de aves en cautiverio. Se puede suponer que esto se deba a la poca actividad fisica de las aves en cautiverio lo que llevaria a una disminucion de la masa muscular. Estudios real izados con pinguinos de vida silvestre de Pan de Azucar [17] determinaron una media de 4200 g de peso; en la Isla Cachagua se obtuvo un peso promedio similar en adultos de 4313 [+ o -] 385 g [26], este mayor peso podria ser consecuencia de la gran cantidad de horas que pasan en el mar (25 h como promedio una vez que se sumergen, con un intervalo de 12 a 51 horas nadando).

En los ultimos anos se han encontrado en las costas del norte de Chile muchos pinguinos de Humboldt juvenil es en muy mal estado y con signos de desnutricion, los cual es han resultado ser ciegos. Gran parte de las aves de esta especie presentes en los zoologicos de Chile presentan este problema, del cual se desconoce la causa. Como este hecho es el antecedente mas uniforme detectado en algunos de los pinguinos analizados, fue utilizado como un parametro de comparacion, frente al cual no se encontraron diferencias estadisticamente significativas en ninguna de las variables estudiadas entre estos dos grupos de pinguinos.

CONCLUSIONES

Las diferencias obtenidas entre pinguinos silvestres y en cautiverio son menores, encontrandose dentro de los intervalos de referencia establecidos para esta especie. Sin embargo, se observaron diferencias estadisticas en el conteo de leucocitos, numero total de linfocitos, numero total de eosinofilos y la actividad enzimatica de FA, GGT, LDH. Ademas, se encontraron diferencias en el peso atribuido principalmente a las diferencias en el modo de vida de las aves en cautiverio y silvestres.

Recibido: 26/11/2013. Aceptado: 22/04/2014.

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

[1] ARTACHO, P.; SOTO-GAMBOA, M.; VERDUGO, C.; NESPOLO, R. Using haematol ogical parameters to infer the health and nutritional status of an endangered black-necked swan population. Comp. Biochem. Physiol. A. 147:1060-1066. 2007.

[2] AUSTIC, R.; SCOTT, M. Nutritional diseases In: Calnec, K.; Barnes, J.; Beard, C; Reid, W. Yoder, H. (Eds). Enfermedades de las aves. El Manual Moderno. 9th Ed. Mexico D.F. Mexico. 1147 pp. 1995.

[3] CAMPBELL, T. Hematology. In: Ritchie, B., Harrison, G., Harrison, L. (Eds). Avian medicine: principles and application. Wingers Publishing. Florida, USA. Pp 176198. 1994.

[4] COOPER, J.E. Minimally invasive health monitoring of wildlife. Anim. Welfare. 7:35-44. 1998.

[5] CRISSEY, S.; SLIFKA, K.; MCGILL, P. Diet and nutrition. Penguin husbandry manual. Penguin Taxon Advisory Group (Ed). AZA American Zoo and Aquari um Association. Pp 65-77. 2005.

[6] ELLIS, S.; CROXALLL, J.P.; COOPER, J. Penguin conservation assessment and management plan. Report. IUCN/SSC Conservation Breedi ng Specialist Group, Appl Valley, Minn., USA. 154 pp. 1998.

[7] FUDGE, A.M.; JOSEPH, V. Disorders of avian leukocytes. In: Fudge, A.M. (Ed.). Laboratory medicine, avian and exotic pets. W. B. Saunders Co., Philadelphia, Pennsylvania, USA. Pp 19-27. 2000.

[8] GHEBREMESKEL, K.; WILLIAMS, G.; KEYMER, I.F.; HORSLEY, D.; GARDNER, D.A. Plasma Chemi stry of rockhopper (Eudyptes creztatus), magell anic (Sphenlscus magellanicus) and gentoo (Pygoscelis papua) wild penguins in rel ation to moult. Camp. Biochem. Physiol. 92:43-47. 1989.

[9] GONZALEZ-ACUNA, D.; MORENO, L.; GUGLIEL MONE, A. First report of Ornithodoros sphenlscus (Acari: Ixoidea: Argasidae) from the Humboldt penguin in Chile. Syst. Appl. Acarol. 13:120-122. 2008a.

[10] GONZALEZ-ACUNA, D.; KINSELLA, J.; LARA, J.; VA LENZUELA-DELLAROSSA, G. Parasitos gastrointestinal es en pinguino de Humboldt (Spheniscus humboldti) y pinguino de Magal lanes (Spheniscus magellanicus) en las costas del centro y sur de Chile. Parasitol. Latino am. 63:58-63. 2008b.

[11] HAWKEY, C.M.; HORSLEY, D.T.; KEYMER, I.F. Hematology of wild penguins (Spheni sciformes) in the Falkl and Islands. Avian Pathol. 18:495-502. 1989.

[12] HOCHLEITHNEIR, M. Biochemi stries. In: Ritchie, B.; Harrison, G.; Harrison, L. (Eds) Avian medicine: principles and application. Wingers Publishing. Florida, USA. Pp 223-245. 1994.

[13] INTERNATIONAL UNION FOR CONSERVATION OF NATURE (IUCN). Red List of Threatened Species. 2011. Version 2011.2. On line: www.iucnredlist.org. 01/23/ 2012.

[14] JARAMILLO, A. Lamina 14: Pinguinos. In: Jaramill o, A. (Ed.). Aves de Chile: incluye la peninsula Antartica, las islas Malvinas y Georgia del Sur. Lynx ediciones. Barcelona, Espana. Pp 54-55. 2005.

[15] LUMEIJ, J.T. Avian clinical biochemi stry. In: Kaneko, J.; Harvey, J.; Bruss, M. (Eds). Clinical biochemistry of domestic animals. 5th Ed. Academic Press. California, USA. Pp 839-872. 1997.

[16] LUCAS, A.M.; JAMROZ, C. Technics for avian blood. In: Lucas, A.M.; Jamroz, C. (Eds). Atlas of avian hematology. United States Department of Agriculture, Washington, USA. Pp 222-232. 1961.

[17] LUNA-JORQUERA, G.; CULIK, B.M. Diving behaviour of Humboldt Penguins Sphenlscus humboldti in northern Chile. Mar. Ornithol. 27:67-76. 1999.

[18] MARTINEZ, D.; GONZALEZ, G. Orden: Sphenisciformes. In: Martinez, D.; Gonzalez, G. (Eds). Las Aves de Chile, Nueva guia de campo. Ediciones del Naturalista. Santiago, Chile. Pp 45-48. 2005.

[19] MAXWELL, M.H. Avian blood leukocyte response to stress. World Poult. Sci. J. 49:34-13. 1993.

[20] MERINO, S.; POTTI, J.; FARGALLO, J. A. Blood parasites of some passerine birds from central Spain. J. Wildl. Dis. 33:638-641. 1997.

[21] SMITH, K.M.; KARESH, W.B.; MAJLUF, P.; PAREDES, R.; ZAVALAGA, C.; REUL, A.H.; STETTER, M.; BRASELTON, W.E.; PUCHE, H.; COOK, R.A. Health evaluation of free-ranging penguins (Sphenlscus humboldti) in Peru. Avian Dis. 52:130-135. 2008.

[22] SIMEONE, A.; BERNAL, M.; MEZA, J. Incidental mortality of Humboldt penguins Sphenlscus humboldti in gill nets, central Chile. Mar. Ornithol. 27:157-161. 1999.

[23] SOKAL, R.R.; ROHLF, F.J. Estimacion y contraste de hipotesis. In: Sokal, R.R.; Rohlf, F.J. (Eds). Introduccion a la bioestadistica. Editorial Revertre, Barcelona, Espana. Pp 90-129. 2002

[24] TEARE, A. Reference ranges for physiol ogical values in captive wildlife. International species information systems. International Species Inventory System. Apple Valley. Minnesota, USA. 1 cd-rom. 2002.

[25] VILLOUTA, G.; HARGREAVES, R.; RIVEROS, V. Hae matological and clinical biochemistry findings in captive Humboldt penguins (Sphenlscus humboldti). Avian Pathol. 26:851-858. 1997.

[26] WALLACE, R.S.; TEARE, J.; DIEBOLD, E.; MICHAELS, M.; WILLIS, M. Hematology and plasma chemistry values in free-ranging Humboldt penguins (Sphenlscus humboldti) in Chile. Zoo. Biol. 14:311-316. 1995.

[27] WILLIAMS, T.D. Genus Sphenlscus. In: Williams, T.D. (Ed). The Penguins, Spheniscidae. Oxford University Press, Oxford. Pp 245-246. 1995.

Lucila Moreno-Salas (1), Loreto Nilsson-Saez (2), Felipe Corvalan (2), Karen Ardiles-Villegas (2), Victoria Merino-Munoz (2), Armando Islas-Letelier (2) y Daniel Gonzalez-Acuna (2)

(1) Departamento de Zoologia, Facultad de Gencias Naturales y Oceanograficas, Universidad de Concepcion, Concepcion, Chile. (2) Departamento de Ciencias Pecuarias, Facetad de Ciencias Veterinarias, Universidad de Concepcion, Chillan, Chile. *darigonz@udeccl
TABLA I
PROMEDIO Y DESVIACION ESTANDAR DE LOS VALORES
HEMATOLOGICOS Y BIOQUIMICOS ESTUDIADOS
EN S. HUMBOLDTI CAUTIVOS Y SILVESTRES

                                     Cautivos (n = 21)
                                    promedio [+ o -] DE

Valores hematologicos
  Ht (%)                               46 [+ o -] 8,5
  Leucocitos (X[10.sup.9]/L)*(a)     12,50 [+ o -] 4,20
  Heterofilos (X[10.sup.9]/L)(a)      6,7 [+ o -] 3,5
  Linfocitos (X[10.sup.9]/L)*(a)      4,7 [+ o -] 2,2
  Monocitos (X[10.sup.9]/L)(a)       0,68 [+ o -] 0,73
  Eosinofilos (X[10.sup.9]/L)*(a)    0,28 [+ o -] 0,22
  Basofilos (X[10.sup.9]/L)(a)       0,01 [+ o -] 0,03
Valores bioquimicos
  Solidos totales (g/L) (a)            58 [+ o -] 10
  AST (U/L) (b)                        145 [+ o -] 76
  CK (U/L) (b)                         59 [+ o -] 79
  FA (U/L) *(b)                        113 [+ o -] 82
  GGT (U/L) *(b)                       13 [+ o -] 10
  ALT (U/L) (b)                        138 [+ o -] 32
  LDH (U/L) *(b)                      732 [+ o -] 434
  Ac. urico (mmol/L) (a)             0,44 [+ o -] 0,21

                                     Silvestres (n = 21)
                                    promedio [+ o -] DE

Valores hematologicos
  Ht (%)                               43 [+ o -] 9,1
  Leucocitos (X[10.sup.9]/L)*(a)     8,36 [+ o -] 1,58
  Heterofilos (X[10.sup.9]/L)(a)      5,6 [+ o -] 1,2
  Linfocitos (X[10.sup.9]/L)*(a)      1,8 [+ o -] 0,8
  Monocitos (X[10.sup.9]/L)(a)       0,32 [+ o -] 0,29
  Eosinofilos (X[10.sup.9]/L)*(a)    0,47 [+ o -] 0,26
  Basofilos (X[10.sup.9]/L)(a)      0,005 [+ o -] 0,016
Valores bioquimicos
  Solidos totales (g/L) (a)             55 [+ o -] 9
  AST (U/L) (b)                        178 [+ o -] 92
  CK (U/L) (b)                         47 [+ o -] 31
  FA (U/L) *(b)                        37 [+ o -] 15
  GGT (U/L) *(b)                        3 [+ o -] 2
  ALT (U/L) (b)                        137 [+ o -] 33
  LDH (U/L) *(b)                      285 [+ o -] 172
  Ac. urico (mmol/L) (a)             0,43 [+ o -] 0,12

* ts, P<0,05. (a) se midio concentracion plasmatica.
(b) Actividad enzimatica en plasma.
COPYRIGHT 2014 Universidad del Zulia, Facultad de Ciencias Veterinarias
No portion of this article can be reproduced without the express written permission from the copyright holder.
Copyright 2014 Gale, Cengage Learning. All rights reserved.

Article Details
Printer friendly Cite/link Email Feedback
Author:Moreno-Salas, Lucila; Nilsson-Saez, Loreto; Corvalan, Felipe; Ardiles-Villegas, Karen; Merino-Munoz,
Publication:Revista Cientifica de la Facultad de Ciencias Veterinarias
Date:May 1, 2014
Words:3988
Previous Article:Crecimiento de Staphylococcus aureus y produccion de enterotoxinas durante la manufactura y almacenamiento de queso "telita".
Next Article:Prevalencia de Moniezia spp. en bufalos del municipio Colon, estado Zulia-Venezuela.
Topics:

Terms of use | Privacy policy | Copyright © 2020 Farlex, Inc. | Feedback | For webmasters